摘 要:目的 观察祛寒逐风合剂对胶原诱导型关节炎(collagen induced arthritis,CIA)大鼠的影响,并探讨其作用机制。方法 SD大鼠随机分出12只作为正常组,其余65只采用尾根部皮下注射胶原乳剂制备CIA大鼠模型。将造模成功的60只大鼠随机分为模型组,甲氨蝶呤组,祛寒逐风合剂低、中、高剂量组,连续4周灌胃相应药物。实验期间测定足跖肿胀度和关节炎指数(AI)。给药4周后,HE染色观察踝关节组织病理学变化;ELISA检测血清C-反应蛋白(CRP)、肿瘤坏死因子(TNF)-α、白细胞介素(IL)-1、IL-1β、IL-6水平;Western blot检测膝关节滑膜组织中Janus激酶2(JAK2)、信号转导和转录激活因子3(STAT3)、磷酸化JAK2(p-JAK2)、p-STAT3蛋白表达;RT-qPCR检测膝关节滑膜组织中JAK2、STAT3 mRNA水平;免疫组化检测基质金属蛋白酶(MMP)-1、MMP-3、MMP-13表达。结果 与模型组比较,祛寒逐风合剂中、高剂量均能降低大鼠足跖肿胀度,改善踝关节病理变化,减少血清中CRP、TNF-α、IL-1、IL-1β、IL-6等炎症因子的分泌(P<0.01),下调滑膜组织中JAK2、STAT3的蛋白与mRNA表达,以及p-JAK2/JAK2、p-STAT3/STAT3水平(P<0.05),抑制踝关节中MMP-1、MMP-3、MMP-13的阳性表达(P<0.01)。结论 祛寒逐风合剂可有效改善类风湿关节炎模型大鼠足跖肿胀度、踝关节病理变化与炎症因子分泌,其作用机制可能与调控JAK2/STAT3信号通路有关。
关键词:祛寒逐风合剂;类风湿关节炎;CIA大鼠;JAK2/STAT3信号通路
引用格式:
[1]苏小军,郭影,朱文菊,等.基于JAK2/STAT3信号通路探讨祛寒逐风合剂治疗类风湿关节炎的作用机制[J].中国中医基础医学杂志,2025,31(8):1373-1378.
DOI:10.19945/j.cnki.issn.1006-3250.2025.08.011.
中
医
ZGZYJC
类风湿关节炎(rheumatoid arthritis,RA)是一种以关节侵蚀破坏为主要特征的全身性自身免疫疾病,其临床病理特征为炎性细胞浸润,滑膜细胞异常增殖,血管翳生成,最终导致软骨破坏和骨损伤,甚至永久性残疾[1]。目前治疗RA的药物主要有非甾体抗炎药、糖皮质激素、改善病情抗风湿药、生物制剂等,但长期服用多会发生胃肠道不适、肝肾损害、感染、骨髓造血障碍等不良反应[2-3]。
祛寒逐风合剂(以下简称合剂)为甘肃省中医院院内制剂(备案号:甘药制字Z04000849),源自武威汉代医简中的“伤寒逐风方”,由附子、川乌、白术、细辛、花椒、泽泻、川芎、秦艽、威灵仙、龟甲、鳖甲11味中药组成,具有逐风除湿、温经活络、活血止痛、益肾强筋的功效,中医临床用其治疗风寒湿痹证具有较好疗效。目前,其抗RA的药理作用及机制尚不明确。本研究拟采用胶原诱导型关节炎(collagen induced arthritis,CIA)大鼠模型探究合剂抗RA的作用及可能机制,为临床用药以及该药的进一步开发提供实验基础。实验方案已通过兰州市食品药品检验检测研究院实验动物伦理审查委员会审批,编号:2023-003。1 材料1.1 动物
SPF级SD雄性大鼠,体质量180~220 g,购于兰州大学实验动物中心,动物生产许可证号:SCXK(甘)2018-0002。实验前大鼠在兰州市食品药品检验检测研究院SPF级实验动物区适应性饲养3天,室温(20±2)℃,相对湿度(55±10)%,自由饮食。1.2 主要药物与试剂
