CLDN4

点击上方蓝字 关注我们 引用本文 中国研究型医院学会病理学专业委员会，上海市抗癌协会肿瘤病理专业委员会. 间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）［J］. 中国癌症杂志, 2024, 34 (12): 1144-1166. 第一执笔人：朱培培，复旦大学附属肿瘤医院病理科，复旦大学上海医学院肿瘤学系。 通信作者：李媛，主任医师，教授，复旦大学附属肿瘤医院病理科副主任；张智弘，主任医师，教授，江苏省人民医院病理科主任；林冬梅，主任医师，教授，北京大学肿瘤医院病理科主任；高鹏，主任医师，教授，山东大学齐鲁医院病理科主任；王坚，主任医师，教授，复旦大学附属肿瘤医院病理科主任。 第一执笔人简介 朱培培，复旦大学附属肿瘤医院，病理科，主治医师。 擅长软组织肿瘤和间皮瘤诊断，以第一作者在Am J Surg Pathol、Histopathology、Virchow Archiv和中华病理学杂志等中外期刊上发表论文10多篇，参编《软组织肿瘤病理学》(第3版）。 通信作者简介 王坚，复旦大学附属肿瘤医院病理科主任  主任医师 ，博士生导师。中华医学会病理学分会常委，中国研究型医院病理专业委员会主任委员，中国医师协会病理分会副会长，中国老年医学会病理分会副会长，中国抗癌协会肿瘤病理专业委员会副主委，上海市临床病理质控中心主任，《中华病理学杂志》《临床与实验病理学杂志》《中国癌症杂志》副主编。 间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版） 中国研究型医院学会病理学专业委员会，上海市抗癌协会肿瘤病理专业委员会 ［摘要］ 为了进一步提高中国间皮瘤的病理学诊断水平和病理学报告规范性，为病理科医师在临床实践中提供借鉴证据，为临床治疗和患者预后判断提供重要信息，中国研究型医院学会病理学专业委员会和上海市抗癌协会肿瘤病理专业委员会组织138位来自国内28个省市自治区的专家，组建《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》制定专家团，设立指南工作组，涵盖病理、影像、肿瘤内科、胸外科、肿瘤预防、流行病学与卫生统计学等多学科，本着科学化、规范化、透明化和制度化的原则，基于现有循证医学证据，在文献检索和证据收集基础上，围绕间皮瘤病理学诊断最新进展，聚焦间皮瘤病理学诊断原则、免疫组织化学标志物和分子病理学检测，依据推荐分级的评估、制订和评价系统（Grading of Recommendations，Assessment，Development and Evaluation，GRADE）对循证医学证据质量和专家推荐意见强度进行质量等级分级和证据综合，采用德尔菲问卷调查法和共识会议法相结合，就间皮瘤病理学诊断相关“陈述”进行专家函询和投票审议，去重、合并和汇总临床问题，形成推荐意见。参照卫生保健实践指南报告条目（the Reporting Items for practice Guidelines in HealThcare，RIGHT）起草《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》初稿，召开专家会议进行审核，并送外审专家评议，综合审定意见进行修改，形成终稿。本指南的目标人群为间皮瘤患者，使用人群为从事间皮瘤病理学诊断和辅助检测的医务工作者。本指南在国际实践指南注册与透明化平台（http://www.guidelines-registry.org）进行中英文双语注册，注册号为PREPARE-2024CN672，所撰写的指南计划书可从平台获取。 ［关键词］ 间皮瘤；病理学；诊断；指南 ［Abstract］ To improve the quality of pathologic diagnosis and enhance the standardization in pathological report of mesothelioma, Expert Committee on Pathology of Chinese Research Hospital Association and Professional Committee on Oncopathology of Shanghai Anticancer Association set up an expert team and establish guideline working groups, which embrace139 mutidisciplinary experts nationwide covering pathology, radiology, oncology, thoracic surgery, epidemiology and health statistics. Based on the principles of scientification, standardization, transparency and institutionalization with adherence to the international guidelines writing standards and guiding principles for the formulation/revision of clinical diagnosis and treatment guidelines in China, experts adopt evidence-based medicine methods, keep updated on the newest progress, focus on the diagnostic principles, immunohistochemistry and molecular pathology, establish quality evaluation and evidence summary, utilize the GRADE system and Delphi method in combination with multidisciplinary expert meetings, draft, modify and finalize this version of practice guideline for the histopathological diagnosis of mesothelioma. The target population and audience of the guideline center on patients with mesothelioma, whereas the users are medical staff engaged in pathological diagnosis and auxiliary testing of mesothelioma. This guideline has been registered in Practice Guide Registration for TransPAREncy (PREPARE) (http://www.guidelines-registry.org), with registration number PREPARE-2024CN672. The plan of the guideline can be obtained from the platform.  ［Keywords］ Mesothelioma；Pathology；Diagnosis；Guideline 《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》 工作组 首席专家兼利益冲突管理委员会（6人） 李    媛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 盛伟琪 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 王    坚 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 张智弘 | 江苏省人民医院病理科 林冬梅 | 北京大学肿瘤医院病理科 高    鹏 | 山东大学齐鲁医院病理科 指导专家组（15人） 王    坚 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 李    媛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 张智弘 | 江苏省人民医院病理科 盛伟琪 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 陈    刚 | 福建省肿瘤医院病理科 高洪文 | 吉林大学第二医院病理科 高    鹏 | 山东大学齐鲁医院病理科 梁    莉 | 南方医科大学病理学系 林冬梅 | 北京大学肿瘤医院病理科 苏    丹 | 浙江省肿瘤医院病理科 梅金红 | 南昌大学第一附属医院病理科 夏庆欣 | 河南省肿瘤医院病理科 张    巍 | 新疆医科大学第一附属医院病理科 王立峰 | 上海交通大学附属新华医院病理科 侯英勇 | 复旦大学附属中山医院病理科 秘书组（4人） 朱培培 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 黄子凌 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 倪淑娟 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 刘绮颖 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 文献检索小组（3人） 朱培培 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 黄子凌 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 刘绮颖 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 临床问题遴选和确定组（8人） 朱培培 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 黄子凌 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 刘绮颖 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 李    媛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 王    坚 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 张智弘 | 江苏省人民医院病理科 林冬梅 | 北京大学肿瘤医院病理科 高    鹏 | 山东大学齐鲁医院病理科 证据评价组（5人） 李    媛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 王    坚 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 张智弘 | 江苏省人民医院病理科 林冬梅 | 北京大学肿瘤医院病理科 高    鹏 | 山东大学齐鲁医院病理科 共识组 （138人，按作者姓氏拼音首字母顺序排序） 白    聪 | 大同市第一人民医院病理科 白雪峰 | 包头市肿瘤医院病理科 曾    弘 | 中山大学孙逸仙纪念医院病理科 陈国荣 | 温州医科大学附属第一医院病理科 陈健宁 | 中山大学附属第三医院病理科 陈    军 | 广西医科大学第二附属医院病理科 陈    骏 | 南京大学医学院附属鼓楼医院病理科 陈林莺 | 福建医科大学附属第一医院病理科 陈    倩 | 中南大学湘雅三医院病理科 陈显兵 | 湖北民族大学附属民大医院病理科 陈志涛 | 贵州医科大学第二附属医院病理科 成志强 | 深圳市第三人民医院病理科 程    虹 | 空军军医大学西京医院病理科 崔晓宾 | 南京大学医学院附属鼓楼医院病理科 戴文斌 | 柳州市人民医院病理科 丁彩霞 | 陕西省肿瘤医院病理科 段泽君 | 首都医科大学三博脑科医院病理科 樊利芳 | 武汉大学中南医院病理科 方    威 | 黄山市人民医院病理科 冯振中 | 安徽医科大学第二附属医院病理科 高    鹏 | 山东大学齐鲁医院病理科 贡其星 | 江苏省人民医院/南京医科大学第一附属医院病理科 顾学文 | 江苏省苏北人民医院病理科 郭冰沁 | 蚌埠医学院附属医院病理科 韩龙哲 | 吉林省延吉市延边大学附属医院（延边医院）病理科 何妙侠 | 海军军医大学第一附属医院病理科 侯英勇 | 复旦大学附属中山医院病理科 胡余昌 | 宜昌市中心人民医院病理科 黄    波 | 辽宁省肿瘤医院病理科 黄传生 | 江西省肿瘤医院病理科 黄海建 | 福建大学附属省立医院病理科 黄    瑾 | 上海交通大学附属第六人民医院病理科 黄文勇 | 南昌大学第二附属医院病理科 黄永塔 | 广西壮族自治区人民医院病理科 贾    薇 | 石河子大学第一附属医院病理科 姜    影 | 广东省前海人寿韶关医院病理科 蒋    冰 | 辽宁省肿瘤医院病理科 金玉兰 | 北京妇产医院病理科 李晟磊 | 郑州大学第一附属医院病理科 李东海 | 兰州市第一人民医院病理科 李国生 | 宁波市临床病理诊断中心病理科 李红玲 | 佛山市中医院病理科 李红霞 | 江苏省人民医院/南京医科大学第一附属医院病理科 李剑敏 | 温州医科大学附属第一医院病理科 李巧新 | 新疆医科大第一附属医院病理科 李    青 | 常州第一人民医院病理科 李新霞 | 新疆医科大学附属肿瘤医院病理科 李    雪 | 首都医科大学附属北京朝阳医院病理科 李    媛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 力    超 | 福建省肿瘤医院病理科 林冬梅 | 北京大学附属肿瘤医院病理科 林晓燕 | 山东第一医科大学附属省立医院病理科 刘从容 | 北京大学第三医院病理科 刘飞飞 | 济宁医学院附属医院病理科 刘绮颖 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 刘秋雨 | 河南省人民医院病理科 刘    希 | 西安交通大学第一附属医院病理科 刘    霞 | 深圳市第二人民医院病理科 刘银华 | 皖南医学院弋矶山医院病理科 刘志艳 | 上海交通大学附属第六人民医院病理科 卢    淼 | 深圳市坪山区中心医院病理科 鲁海珍 | 中国医学科学院肿瘤医院病理科 陆竞艳 | 桂林医学院附属医院病理科 罗志国 | 复旦大学附属肿瘤医院肿瘤内科 吕京澴 | 江苏省苏州市立医院本部病理科 马爱玲 | 宁夏医科大学总医院病理科 马建武 | 甘肃省兰州市解放军联勤保障部队第九四〇医院病理科 马    钰 | 陕西省人民医院病理科 梅金红 | 南昌大学第一病理中心附属医院病理科 孟宏学 | 哈尔滨医科大学附属肿瘤医院病理科 牛海艳 | 海南医学院第一附属医院病理科 牛    云 | 中日友好医院病理科 庞丽娟 | 广东医科大学附属湛江中心人民医院病理科 漆楚波 | 江西省人民医院病理科 齐晓薇 | 江南大学附属医院病理科 曲丽梅 | 吉林大学第一医院病理科 邵    睿 | 镇江市第一人民医院病理科 盛伟琪 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 盛    霞 | 