作者:琉璃韵
因篇幅有限,内容将分两篇刊出。上篇覆盖12个项目,包括来自Celltrion Pharm、APITBIO、康威生物、新蕴达生物、Sutro、宜联生物、道尔等机构的双载荷ADC项目;下篇将整理余下的13个项目,包括来自齐鲁、拓济、百奥奕图、Araris、爱科瑞思、映恩、三优、多禧、普灵、Hummingbird、亲和力及Baylink等机构的项目。
前言
近年来,双载荷ADC逐渐从概念验证走向更系统的分子设计阶段。双载荷ADC的核心思路在于通过不同毒素机制、不同旁观者效应或不同药物释放特征的组合,尝试提高肿瘤细胞杀伤覆盖度,并在异质性肿瘤或耐药场景中提供新的解决方案。
从已披露项目看,当前双载荷ADC的载荷组合主要集中在Topoisomerase I抑制剂+微管抑制剂、Topoisomerase I抑制剂+其他细胞毒药物,以及部分非传统payload组合。
以下整理了部分已披露双载荷ADC项目的结构设计、体内药效及毒理数据。其中,毒理数据值得关注,可反映双载荷设计在安全窗口上的真实挑战。
表1 项目概览列表
项目数据
项目1——CPTH-08 (Celltrion)
结构:CTPH-08 AD²C 平台的核心在于其独特的分支型可裂解连接子。靶点为FRα同时偶联两种机制互补的细胞毒性载药:MMAE+ Payload X,DAR值为2+2。
体内药效:FRα低表达模型 (OVCAR3):在同等剂量(2 mg/kg)下,CTPH-08展现出与Elahere相当的肿瘤抑制率(TGI),这说明其保底能力是完全在线的。FRα高表达模型 (IGROV1):在4 mg/kg和8 mg/kg的剂量下,CTPH-08的抗肿瘤活性显著优于同剂量的Elahere,实现了更深度的肿瘤退缩。
毒理表现:在ICR小鼠的单次静脉注射(IV)给药研究中:测试剂量推到了60, 80, 100 mg/kg。无动物死亡,未观察到治疗相关的临床症状;整个研究期间体重稳定;血液学和临床生化指标无显著异常;大体病理学也没有发现异常。
项目2——CTPH-03 (Celltrion Pharm)
结构:靶点为TROP2,采用MMAE与Payload X的双重协同策略,总DAR为2+2。
体内药效:在TROP2高/低表达模型中均表现出优于Trodelvy的抗肿瘤活性。对照组为 Trodelvy (10 mg/kg) 和 Datroway (10 mg/kg),而 CTPH-03 的给药剂量梯度为 2.5 mg/kg、5 mg/kg 和 10 mg/kg 。相较于 Trodelvy 和Datroway,CTPH-03 展现出了更强的肿瘤生长抑制能力。
毒理表现 (Tox):在ICR小鼠中MTD > 100 mg/kg,无显著血液学毒性。
项目3——YB-811(Ymmunobio AG)
结构:采用的是靶向 NPTXR 的人源化单克隆IgG1抗体。其体外结合亲和力极高,KD约为 0.2 nM 。载荷组合为:MMAF + Exatecan,DAR值4+4
体内药效:给药方案为每周一次腹腔注射(i.p.)。在T1016肿瘤模型中,10 mg/kg的 YB-811诱导了肿瘤的完全消退。膀胱癌PDX模型中10 mg/kg 的 YB-811 同样表现出显著的抗肿瘤活性。
项目4——Ab612(APITBIO)
结构:靶点为CD171 (L1CAM) ,采用的是优化的 IgG1 单克隆抗体。载荷:MMAE+Exatecan。该 ADC 技术平台支持 DAR2、DAR4 或 DAR8 的构建。
体内药效:在动物模型的数据上,Ab612-ADC 在3 mpk (mg/kg)的低剂量下,即可实现100% 的肿瘤消退。
项目5——CAN017(康威)
结构:同时靶向CLDN18.2 /PD-L1,载荷:MMAE + Exatecan,DAR值:2+2。
体内药效:小鼠结肠癌 CDX 模型 (CLDN18.2+/PD-L1+)、人胰腺癌 CDX 模型 (CLDN18.2+) 以及人胃癌 CDX 模型中,CAN017 展现出的肿瘤生长抑制效果,均显著优于其裸双抗、单载荷 ADC(CAN3609D(MMAE)或CAN3610D (Exatecan)以及这两种单载荷 ADC 的联用。
毒理数据:单次给药耐受性高达70 mg/kg,在给药后,小鼠的体重曲线保持平稳,没有出现显著下降。PK 分析显示其在血浆中具有出色的稳定性,游离毒素处于定量下限 (BQL) 以下。其整体治疗窗口大于23倍。
项目6——CAN016 (康威)
结构:CAN016的靶点为HER2,载荷为:MMAE+Exatecan,DAR值为2+2。
体内药效:CAN016在初始肿瘤体积已达到约 1000 mm³ 的 NCI-N87(高表达 HER2)和 JIMT-1(低表达 HER2)模型中,CAN016 均展现了抗肿瘤效果,优于T-DXd。在T-DXd耐药的HCC1954 CDX模型中,单剂量的 CAN016 显示出持续的药效。