祛寒逐风合剂(甘肃省中医院院内制剂,甘药制字:Z04000849,批号:22092,规格:250 mL/瓶,含生药量:1.877 5 g/mL);甲氨蝶呤片(上海上药信谊药厂有限公司,批号:197220807,规格:2.5 mg/片)。
免疫级牛Ⅱ型胶原蛋白冻干粉(货号:20021),美国Chondrex公司;不完全弗氏佐剂(货号:7002),美国Chondrex公司;乙酸(货号:20210511),国药集团化学试剂有限公司;C-反应蛋白(CRP)ELISA试剂盒(货号:YX-E20998)、肿瘤坏死因子(TNF)-α ELISA试剂盒(货号:YX-E21174)、白细胞介素(IL)-6 ELISA试剂盒(货号:YX-E21185)、IL-1 ELISA试剂盒(货号:YX-E20957)、IL-1β ELISA试剂盒(货号:YX-E20958),上海优选生物科技有限公司;苏木素(货号:G1080)、伊红(货号:G1100),北京索莱宝科技有限公司;Janus激酶2(JAK2)抗体(货号:bs-0908R)、磷酸化JAK2(p-JAK2)抗体(货号:bs-3206R)、信号转导和转录激活因子3(STAT3)抗体(货号:bsm-52235R)、p-STAT3抗体(货号:bs-1658R),北京博奥森生物技术有限公司;二抗(货号:ab6721),艾博抗(上海)贸易有限公司;RNA提取试剂盒(货号:10606ES60),翌圣生物科技(上海)股份有限公司;逆转录试剂盒(货号:R202-02),新贝(上海)生物科技有限公司;基质金属蛋白酶(MMP)-1抗体(货号:10371-2-AP)、MMP-3抗体(货号:17873-1-AP)、MMP-13抗体(货号:18165-1-AP),武汉三鹰生物技术有限公司。1.3 主要仪器
Infinite F50型酶标仪,瑞士帝肯贸易有限公司;Gentier 96R型实时定量PCR仪,西安天隆科技有限公司;JB-P5型包埋机,武汉俊杰电子有限公司;RM2016型病理切片机,上海徕卡仪器有限公司;UB102i型光学显微镜,重庆澳浦光电技术有限公司;NanoZoomer-SQ型扫描仪,日本滨松光子学商贸有限公司;JY-ZY5型转膜仪、JY-SCZ型电泳仪,北京君意东方电泳设备有限公司。2 方法2.1 胶原乳剂与药物制备
胶原乳剂制备:取0.05 mol/L的乙酸溶液5 mL,置于10 mg牛Ⅱ型胶原蛋白冻干粉中,混合均匀,配成浓度为2 mg/mL的胶原溶液,4 ℃冰箱过夜备用。将不完全弗氏佐剂与胶原溶液等体积混合,使用涡旋振荡器在冰浴条件下乳化。
合剂浓缩液制备:80 ℃水浴下,分别将107、214、429 mL合剂浓缩至100 mL,制得含生药2.01、4.02、8.05 g/mL的浓缩液,4 ℃保存备用。
甲氨蝶呤混悬液制备:将3.5 g甲氨蝶呤溶于50 mL的0.9%氯化钠溶液中,制成含原药浓度为0.07 mg/mL的混悬液,4 ℃保存备用。2.2 CIA大鼠模型的复制与鉴定
SD大鼠随机分出12只作为正常组。除正常组外,其余65只大鼠尾根部皮下注射0.1 mL胶原乳剂,1周后同样方法进行二次免疫[4-5]。2周后进行关节炎指数(AI)评分,4只足爪单独计分,每只鼠最高得分16分,AI≥2分则视为造模成功。评分标准如下。0分:无红肿;1分:小趾关节轻度红肿;2分:趾关节和足踝关节肿胀;3分:踝关节以下的足爪肿胀;4分:包括踝关节在内的全部足爪均出现肿胀。2.3 分组与给药