复旦大学附属闵行医院病理科 苏    丹 | 浙江省肿瘤医院病理科 孙    虓 | 沈阳医学院附属中心医院病理科 孙    燕 | 天津医科大学肿瘤医院病理科 谭    娜 | 遵义医科大学附属医院病理科 田    琳 | 哈尔滨医科大学附属第一医院病理科 王丹丹 | 首都医科大学宣武医院病理科 王芙蓉 | 广东省惠州市中心人民医院病理科 王    坚 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 王进京 | 遵义医科大学附属医院病理科 王力夫 | 河南省人民医院病理科 王    娜 | 广州医科大学附属第三医院病理科 王素英 | 宁波市临床病理诊断中心病理科 王新根 | 北京大学深圳医院病理科 王    彦 | 青岛大学附属医院病理科 王    渝 | 华中科技大学同济医学院附属同济医院病理科 王    正 | 扬州大学附属医院病理科 王志蕙 | 临沂市肿瘤医院病理科 蔚    青 | 上海市第十人民医院病理科 魏建国 | 郑州大学第一附属医院病理科 文    敬 | 贵州省人民医院病理科 吴勇军 | 湘潭市中心医院病理科 吴又明 | 深圳恒生医院病理科 武春燕 | 上海市肺科医院病理科 郗彦凤 | 山西省肿瘤医院病理科 夏庆欣 | 河南省肿瘤医院病理科 谢南子 | 贵州省安顺市人民医院病理科 徐嘉雯 | 山东第一医科大学附属省立医院病理科 徐利芬 | 贵州医科大学附属医院病理科 徐新宇 | 江苏省肿瘤医院病理科 薛凤麟 | 昆明医科大学第一附属医院病理科 薛丽燕 | 中国医学科学院肿瘤医院病理科 杨    红 | 四川省肿瘤医院病理科 杨    丽 | 广西医科大学第二附属医院病理科 杨文涛 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 杨晓荣 | 遵义医科大学附属医院病理科 杨映红 | 福建医科大学附属协和医院病理科 余    昶 | 浙江省肿瘤医院病理科 岳君秋 | 湖北省肿瘤医院病理科 张    焕 | 新疆医科大学附属肿瘤医院病理科 张劲松 | 北京医院病理科 张丽娟 | 云南省肿瘤医院病理科 张玲玲 | 河北医科大学第四医院病理科 张庆玲 | 广东省人民病理科 张盛箭 | 复旦大学附属肿瘤医院放射科 张    巍 | 新疆医科大第一附属医院病理科 张亚伟 | 复旦大学附属肿瘤医院胸外科 张智弘 | 江苏省人民医院/南京医科大学第一附属医院病理科 张著学 | 贵州省人民医院病理科 赵苗青 | 山东省肿瘤医院病理科 赵晓丽 | 北京同仁医院病理科 赵紫琴 | 天津市天津医院病理科 郑    莹 | 复旦大学附属肿瘤医院肿瘤预防部 钟安菁 | 江苏大学附属医院病理科 钟艳平 | 吉林大学第一医院病理科 周    珏 | 宁波市临床病理诊断中心病理科 周    萍 | 山东省千佛山医院病理科 周晓莉 | 常州市第二人民医院病理科 朱培培 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 宗园媛 | 山东第一医科大学附属省立医院病理科 指南执笔组（3人） 朱培培 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 黄子凌 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 刘绮颖 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 外审组（2人） 柏乾明 | 复旦大学附属肿瘤医院病理科 张红梅 | 空军军医大学西京医院肿瘤科 间皮瘤（mesothelioma）在中国的发病率有逐年升高的趋势［1］。精准的病理学诊断和规范化病理学检查报告对间皮瘤临床治疗和患者预后判断至关重要。为建立间皮瘤组织病理学诊断规范，中国研究型医院学会病理学专业委员会和上海市抗癌协会肿瘤病理专业委员会组织了来自国内不同医院和不同领域的专家，本着科学化、规范化、透明化和制度化的原则，围绕间皮瘤最新进展，聚焦间皮瘤病理学诊断原则、免疫组织化学标志物和分子病理学检测，编撰间皮瘤组织病理学诊断指南，以期为病理科医师在临床实践中提供借鉴证据，提高中国间皮瘤病理学诊断的规范化水平。 1 指南制定方法 1.1  指南目的 进一步提高中国间皮瘤组织病理学诊断水平和病理学检查报告规范性，为病理科医师在临床实践中提供借鉴证据，为临床治疗和患者预后判断提供重要信息。 1.2  目标人群和使用人群 本指南的目标人群为间皮瘤患者，使用人群为从事间皮瘤病理学诊断和辅助检测的医务工作者。 1.3  指南制订采用方法 遵循国际指南编写标准和中华医学会《中国制订/修订临床诊疗指南的指导原则》（2022版）［2］。 1.4  启动与计划 本指南确定为《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》，在 国 际 实 践指南注册与透明化平台（http://www.guidelines-registry. cn）进行中英文双语注册，注册号为PREPARE-2024CN672，参考卫生保健实践指南的报告条目（the Reporting Items for practice Guidelines in HealThcare，RIGHT）撰写指南计划书［3］，制作指南制订流程图（图1）。 图1  指南制订流程图 1.5  成立指南工作组 组建首席专家兼利益冲突管理委员会、指导专家组、秘书组、文献检索和证据收集组、临床问题遴选和确定专家组、证据评价组、共识组、多学科专家组、执笔组和外审组等工作组，涵盖病理、影像、肿瘤内科、胸外科和流行病学与卫生统计学等多领域专家，具有间皮瘤流行病学或临床诊治经验。 1.6  管理利益冲突 所有参与指南制定小组成员均已声明所有潜在经济或非经济利益冲突，并填写《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》利益冲突声明表（参见计划书）。本指南利益冲突管理委员会根据利益冲突声明表评估专家成员利益冲突程度，采取相应的管理措施。 1.7  证据检索 检索的英文数据库包括PubMed、Embase、 Web of Science和 Cochrane Library，中文数据库包括中国知网、万方和中国生物医学文献数据库。检索时限均为建库至2024年10月31日。 英文文献检索词主要包括“malignant mesothelioma”、“mesothelioma”、“mesothelioma in situ”、“pathology”、“pathological diagnosis”、 “ immunohistochemistry”、“BAP1”、 “MTAP”、“molecular pathology ”、 “cytogenetics”、“molecular genetics”、“genomic analysis”、“genomic landscape”、“CDKN2A”、“PD-L1”、“nivolumab”、 “ipilimumab”、“consensus”、“guideline”、“update”和“dataset”。中文文献检索词主要包括 “恶性间皮瘤”、“间皮瘤”、“临床病理”、“病理诊断”、“免疫组织化学”、 “BAP1基因”、“MTAP基因”、 “CDKN2A（p16）基因”、 “分子病理”、 “分子遗传学”、“PD-L1”、“纳武利尤单抗”、“伊匹木单抗”和“免疫治疗”等。采用逻辑组配等检索方法。 1.8  证据和推荐等级 本指南根据循证医学证据等级，参照证据推荐分级评估、制定和评价系统（Grading of Recommendations，Assessment，Development and Evaluation，GRADE）对循证医学证据质量和专家推荐的强度进行分级，其中证据级别包括：A级证据为高度确定性，B级证据为中等确定性，C级证据确定性有限，D级证据则确定性极低（参见附录B）；推荐等级包括：推荐等级包括：强，中，弱（参见计划书）。 