摘要:科学家们正在探索一种革命性的治疗方法,利用寄生虫突破血脑屏障,将大分子药物直接送入大脑,为脑部疾病的治疗开辟全新途径[1]。这个突破性的研究或将改变我们应对复杂脑部疾病的方式。
大脑是人体中最复杂的器官,维持其正常功能的一个关键要素是“血脑屏障”(Blood-Brain Barrier)。血脑屏障是大脑与血液循环系统之间的一道屏障,由密集的毛细血管和特殊的细胞层组成。它的主要作用是保护大脑免受有害物质的侵害,维持大脑内部环境的稳定[2]。然而,这道屏障在阻挡有害物质的同时,也使许多药物难以进入大脑,给脑部疾病的治疗带来了巨大的挑战。
探索利用血脑屏障特性的创新治疗策略
血脑屏障能够有效阻止大部分大分子物质进入大脑,只有一些小分子和脂溶性物质能够通过扩散的方式穿越这道屏障。这种特性会导致许多治疗脑部疾病的药物,尤其是大分子药物,如蛋白质药物、抗体药物等,无法通过常规手段进入大脑。这极大地限制了脑部疾病的治疗选择和效果。
为了突破血脑屏障,科学家们提出了多种方法。例如,通过使用转铁蛋白受体让药物借用铁离子的运输路径进入大脑,或利用纳米颗粒和病毒载体直接将药物递送到脑中。这些方法虽然在一定程度上解决了问题,但通常存在效率低、技术复杂、成本高昂等问题,仍然无法满足临床应用的需求。
弓形虫——突破血脑屏障的“药物运输工具”?
为了解决血脑障碍的药物输送问题,研究人员另辟蹊径地提出一种全新的思路:利用寄生虫——弓形虫来突破血脑屏障。弓形虫是一种微小的寄生虫,通常以猫为最终宿主。研究发现,弓形虫具有独特的能力,能够突破血脑屏障,进入宿主的大脑,并寄生在神经细胞内。基于这一特性,研究人员设想,能否利用弓形虫的这种能力,将治疗脑疾病的大分子药物送入大脑。
为了验证这一设想,研究人员通过基因工程手段,对弓形虫进行了改造。他们将治疗蛋白质的DNA片段插入弓形虫的基因组,使弓形虫在感染宿主时,不仅能够突破血脑屏障,还能携带这些治疗蛋白质进入大脑的神经细胞内,并释放出来。这一技术的核心在于利用弓形虫的天然能力,将其改造成一个可以穿越血脑屏障的“药物运输工具”[3][4]。
经过初步实验研究人员发现,改造后的弓形虫确实能够携带药物进入小鼠的大脑,并且这些药物在神经细胞内表现出了一定的生物活性。这表明,弓形虫有潜力成为一种有效的药物递送载体,用于治疗脑部疾病。
利用寄生虫突破血脑屏障的挑战与趋势
尽管这项研究展示了利用弓形虫突破血脑屏障的潜力,但当前技术还面临一些挑战。首先,弓形虫在大脑中感染神经元的比例较低,导致递送的药物浓度不足,难以产生显著的治疗效果。其次,弓形虫在宿主细胞内的行为机制还不完全清楚,这限制了对其进行进一步优化的可能性。
为了解决这些问题,研究人员提出了一些未来的优化方向。例如,增加弓形虫的使用量、改进基因改造技术、筛选出突破血脑屏障能力更强的弓形虫株系,以及探索不同的基因改造策略,以提高药物递送的效率[3]。这些改进有望提升弓形虫作为药物递送载体的效果,使其在脑部疾病治疗中发挥更大的作用。
总的来说,利用弓形虫突破血脑屏障的研究为脑部疾病的治疗开辟了一条全新的道路。尽管目前这一技术还处于初期阶段,且存在一定的挑战,但其潜在的应用价值不容忽视。随着进一步的研究和技术优化,弓形虫可能成为未来治疗复杂脑部疾病的一种革命性工具,开启脑部疾病治疗的新纪元。这项研究不仅拓展了我们对血脑屏障的理解,还展示了生物工程在医学领域的广泛应用潜力。
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参考文献:
[1] Bracha, S., Johnson, H.J., Pranckevicius, N. A., Catto, F., Economides, A. E., Litvinov, S., ... & Rechavi, O. (2024).Engineering Toxoplasma gondii secretion systems for intracellular delivery of multiple large therapeutic proteinsto neurons. Nature Microbiology, 1-22.
[2] Kadry, H., Noorani, B., & Cucullo, L. (2020). A blood–brain barrier overview on structure, function, impairment,and biomarkers of integrity. Fluids and Barriers of the CNS, 17(1), 69–69.
[3] Boothroyd, J. C., & Dubremetz, J.-F. (2008). Kiss and spit: the dual roles of Toxoplasma rhoptries. NatureReviews. Microbiology, 6(1), 79–88.
[4] Rosenberg, A., & Sibley, L. D. (2021). Toxoplasma gondii secreted effectors co-opt host repressor complexes to inhibit necroptosis. Cell Host & Microbe, 29(7), 1186-1198.e8.
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