取造模成功的大鼠,按照随机数字表法分为模型组、甲氨蝶呤组与合剂低、中、高剂量组。于造模结束后给药。按照70 kg成人临床剂量折算出大鼠等效剂量,祛寒逐风合剂成人用量为150 mL/d,即相当于生药量4.02 g/kg。甲氨蝶呤组大鼠每周灌胃2次,合计给药剂量为每周1.4 mg/kg(相当于成人等效剂量的1.6倍);合剂低、中、高剂量组大鼠每天分别灌胃20.1 g/kg、40.2 g/kg、80.5 g/kg(相当于成人等效剂量的0.8、1.6、3.2倍)剂量的中药浓缩液;正常组和模型组给予等容量0.9%氯化钠溶液。灌胃体积均为1 mL/100 g,连续给药4周。2.4 足跖肿胀度及AI评分测定
采用容积法测定大鼠足跖肿胀度,于造模前及造模后每周测量1次。同时,根据既定评分标准进行AI评分,量化炎症程度[6]。2.5 ELISA检测血清炎症因子
末次给药后所有大鼠禁食不禁水12 h,麻醉后腹主动脉取血,收集各组大鼠血清,按照ELISA试剂盒说明书步骤检测血清中CRP、TNF-α、IL-1、IL-1β、IL-6水平。2.6 HE染色观察踝关节组织病理
大鼠脱颈椎处死,剪取病变踝关节,4%多聚甲醛溶液固定,依次进行脱钙、固定、脱水、石蜡包埋、4 μm切片、HE染色等步骤,全片白光扫描后,经Slide Viewer软件观察并截图。2.7 RT-qPCR检测JAK2、STAT3 mRNA水平
大鼠脱颈椎处死后,仰面固定四肢,以膝关节为中心纵行切开皮肤,环绕韧带三面逐层打开关节腔,紧贴髌骨的一层呈淡黄色的组织即为滑膜组织,剥离膝关节滑膜组织,保存于-80 ℃冰箱。Trizol试剂提取总RNA,将RNA逆转录为cDNA,以β-actin为内参基因,采用2-△△Ct法计算JAK2、STAT3 mRNA的相对表达。PCR 引物由上海优选生物科技有限公司设计合成,引物序列见表1。
表1 引物序列
2.8 Western blot检测JAK2、STAT3、p-JAK2、p-STAT3蛋白表达
取膝关节滑膜组织提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度,制备12%的分离胶和5%的浓缩胶,进行电泳、转膜、封闭、洗涤后,加入JAK2抗体、p-JAK2抗体、STAT3抗体、p-STAT3抗体(1∶1000),4 ℃孵育过夜,TBST洗膜3次,山羊抗兔二抗(1∶4000)室温孵育1 h,洗膜,加入显影液。以GAPDH为内参,经Image J软件量化各条带灰度值。2.9 免疫组化检测MMP-1、MMP-3、MMP-13阳性表达
取踝关节组织石蜡切片,烤片、脱蜡复水、抗原修复、封闭、一抗孵育(1∶200)、二抗孵育、显色、复染、封片,显微镜下观察,每张图片随机选取3个高倍镜视野(×20)进行图像分析,用Image J检测阳性区域的平均光密度值,计算大鼠踝关节中MMP-1、MMP-3、MMP-13的阳性表达。2.10 统计学方法
采用SPSS 27.0软件进行数据分析,计量资料以均数±标准差表示,多组间比较采用单因素方差分析及多重比较,方差齐时采用LSD检验,方差不齐时采用塔姆黑尼检验,P<0.05代表差异具有统计学意义。3 结果3.1 足跖肿胀度比较
本次实验共有61只大鼠造模成功,随机取60只进行分组。与正常组比较,模型组大鼠足跖肿胀度显著升高(P<0.01),且在造模期间持续增长,第3周、4周、5周、6周时均显著高于正常组(P<0.01)。与模型组比较,甲氨蝶呤组与合剂低、中、高剂量组大鼠从第4周起足跖肿胀度均明显降低(P<0.05)。结果见表2。
表2 合剂对大鼠足跖肿胀度的影响