1.9  共识达成方法及标准 采用德尔菲问卷调查法和共识会议法相结合，就间皮瘤相关“陈述”进行专家函询。投票设置“非常同意”、“基本同意”、“不确定”、“不同意”和“非常不同意”5个选项，专家对每条“陈述”提出修改意见。每次调查结束后，根据专家反馈意见对“陈述”进行修改或增补。 1.10  临床问题汇总和推荐意见形成 对全国28个省、市、自治区多家医院的病理科医师进行调研，131名专家参与问卷填写，收集了21条推荐建议。通过在线会议形式，由指南专家委员会和秘书组对临床问题重要性调研结果进行讨论，将收集到的临床问题进行去重、修改、合并和汇总，删除6条陈述，根据间皮瘤病理学诊断相关的临床问题进行归纳总结15条陈述，其中同意率为100%共6条，强推荐为14条，中推荐1条，弱推荐0条。 1.11  指南撰写、修改和定稿 执笔组参考RIGHT起草《间皮瘤组织病理学诊断临床实践指南（2025年版）》初稿，召开专家会议审定初稿，并请外审专家评议，综合审定意见进行修改，形成终稿。 1.12    指南的传播、实施、评价与更新 本指南通过：① 在本刊上公开发表本指南，并可免费获取；② 在相关学术会议中对本指南进行解读；③ 通过媒体、公众号等进行推广；④ 在中国部分省市自治区组织本指南的推广专场会议，确保基层及以上单位病理科医师充分了解并提高间皮瘤病理学诊断水平。对指南进行定期或不定期调研，评价指南实施效果。 本指南有效期为5年。随着间皮瘤临床病理学证据更新和完善，指南将在颁布后第5年启动新版指南修订工作，第6年发布新版指南。  2 间皮瘤组织病理学诊断 2.1  间皮瘤诊断名称的使用 既往常采用恶性间皮瘤（malignant mesothelioma）这一名称，如恶性胸膜间皮瘤（malignant pleural mesothelioma）、恶性腹膜间皮瘤（malignant peritoneal mesothelioma）、上皮样恶性间皮瘤（epithelioid malignant mesothelioma）、双相性恶性间皮瘤（biphasic malignant mesothelioma）或肉瘤样恶性间皮瘤（sarcomatoid malignant mesothelioma），现推荐统一采用间皮瘤来诊断，不再加用“恶性”前缀，如胸膜间皮瘤（pleural mesothelioma，PM）、腹膜间皮瘤（peritoneal mesothelioma ，PeM）、上皮样间皮瘤（epithelioid mesothelioma，EM）、双相性间皮瘤（biphasic mesothelioma，BM）和肉瘤样间皮瘤（sarcomatoid mesothelioma，SM）等（证据级别：A；推荐等级：中）。 背景与证据： 既往采用间皮瘤名称的病变除了恶性间皮瘤外，还包括囊性或多囊性间皮瘤（cystic or multicystic mesothelioma，CM/MCM）和高分化乳头状间皮瘤（well differentiated papillary mesothelioma，WDPM）［4-5］，易引起误解。CM/MCM属于良性瘤样病变，WDPM属于良性或恶性潜能未定肿瘤（benign or neoplasm of uncertain malignant potential），为避免与恶性间皮瘤相混淆，CM/MCM已改称间皮包涵囊肿（mesothelial inclusion cyst，MIC）［6］，WDPM则改名高分化乳头状间皮肿瘤（well differentiated papillary mesothelial tumor，WDPMT）［7］。因此，第5版世界卫生组织（World Health Organization，WHO）肿瘤分类（包括胸部肿瘤、女性生殖道肿瘤及泌尿和男生殖肿瘤）推荐直接采用间皮瘤，不再加用“恶性”前缀［8-9］。 2.2  间皮瘤的疾病编码及其临床意义 根据间皮瘤解剖部位和组织形态学将间皮瘤诊断转化为ICD-O和ICD-11编码，便于对间皮瘤进行诊断和统计管理（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： ICD-O由WHO制定［10］，全称为《国际肿瘤疾病分类（International Classification of Diseases for Oncology）》。ICD-O编码在癌症登记和研究中发挥重要作用。通过将实际疾病诊断转化为编码形式，便于标准化和国际化，不仅有助于监测癌症疾病发病率和死亡率，为制定治疗策略和预防措施提供数据支持，而且有助于公共卫生专业人员更好地分析癌症疾病分布、趋势和影响因素。  ICD-11也由WHO制定［11］，全称为《国际疾病分类第十一修订版（International Classification of Diseases 11th Revision，ICD-11）》。ICD-11根据疾病病因、部位、病理学和临床表现等特征，将疾病转化成编码，进行有序分类，利于系统记录、分析、解释、比较全球不同国家或地区、不同时期死亡率和发病率等情况。ICD-11不仅为临床医师提供了更准确、更全面的疾病诊断，也实现了数据可存储、检索、分析和应用，为医学研究提供了全球统一疾病分类标准，为健康管理和研究提供了便利，为政策制定和采取干预措施提供科学依据。 间皮瘤的ICD-O和ICD-11编码参见表1。 2.3  石棉纤维接触史与间皮瘤诊断 石棉纤维是间皮瘤的重要致病因素［12］，但是否有石棉纤维接触史不能成为确诊或除外间皮瘤的依据（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 间皮瘤发病机制较复杂，除石棉纤维外，还包括非石棉性矿物纤维（如毛沸石、氟代-浅闪石和羟硅铁锰石等）、慢性感染和放射线照射（治疗性或职业性）等多种因素［13-14］。新材料碳纳米管（carbon nanotube）可能具有与石棉纤维相似致病毒性等［15］。少数间皮瘤发生于BAP1肿瘤易感综合征（BAP-1 tumor predisposition syndrome）家族，由BAP1胚系突变/缺失所致［16］。胸膜间皮瘤也可为自发性，无特殊致病因素［17］。心包间皮瘤、睾丸旁间皮瘤和多数女性腹膜间皮瘤（包括ALK和EWSR1重排亚型）与石棉纤维无相关性［18-19］。 2.4  间皮瘤的生长方式及其临床意义 正确区分弥漫性间皮瘤（diffus e mesothelioma，DM）和局限性间皮瘤（localized mesothelioma，LM）对临床治疗和患者预后判断具有重要意义（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 绝大多数间皮瘤（99%）呈弥漫性生长，又称DM；极少数间皮瘤（1%）呈局限性生长，又称LM。LM的诊断需结合临床和影像学［20］，见表2。迄今为止，文献上累计报道120多例。大多数病例发生于胸膜，部分病例发生于腹膜［21］，少数病例发生于心包、肝内、脾脏、胰腺、胃、肠系膜、输卵管和睾丸鞘膜等处［22-25］。LM的镜下形态、免疫表型和分子改变与DM相似［26］，但患者预后明显好于DM，中位生存期为80.4～134.0个月［22］。 2.5  间皮瘤组织病理学诊断 间皮瘤组织病理学诊断需包括间皮瘤组织学亚型及与预后相关的细胞形态、排列结构和间质改变（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 组织病理学诊断是间皮瘤诊断金标准。间皮瘤组织学亚型包括上皮样、肉瘤样和双相性［27-28］，并显示不同的细胞形态、排列结构和间质改变，参见表3，其中一些形态学特征与患者预后相关（参见后述）。 EM占 PM的 60%～70% ，占PeM的80%～90%。经典型EM由多边形、立方形或卵圆形细胞组成，细胞质丰富，嗜伊红色或淡染。