毒理学数据:在GLP 食蟹猴毒理学研究中,确定的HNSTD为 20 mg/kg。
项目7——OBI-221(OBI)
结构:靶点为MET/HER3,载荷为MMAE+Exatecan,DAR值2+8
体内药效:无论是在靶点低、中还是高表达的模型中,OBI-221 均展现出抗肿瘤活性。即使在MET和HER3表达不对称的肿瘤模型中,OBI-221的体内疗效依然显著优于单靶点的基准 ADC 药物。
项目8——XYD-8006(昆山新蕴达)
结构:靶点为ADAM9,抗体亚型采用的是人源化的IgG1。载荷:MMAE + Exatecan。DAR值:2+6。
体内药效:XYD-8006 展现了强大的杀伤力,并且能克服靶点表达丰度的限制:
中高表达模型 (肺癌 Calu-3):XYD-8006的TGI达到了 89.46%。显著优于单载药的XYD-8006-EXD DAR4 (54.72%) 。中低表达模型 (喉癌 Detroit-562):XYD-8006的TGI为 81.69%。低表达模型 (结直肠癌 SW48):XYD-8006 的 TGI 达到了85.20%。
PK数据:XYD-8006 在人类和食蟹猴的血浆中均表现出极佳的稳定性。在长达21天的测试期内,几乎检测不到游离的Exatecan或MMAE毒素脱落。
项目9:STRO227(Sutro)
结构:靶点为PTK7,载荷为MMAE+Exatecan,DAR值:2+8
体内药效数据:在乳腺癌CDX模型中,STRO-227 展现了剂量依赖性抗肿瘤活性。更重要的是,在同等剂量下,STRO-227 的疗效显著优于单一载荷 MMAE 或 Exatecan 的对照 ADC。
在TNBC和卵巢癌的 PDX 模型中,2-3 mg/kg 剂量下即观察到显著的肿瘤抑制。NSCLC PDX测试:在包含腺癌和鳞癌的非小细胞肺癌 PDX 模型中,STRO-227的ORR为 57% ,DCR为76%
食蟹猴中多次静脉给药 (25 mg/kg, Q3W x 2) 后,STRO-227 展现出优秀的 PK 特征。系统清除率低,终末半衰期长(约10.5天)
STRO-227的HNSTD为25 mg/kg,25 mg/kg剂量下未观察到显著体重下降。
项目10:Sutro's dpADC(Sutro)
结构:靶点为HER2,载荷组合:Exatecan+MTI,DAR值8+4。
体内药效:在体内的CDX 模型中,该 dpADC 的抗肿瘤活性均显著优于Enhertu。
超越单载药与联用:在卵巢癌模型中,dpADC 诱导的肿瘤抑制和生长延迟不仅优于单一载荷的 ADC,甚至显著优于两种单载药荷 ADC 的联合给药(尽管联合给药组的总给药剂量达到了 20mg/kg,是 dpADC 单药 10mg/kg 的两倍)。
克服Enhertu 耐药:在 Enhertu 耐药胃癌模型和卵巢癌模型中,dpADC 均能引发显著的肿瘤退缩,大幅延长无进展生存期 (EFS)。
非人灵长类 (NHP) 毒理数据:在食蟹猴中进行的毒理学分析(12.5 mg/kg IV,第1天和第22天,Q3Wx2)显示, HNSTD 为12.5 mg/kg。
项目11——YL413(宜联生物)
结构:靶点为HER2,载荷为Top1+MTi,DAR值为7+1
体内药效:在 HER2 高表达的胃癌模型 (NCI-N87 CDX) 和 HER2 中表达的乳腺癌模型 (JIMT-1 CDX) 中,YL413 的肿瘤抑制效果均优于 Enhertu。
克服Enhertu耐药:在经过Enhertu 预处理产生耐药的 PDX 模型中,以及对 Enhertu 明确耐药的 NCI-N87 (CDX) 模型中, YL413 显示出疗效。
循环稳定性:在猴单次静脉注射剂量达 24 mg/kg 的情况下,表现出良好的耐受性。
项目12——DR319(道尔生物)
结构:靶点为Trop2/Nectin4,载荷为Top1+MTi,DAR值为4+2
体内药效:在 HT1376 模型中,DR319-DP 仅用1/8 的剂量 (1 mg/kg),就实现了与 PADCEV (8 mg/kg) 或 PADCEV+SKB264 物理联用组 (4+4 mg/kg) 相当甚至更优的抗肿瘤疗效。
在食蟹猴体内的初步毒理和药代动力学 (PK) 研究中,DR319-DP 展现出了良好的 PK 谱和安全性特征。
小结
双载荷ADC的设计重点已经不只是简单叠加载荷,而是围绕载荷机制互补、DAR比例、连接子稳定性和靶点内吞效率进行系统优化。
相比药效,毒理数据更值得关注。部分分子已披露小鼠高剂量耐受数据,剂量最高推进至70、100mg/kg以上;也有项目披露了食蟹猴毒理结果,HNSTD达到12.5–20mg/kg。整体来看,双载荷设计关键取决于血浆稳定性、游离payload暴露、释放节奏以及靶点依赖性递送效率。
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