注:与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.05,cP<0.013.2 AI评分比较
与正常组比较,模型组大鼠AI评分在第2周、3周、4周、5周、6周明显升高(P<0.01)。与模型组比较,甲氨蝶呤组大鼠AI评分在第5周、6周明显降低(P<0.01),合剂低、高剂量组大鼠AI评分在第4周、5周、6周均明显降低(P<0.05),合剂中剂量组大鼠AI评分在第5周、6周均明显降低(P<0.05)。结果见表3。
表3 合剂对大鼠AI评分的影响
注:与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.05,cP<0.013.3 踝关节组织病理学比较
如图1所示,正常组大鼠踝关节滑膜细胞排列整齐,未见炎性细胞浸润和滑膜组织增生,未发生软骨破坏。模型组大鼠滑膜组织中有大量炎性细胞浸润,出现滑膜和纤维组织增生,关节表面层次紊乱,骨侵蚀严重。与模型组比较,甲氨蝶呤组,合剂低、中、高剂量组大鼠踝关节滑膜组织炎性细胞浸润、滑膜纤维增生和骨侵蚀情况均有不同程度改善,其中以甲氨蝶呤组和合剂高剂量组最为明显。
A.正常组;B.模型组;C.甲氨蝶呤组;D.合剂低剂量组;E.合剂中剂量组;F.合剂高剂量组
图1 合剂对大鼠踝关节组织病理学的影响(HE,×20)3.4 血清炎症因子表达比较
与正常组比较,模型组大鼠血清中CRP、TNF-α、IL-1、IL-1β、IL-6含量明显升高(P<0.01)。与模型组比较,各用药组大鼠血清中CRP、TNF-α、IL-1、IL-1β、IL-6含量显著降低(P<0.01)。结果见图2。
注:与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.01
图2 合剂对大鼠血清炎症因子水平的影响(n=12)3.5 踝关节JAK2/STAT3通路相关基因水平比较
与正常组比较,模型组大鼠踝关节组织中JAK2、STAT3 mRNA表达水平明显升高(P<0.01)。与模型组比较,合剂高、中、低剂量组和甲氨蝶呤组大鼠踝关节组织中JAK2、STAT3 mRNA表达水平均显著降低(P<0.01)。结果见图3。
注:与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.01
图3 合剂对大鼠踝关节组织中JAK2、STAT3 mRNA水平的影响(n=6)3.6 踝关节JAK2/STAT3通路相关蛋白表达比较
与正常组比较,模型组大鼠踝关节组织中JAK2、STAT3、p-JAK2/JAK2、p-STAT3/STAT3水平显著升高(P<0.01)。与模型组比较,合剂高、中剂量组和甲氨蝶呤组大鼠踝关节组织中JAK2、STAT3、p-JAK2/JAK2、p-STAT3/STAT3水平明显降低(P<0.05);合剂低剂量组JAK2蛋白表达水平也明显下降(P<0.01)。结果见图4。
注:与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.05,cP<0.01
图4 合剂对大鼠踝关节组织中JAK2/STAT3通路蛋白水平的影响(n=3)3.7 踝关节MMP-1、MMP-3、MMP-13表达水平比较
如图5所示,MMP-1、MMP-3、MMP-13阳性表达定位于胞膜,着色为棕黄色。与正常组比较,模型组大鼠踝关节MMP-1、MMP-3、MMP-13阳性表达明显增强(P<0.05)。与模型组比较,合剂低剂量组大鼠踝关节MMP-1、MMP-3阳性表达降低(P<0.01);甲氨蝶呤组与合剂中、高剂量组MMP-1、MMP-3、MMP-13阳性表达均显著降低(P<0.01)。表明合剂可下调踝关节中MMP-1、MMP-3、MMP-13的阳性表达。