低核级EM中的瘤细胞核显示轻度异型性（图2A），细胞核大小和形态一致，核仁不明显或见小核仁；中核级EM中的瘤细胞核呈中等大小，显示中度异型性（图2B），核大小和形状可有不一致，可见明显核仁；高核级EM中的瘤细胞显示重度异型性，细胞核大小和形状明显不一致，核染色质粗，核仁明显，常见核分裂象（包括病理性）（图2C）［29-30］。部分EM中的瘤细胞呈横纹肌样、蜕膜细胞样、小细胞性、透明细胞样、印戒细胞样、淋巴组织细胞样和多形性，其中具有横纹肌样和多形性形态者具有较高侵袭性，患者预后不佳［31-32］。EM有多种排列结构，且数种结构可见于同一肿瘤内。常见结构包括管状-乳头状、梁状和实性，少见结构包括腺瘤样（微囊性）和微乳头状等（图2D～H）。显示管状-乳头状、梁状和腺瘤样结构者预后相对较好，显示实性（占比≥50%）和微乳头状结构者预后相对较差［33-34］。20%～30%的EM伴有坏死（图2I），与患者预后不佳相关［35］。部分EM间质呈黏液样，瘤细胞呈小簇状或单个散在分布于疏松黏液样基质内（图3A）。黏液样区域≥50%，实性区域＜50%者预后较好［36］。淋巴组织细胞样间皮瘤由类似组织细胞的多边形瘤细胞和间质内大量炎症细胞浸润组成（图3B），后者多为CD8阳性T淋巴细胞。部分EM间质伴有明显纤维化或胶原化。少数EM中可见沙砾体，偶可伴有泡沫样组织细胞反应。 SM占PM的15%，占PeM的5%～10%。SM预后较EM差［37-38］。经典型SM由束状、交织状、片状或杂乱状排列梭形细胞组成（图3C），瘤细胞显示程度不等异型性，核分裂象易见（包括病理性），常伴有坏死。肿瘤常浸润脂肪组织或邻近结构（包括肺实质）。具有淋巴组织细胞样形态特征的SM预后相对较好［39］。促纤维性或促结缔组织增生性间皮瘤（desmoplastic mesothelioma）是SM的一种特殊亚型，由排列杂乱的轻度异型梭形细胞和大量伴有玻璃样变的纤维间质组成，后者在肿瘤内占50%以上（图3D），预后不佳［40］。活检标本中如见到促纤维性间质，宜诊断为SM伴有促纤维形态（sarcomatoid mesothelioma with desmoplastic features）（图3E）［28］。伴有异源性分化（with heterogeneous differentiation）的SM显示骨肉瘤、软骨肉瘤或横纹肌肉瘤等异源性分化（图3F）［41］。具有移行形态的间皮瘤（transitional mesothelioma）其瘤细胞形态介于上皮样和肉瘤样之间（图3G），常呈片状生长［42］。转录组研究和网状纤维染色支持移行性间皮瘤为SM且预后不佳［43-44］。SM也可显示多形性形态。 BM占PM的15%～30% ，占PeM的10%～20%，是心包间皮瘤最常见类型。BM由上皮样成分和肉瘤样成分混合组成［45］，两种成分之间或分界清楚（图3H），或相互混杂（图3I）。手术切除标本中每种成分均需≥10%，活检标本无此要求。BM的生物学行为介于EM和SM之间。肉瘤样成分＞50%者预后较差，故在术后或活组织病理学检查报告中应注明上皮样成分和肉瘤样成分在BM中的占比［27-28］。 图2  不同部位间皮瘤的病理学诊断（Ⅰ）  A: 胸膜上皮样间皮瘤，核Ⅰ级；B: 胸膜上皮样间皮瘤，核Ⅱ级；C: 胸膜上皮样间皮瘤，核Ⅲ级；瘤细胞显示明显多形性；D: 胸膜上皮样间皮瘤，管状-乳头状排列结构；E: 胸膜上皮样间皮瘤，梁状排列结构；F: 胸膜上皮样间皮瘤，腺瘤样瘤（微囊性）结构；G: 胸膜上皮样间皮瘤，实性排列；H: 腹膜上皮样间皮瘤，微乳头状结构；I: 上皮样间皮瘤伴坏死。    图3  不同部位间皮瘤的病理学诊断（Ⅱ） A: 黏液样间皮瘤，小簇或单个瘤细胞漂浮于黏液样基质内；B: 淋巴组织细胞样间皮瘤，瘤细胞呈组织细胞样，间质伴有炎症细胞浸润；C: 肉瘤样间皮瘤，束状排列的异型梭形细胞，浸润脂肪组织；D: 促纤维性间皮瘤，交织状排列的梭形细胞和大量胶原纤维（插图示坏死）E: 穿刺活检标本，肉瘤样间皮瘤伴大量纤维性间质；F: 肉瘤样间皮瘤伴异源性分化（骨肉瘤样）；G: 移行性间皮瘤，瘤细胞呈胖梭形至多边形，形态上介于上皮样和梭形细胞之间；H: 双相性间皮瘤，上皮样区域（左侧）与肉瘤样区域（右侧）分界清楚；I: 双相性间皮瘤，上皮样成分和肉瘤样成分相互混杂。 2.6  上皮样间皮瘤的分级 对胸膜上皮样间皮瘤（pleural epithelioid mesothelioma，PEM）进行分级不仅可对预后进行分层，而且对临床治疗策略的选择也具有重要参考价值（证据级别：B；推荐等级：强）。 背景与证据： 2012年Kadota等［29］通过多变量分析发现核异型性和核分裂象是PEM独立的预后因子，并据此设计了三分层核分级（three-tiered nuclear grading），将PEM分为三个预后组，研究发现三个预后组在生存率方面的差异有统计学意义。该分级系统简单、实用且能更好地对预后进行分层，并得到后续研究验证［30，46-48］，其中Rosen等［35］研究还发现肿瘤是否伴有坏死也与预后相关，进而将坏死与三分层核分级相结合，形成双分层肿瘤分级（two-tiered tumour grading）（表4），得到专家共识（expert consensus）、美国病理学家学会（College of American Pathologists，CAP）、WHO、国际间皮瘤学会（International Mesothelioma Interest Group，iMiG）和欧洲临床肿瘤学会指导委员会（ESMO Guidelines Committee）等强推荐［8，27-28，30，49-50］。该分级系统除可对PEM患者的预后进行分层外，对临床治疗策略的选择也具有重要参考价值［51］。目前，该分级系统主要用于PEM临床实践。PM活检和切除标本配对研究显示，两种标本类型在评估核级和坏死上的一致性分别达75%和81%，间皮瘤分级有助于活检后的治疗选择［52］。对腹膜EM以及不同组织学亚型间皮瘤的预后分层新近也有研究报道［53-55］，但鉴于PeM的流行病学及生物学行为与PM有所不同，临床治疗也不同，故如何对PeM进行分级评估仍有待达成共识。其他分级系统包括澳大利亚学者结合年龄、组织学类型、坏死、核分裂象、核异型性和BAP1表达情况的间皮瘤加权分级方案（mesothelioma-weighted grading scheme，MWGS）以及预后列线图［56-57］。 PEM分级的不足之处在于，三级核分级源于病例研究并得到证实，但双分层肿瘤分级最初源于专家共识，在临床应用之前未经病例研究验证，尽管后续报道显示具有预后价值［47-48］。此外，细胞形态（如多形性或横纹肌样）和排列结构（如实性或微乳头状）和分子改变（如CDKN2A缺失）等与患者预后相关的因素也并未纳入分级中。新近有学者报道，Ki-67增殖指数与PEM的预后相关［58］。Ki-67增殖指数0%～4%、5%～9%以及≥10%相当于核分裂象计数评分的1分、2分和3分。由于核级评估在可重复性上存在一定问题，采用核分裂象计数和Ki-67增殖指数（类似神经内分泌肿瘤中的分级）能否替代核级评估对PEM进行分级有待于更多研究。 2.7  间皮瘤免疫组织化学标记 联合采用一组间皮标志物（mesothelial markers）辅助间皮瘤诊断。如为肉瘤样型，加做GATA3。活检标本加做BAP1（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： EM采用间皮标志物包括calretinin、D2-40、WT1和CK5/6［8，27-28，59］。需要注意的是，calretinin、D2-40和CK5/6等在一部分癌中也可有灶性或斑片状表达。新抗体HEG1（克隆号SKM9-2，膜染色）和SPARC（兔多克隆抗体，细胞质染色）对EM有较高特异性和敏感性［60-61］。EM失表达BAP1（细胞核）（55%～70%）（图4A）、MTAP（细胞质）（35%～65%）和Merlin（细胞膜/细胞质）（35%～41%）［59］。