注:图中黑框区域为阳性表达区;与正常组比较aP<0.01;与模型组比较bP<0.05,cP<0.01
图5 合剂对大鼠踝关节组织中MMP-1、MMP-3、MMP-13表达的影响4 讨论
RA是常见的自身免疫性疾病,以滑膜病变和骨破坏为主要临床表现。RA病情缠绵难愈、易反复发作、致残率高,严重影响患者的生活质量,被视为“不死的癌症”。据流行病学调查,RA全球患病率约为1%,且女性患病率约为男性的3倍[7-8]。炎症因子异常增多是RA的病理生理特征性表现之一。其中,CRP作为评估RA全身炎症的重要指标,不仅与关节组织炎症评分及疾病活动度呈显著正相关,还具有促进破骨细胞分化的生物学效应[9]。IL-1作为免疫炎症反应的关键细胞因子,常与TNF-α协同表达,二者共同参与关节软骨的破坏过程[10]。其中IL-1β是IL-1的主要活性亚型,可通过促进环氧化酶(COX)-2和MMPs等因子的合成与释放,刺激滑膜细胞和淋巴细胞增殖,从而加剧炎症反应和关节骨损伤[11-12]。IL-6则主要介导破骨细胞及成纤维样滑膜细胞的活化,促进血管翳形成,并能正向调节TNF-α和IL-1的分泌,形成炎症级联反应,进一步加重关节和软骨组织的损伤[13]。本实验结果显示,模型组大鼠血清CRP、TNF-α、IL-1、IL-1β和IL-6水平均显著升高。经合剂干预后,各剂量均能有效抑制上述炎症因子的分泌,证实其可通过调控多重炎症通路发挥抗RA作用。
既往研究证明,JAK2/STAT3参与了多种疾病的发生与发展,在调节炎症反应与细胞增殖、分化、凋亡等生理病理过程中发挥重要作用[14]。在RA发病过程中,TNF-α、IL-6、IL-1、IL-1β等炎症因子均可激活JAK2激酶,使其发生磷酸化,磷酸化的JAK2进一步诱导STAT3磷酸化,最终,磷酸化STAT3二聚化并从细胞质转移到细胞核内,启动下游相关基因,引发级联反应[15-16]。本次实验结果显示,模型组大鼠JAK2/STAT3信号通路关键分子的mRNA和蛋白表达水平均显著上调;经合剂干预后,该通路相关mRNA及蛋白表达均被显著抑制,表明合剂可通过调控JAK2/STAT3信号通路活性发挥治疗作用,从而延缓疾病进展。JAK/STAT信号通路的持续激活可促进MMPs表达上调,进而导致软骨细胞凋亡增加及滑膜组织抗凋亡能力增强[17]。临床研究证实,RA患者滑膜液中存在MMPs的异常高表达[18]。其中,MMP-1、MMP-3和MMP-13作为MMPs家族的主要效应分子,不仅参与胶原降解过程[19-20],还在软骨破坏、关节炎症及血管翳形成等病理过程中发挥关键作用[21]。本研究发现,合剂各剂量均能显著下调MMP-1、MMP-3和MMP-13的表达水平,这可能是其缓解RA骨破坏的重要机制。
综上,合剂可通过多靶点作用发挥治疗效应:①调控炎症因子网络;②抑制JAK2/STAT3信号通路活化;③降低MMPs表达水平。这些作用共同改善了RA大鼠的关节炎症和骨损伤,初步阐明了合剂的治疗机制,为后续深入研究提供了实验依据。
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文章编号:
1006-3250(2025)08-1373-06
原文下载:
苏小军,郭影,朱文菊,等.基于JAK2/STAT3信号通路探讨祛寒逐风合剂治疗类风湿关节炎的作用机制 .发表于《中国中医基础医学杂志》2025年第31卷第8期
编 辑:黄晓华
审 核:于 峥