具有横纹肌样形态间皮瘤可失表达SMARCB1（INI1）［62］。ALK重排间皮瘤可弥漫表达ALK［63］。少数腹膜EM表达 PAX8［64］，但不表达ER和PR。 SM以表达AE1/AE3为主［8，37-38］。辅助诊断SM时联合采用AE1/AE3、D2-40、calretinin、WT1和GATA3。Calretinin和WT1在SM中的表达或为灶性阳性或为阴性。D2-40在SM中常呈细胞质着色。SM常弥漫表达GATA3（图4B）［65-66］。部分SM（10%～36%）失表达BAP1，但常失表达MTAP（61%～83%）［59，67］。 BM肿瘤内上皮样成分和肉瘤样成分的免疫表型分别与EM和SM相似。BM常失表达BAP1 （47%～77%）、MTAP（0～60%）和Merlin（0～70%）［59，68-69］。 2.8  间皮瘤的PD-L1检测 根据临床需要加做PD-L1检测（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： CheckMate 743研究显示，对不可手术切除间皮瘤采用纳武利尤单抗联合伊匹木单抗方案一线治疗效果优于化疗［70］。PD-L1免疫组织化学（TPS≥1%）可预测免疫治疗效果。总体上，PD-L1在非EM（SM和BM）中的表达率高于EM。PD-L1在EM、SM和BM中的阳性表达率分别为10%～49%、9%～67%和22%～100%（图4C）［71-73］。 图4  不同部位间皮瘤的标志物检测 A: 上皮样间皮瘤失表达BAP1；B: 肉瘤样间皮瘤弥漫表达GATA3；C: 肉瘤样间皮瘤弥漫表达PD-L1（22C3）；D: FISH检测显示CDKN2A（p16）缺失；E: 原位间皮瘤，表面间皮细胞呈单层排列，显示轻度异型性；F: 原位间皮瘤，表面间皮细胞失表达BAP1。 2.9  间皮瘤的分子检测 检测BAP1、CDKN2A、MTAP、NF2等基因缺失或失活突变有助于间皮瘤的诊断与鉴别诊断，并为患者的预后预测提供参考（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 大多数间皮瘤以体细胞突变和拷贝数改变为特征，包括BAP1、CDKN2A、MTAP、NF2、TP53、LATS1/2和SETD2等，并因部位和组织学亚型而异［59，74-76］：① BAP1编码去泛素化酶，在细胞周期调节、细胞分化、细胞死亡和DNA修复反应中发挥作用。BAP1在60%的PM和70%的PeM中失活，包括错义突变、截短突变和剪接点突变。BAP1突变是间皮瘤发生中的早期事件，多见于EM，并为原位间皮瘤中最常见的分子改变。BAP1的分子改变在EM中比在SM中更常见［28］。BAP1胚系突变引发BAP1肿瘤易感综合征［16］。② CDKN2A（9p21.3，编码p16）缺失在间皮瘤的发生中属于早期事件。70%的PM（40%～70%EM和BM以及90%SM）和10%～15%的PeM显示CDKN2A纯合性缺失（图4D）［77］。75%～90%的CDKN2A缺失的间皮瘤常伴有邻近的CDKN2B与MTAP（9q21.3）基因共缺失［78］，可通过MTAP免疫组织化学标志物（42-T，Santa Cruz）或联合采用MTAP和p16免疫组织化学标志物替代CDKN2A FISH检测［79］。③ NF2（22q12.2，编码Merlin）失活包括截短突变、移码突变、点突变或缺失，在间皮瘤发生中属于晚期事件，相比EM（0～40%），NF2突变或缺失多见于BM和SM（0～70%）［80］。NF2突变或缺失可通过测序或FISH检测，也可通过Merlin免疫组织化学标志物（克隆号D1D8或D3S3W）检测［81］。BAP1和CDKN2A基因突变检测对间皮瘤诊断的特异性并非100%，但有助于与良性间皮病变的鉴别诊断［82］，并与患者预后相关（参见后述）。此外，少数透明细胞EM显示VHL（3p25.3）突变［83-84］，多发生于腹膜，少数位于胸膜。 少数间皮瘤涉及基因重排，包括：① ALK重排，主要见于儿童腹膜间皮瘤，并多见于女性。ALK伴侣基因包括STRN、ATG16L1和TPM1［85］。② EWSR1重排，多见于儿童和青年腹膜间皮瘤。EWSR1伴侣基因包括YY1和ATF1［86-88］。基因重排及其融合基因可通过FISH和（或）二代测序（next generation sequencing，NGS）检测。 2.10  原位间皮瘤的病理学诊断 原位间皮瘤（mesothelioma in situ，MIS）的诊断需要结合临床、影像学、免疫组织化学标志物和（或）分子检测（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： MIS是一种在胸膜或腹膜表面生长的非浸润性间皮肿瘤，最早由Whitaker等［89］于1992年提出。Churg等［90］于2018年首先报道了MIS实例，发生于反复胸腔积液且不消退患者，影像学或胸腔镜检查无肿瘤证据，但活检标本显示胸膜表面有单层扁平状或略呈乳头状间皮增生，加做免疫组织化学和（或）FISH显示BAP1表达缺失和（或）CDKN2A纯合性缺失，并至少在1年时间无浸润性间皮瘤发生。后续报道佐证了MIS这一病变实体［91-92］，不仅发生于胸膜，少数病例发生于腹膜和睾丸鞘膜［93-94］。MIS的诊断标准为：① 反复性胸水或腹水；② 影像学或胸腔镜/腹腔镜检查显示无肿块证据；③ 胸膜或腹膜表面单层扁平或立方形间皮细胞，伴有或不伴有异型性（图4E）；或表面有小或复杂性乳头状增生，可类似WDPTM［95］；或表面有小结节，伴有中度至重度异型，但无胸膜下或腹膜下浸润灶；④ 免疫组织化学标志物检测显示BAP1失表达（图4F），和（或）MTAP免疫组织化学失表达，或FISH检测显示CDKN2A（p16）纯合性缺失；⑤ 必要时经多学科讨论。MIS可进展为浸润性间皮瘤［91，96-97］，但潜伏期相对较长，随访显示（中位随访时间5年），70%的MIS进展为浸润性间皮瘤［91］，故MIS一经诊断后，其处理应提交多学科讨论。 2.11  间皮瘤的诊断路径 间皮瘤的病理学诊断需结合临床、镜下形态、免疫组织化学标志物和分子检测（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 胸/腹膜病变确认为间皮增生病变后，如临床有明确肿块形成，显微镜下显示恶性形态特征（如浸润性生长），可直接诊断间皮瘤，常规辅助检测可包括BAP1和（或）MTAP免疫组织化学。对形态上诊断困难者，可先行BAP1和（或）MTAP免疫组织化学检测，如有表达缺失，可诊断为间皮瘤，如无缺失，加做分子检测（FISH或基因测序）检测CDKN2A，如有缺失，可诊断为间皮瘤，如无缺失，则诊断为非典型性间皮增生，对活检病例备注必要时再复查，对手术病例备注定期复查和随诊。对临床上无肿块形成，但患者有反复胸腹水者，活检标本显示胸/腹膜表面病变者应加做BAP1和（或）MTAP免疫组织化学和（或）FISH检测CDKN2A基因，如有BAP1和（或）MTAP表达缺失和（或）CDKN2A基因缺失，则诊断为原位间皮瘤［28］。间皮瘤诊断路径参见图5。 图5  间皮增生病变诊断路径 IHC: 免疫组织化学检测; FISH: 荧光原位杂交。 2.12  间皮瘤的鉴别诊断 基于临床病理学特征结合辅助检测排除类似疾病对间皮瘤诊治具有重要意义（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 鉴别诊断是间皮瘤病理学诊断中的重要环节。 与肺腺癌相鉴别时采用一组上皮标志物（epithelial markers），包括CEA、MOC-31、BerEP4和claudin-4［8，27，59，98］。需要注意的是，10%～15%的间皮瘤也可斑片状表达MOC-31和BerEP4［59］。与其他上皮性肿瘤鉴别时采用的免疫组织化学标志物因瘤种而异。 EM需鉴别的病种包括：① 反应性间皮增生，除镜下形态外，联合采用BAP1、MTAP标志物和（或）FISH检测CDKN2A（p16）有助于区分间皮瘤和良性间皮增生［82］。② WDPMT，EM的局部区域可类似WDPMT，但其他区域显示典型EM形态，包括明确的浸润性生长。与EM不同，WDPMT表达EMA不佳，但可表达L1CAM［99］，多数病例（60%～95%）还可表达PAX8［5］，BAP1表达无缺失，FISH检测显示无CDKN2A缺失。因TRAF7突变也可见于局限性胸膜间皮瘤和腹膜弥漫性间皮瘤［26，100］，不能单凭TRAF7突变鉴别WDPMT和间皮瘤。③ 累犯胸膜的上皮肿瘤可致胸膜增厚而类似间皮瘤，也称假间皮瘤样癌（pseudomesotheliomatous carcinoma）［101］，包括肺腺癌、鳞状细胞癌以及胸膜转移性癌。联合采用上皮标志物，包括claudin-4、MOC-31、 BerEP4、TTF-1、Napsin A、p63和p40，有助于鉴别诊断。SPARC对实体性EM与实体性肺腺癌及低分化鳞状细胞癌的鉴别有一定帮助［61］，但不能鉴别SM和含有梭形细胞成分的多形性癌。转移性癌如转移性乳腺癌和肾细胞癌等可加用相应标志物，包括mammaglobin、GCDFP-15、GATA3、CD10、PAX2、PAX8、P504S（AMACR）和RCC等（表5）。需注意的是，40%的EM也可表达 GATA3［102］。④ 腹腔浆液性腺癌，除镜下形态外，联合采用calretinin、BerEP4、MOC-31、ER、PR、PAX2和PAX8等标志物帮助鉴别。⑤ 实性乳头状间皮肿瘤（solid papillary mesothelial tumor），多发生于女性腹膜，境界清楚，由成片、索样或乳头状排列的间皮细胞组成，偶见核沟，BAP1表达无缺失，FISH检测CDKN2A无缺失，生物学上呈惰性［103］。⑥ NR4A3重排间皮肿瘤（NR4A3-rearranged mesothelial tumor），发生于腹膜，镜下以腺瘤样（微囊性）/筛状结构为特征，常局限性或部分表达calretinin和D2-40，分子检测显示NR4A3重排，伴侣基因多为EWSR1，少数病例为CITED2和NIPBL［104］。⑦ 其他，包括SWI/SNF复合物缺失性未分化癌/肿瘤（BRG1/INI1缺失）与具有横纹肌样形态的上皮样间皮瘤相鉴别等。 SM需鉴别的病种包括：① 肉瘤样癌，GATA3有助于肉瘤样间皮瘤SM与肉瘤样癌的鉴别诊断［65-66］。此外，部分肺肉瘤样癌可表达高相对分子质量CK、p63、p40和TTF1，分子检测显示MET14号外显子跳突变。② 梭形细胞滑膜肉瘤，瘤细胞形态一致，无明显多形性，常灶性表达上皮标志物（AE1/AE3和EMA），弥漫核表达SS18-SSX，FISH检测显示SS18基因重排。 ③ 孤立性纤维性肿瘤，主要与促纤维性间皮瘤相鉴别。联合采用AE1/AE3、CD34和STAT6有助于鉴别诊断。④ 机化性胸膜炎，AE1/AE3可显示机化性胸膜炎中的区带现象。此外，机化性胸膜炎不表达PD-L1，而肉瘤样间皮瘤常呈阳性表达［105］。⑤ 其他梭形细胞肉瘤，包括恶性周围神经鞘膜瘤（失表达H3K27Me3）等。 BM需鉴别的病种包括：① 伴有纤维性间质的EM可与BM相混淆。纤维性间质无明显异型性，BAP1表达无缺失，但可表达α-SMA。② 双相性滑膜肉瘤，梭形细胞成分中的瘤细胞形态一致，无明显多形性。瘤细胞弥漫性核表达SS18-SSX。FISH检测显示SS18基因重排。③ 癌肉瘤，本质为肉瘤样癌，其中癌成分可表达上皮标记，根据不同部位可分别表达TTF1、Napsin A、ER、PAX8、CEA、CDX2、claudin-4、BerEP4和MOC-31等标志物。 2.13  间皮瘤患者预后相关病理学因素 与间皮瘤患者预后相关的病理学因素包括组织学亚型、细胞形态、排列结构、间质改变、坏死、分级（胸膜EM）以及BAP1/MTAP表达和CDKN2A缺失状况（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 间皮瘤的组织学亚型与患者预后相关，EM预后相对较好，BM居中，SM预后较差［106］，但不同亚型内在临床生物学行为和预后上存在差异。MTAP失表达、p16表达＜1%和FISH检测显示CDKN2A缺失预后不佳［75，79，107］，与之相反，BAP1失表达和BAP1胚系突变者预后相对较好［108-109］。与间皮瘤预后相关的病理学参数参见表6。 全基因组分析根据转录组数据，确定了4个不同的预后分子簇，包括肉瘤样、上皮样、双相上皮样和双相肉瘤样，与总生存期和上皮-间质转化的程度相关［74］。基于整合的基因组、转录组和表观基因组数据，TCGA队列研究确定了4个不同的预后亚型［75］。预后不良分子簇具有上皮—间质转化高评分、间皮素低mRNA表达、T辅助细胞2（Th2）细胞特征高评分以及富集LATS2突变和CDKN2A纯合缺失。Blum等［110］通过结合转录组、甲基化组和miRNome分析，证明胸膜间皮瘤具有不同的上皮样和肉瘤样成分（E评分和S评分）。评分与肿瘤微环境-血管之间存在相关性［111］。S评分与T淋巴细胞、单核细胞、成纤维细胞、内皮细胞和PD-L1高表达相关，E评分与NK细胞浸润、补体途径和VISTA过表达相关，这些结果与PD-L1蛋白表达、肉瘤样间皮瘤、预后不良和间质淋巴细胞浸润相一致［112-113］。 2.14  间皮瘤的规范化病理学检测报告 规范化的间皮瘤病理学检测报告需包括标本类型、肿瘤部位、组织学类型、ICD-O和ICD-11编码、核级（仅适用于PEM）、组织排列结构、瘤细胞形态、间质形态、病理学分期（适用于胸膜间皮瘤）和相关辅助检测等（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 病理学检测报告是一份重要的医疗文件。规范化的间皮瘤病理学检测报告对间皮瘤诊断的准确性、完整性和一致性至关重要，可为临床治疗策略的选择和预后判断提供重要的信息。国际癌症报告合作组织（International Collaboration on Cancer Reporting，ICCR）也发表了间皮瘤推荐病理学诊断报告［114］（线上查阅网址为：https://www.iccr-cancer.org/datasets/published-datasets/thorax/ mesothelioma）以及CAP癌症报告模板（弥漫性胸膜间皮瘤v5.0.0.0，线上查阅网址为：https://www.cap.org/protocols-and-guidelines/cancer-reporting-tools/cancer-protocol-templates），可供参考和查阅。需要说明的是，病理学分期pTNM目前仅适用于胸膜间皮瘤［115-116］，心包间皮瘤、腹膜间皮瘤和睾丸旁间皮瘤尚无共识。对腹膜间皮瘤也有采用腹腔癌症指数（peritoneal cancer index，PCI）评估病变范围者［117-118］。间皮瘤的规范化病理学检测报告参见表7。 2.15  间皮瘤的人工智能辅助诊断 人工智能辅助诊断对间皮瘤的组织学分型有一定的帮助，但不能替代病理科医师的工作（证据级别：A；推荐等级：强）。 背景与证据： 间皮瘤的组织学分型与间皮瘤患者的预后相关，经典EM和SM的诊断对大多数病理科医师来说并不困难，但在部分间皮瘤的组织学分型上包括专家在内也存在不一致，特别是针对移行性间皮瘤和多形性间皮瘤的诊断。此外，BM中的肉瘤样成分也与患者预后密切相关，如何准确地评估肉瘤样成分的占比也非常重要。一项人工智能模型（CHOWDER）识别移行性间皮瘤的准确率达94%［43］，但尚不能完全替代病理科医师［119］。人工智能辅助间皮瘤组织学分型、肿瘤分级、分子生物学检测结果预判和预测患者预后等方面有待于进一步研究［120］。 3 总结与展望 精准的病理学诊断和规范的病理学报告不仅为间皮瘤的临床治疗提供了参考和指导，相关的组织学分层和辅助检测也为预后判断提供了重要信息。完整和全面的报告在为前瞻性研究提供数据工具的同时，也为回顾性分析提供了真实可靠的数据。随着分子研究的深入开展，一些以分子改变为特征的间皮瘤亚型也为临床进行相关的靶向治疗提供了循证医学证据。对间皮瘤及其亚型开展的深度学习也有助于人工智能辅助诊断工具的开发和应用，最终为患者带来获益。 参考文献 上下滑动查看更多内容 ［1］ ZHAI Y R, HUI Z G, CHEN W Q, et al. The epidemic of malignant mesothelioma in China: a prediction of incidence during 2016-2030［J］. Transl Lung Cancer Res, 2022, 11(12): 2403-2411. ［2］ 陈耀龙, 杨克虎, 王小钦, 等. 中国制订/修订临床诊疗指南的指导原则(2022版)［J］. 中华医学杂志, 2022, 102(10): 697-703. CHEN Y L, YANG K H, WANG X Q, et al. Guiding principles for formulating/revising clinical diagnosis and treatment guidelines in China (2022 edition)［J］. Natl Med J China, 2022, 102(10): 697-703. ［3］ CHEN Y L, YANG K H, MARUŠIC A, et al. A reporting tool for practice guidelines in health care: the RIGHT statement［J］. Ann Intern Med, 2017, 166(2): 128-132. ［4］ O’NEIL J D, ROS P R, STORM B L, et al. Cystic mesothelioma of the peritoneum［J］. Radiology, 1989, 170(2): 333-337. ［5］ SUN M, ZHAO L, WENG LAO I, et al. Well-differentiated papillary mesothelioma: a 17-year single institution experience with a series of 75 cases［J］. Ann Diagn Pathol, 2019, 38: 43-50. ［6］ DRUT R, QUIJANO G. Multilocular mesothelial inclusion cysts (so-called benign multicystic mesothelioma) of pericardium［J］. Histopathology, 1999, 34(5): 472-474. ［7］ CHURG A, GALATEAU-SALLE F. Well differentiated papillary mesothelial tumor: a new name and new problems［J］. Mod Pathol, 2022, 35(10): 1327-1333. ［8］ WHO Classification of Tumours Editorial Board. WHO classification of tumours: thoracic tumours/urinary and male genital tumours/female genital tumours ［M］. 5th ed. Lyon, France: International Agency for Research on Cancer;2021. ［9］ SAUTER J L, DACIC S, GALATEAU-SALLE F, et al. The 2021 WHO classification of tumors of the pleura: advances since the 2015 classification［J］. J Thorac Oncol, 2022, 17(5): 608-622. ［10］ World Health Organization. International classification of diseases for oncology (ICD-O), 3rd ed., 1st revision. Geneva, Switzerland: World Health Organization. 2013［EB/OL］. https://iris.who.int/handle/10665/96612. ［11］ World Health Organization. ICD-11 2022 release. Geneva, Switzerland: World Health Organization, 2022. https://www.who.int/news/item/11-02-2022-icd-11-2022-release. ［12］ GARIAZZO C, GASPARRINI A, MARINACCIO A. Asbestos consumption and malignant mesothelioma mortality trends in the major user countries［J］. Ann Glob Health, 2023, 89(1): 11. ［13］ METINTAS M, HILLERDAL G, METINTAS S. Malignant mesothelioma due to environmental exposure to erionite: followup of a Turkish emigrant cohort［J］. Eur Respir J, 1999, 13(3): 523-526. ［14］ FARIOLI A, OTTONE M, MORGANTI A G, et al. Radiationinduced mesothelioma among long-term solid cancer survivors: a longitudinal analysis of SEER database［J］. Cancer Med, 2016, 5(5): 950-959. ［15］ DONALDSON K, POLAND C A, MURPHY F A, et al. Pulmonary toxicity of carbon nanotubes and asbestossimilarities and differences［J］. Adv Drug Deliv Rev, 2013, 65(15): 2078-2086. ［16］ TESTA J R, CHEUNG M, PEI J M, et al. Germline BAP1 mutations predispose to malignant mesothelioma［J］. Nat Genet, 2011, 43(10): 1022-1025. ［17］ ATTANOOS R L, CHURG A, GALATEAU-SALLE F, et al. Malignant mesothelioma and its non-asbestos causes［J］. Arch Pathol Lab Med, 2018, 142(6): 753-760. ［18］ MEZEI G, CHANG E T, MOWAT F S, et al. Epidemiology of mesothelioma of the pericardium and tunica vaginalis testis［J］. Ann Epidemiol, 2017, 27(5): 348-359.e11. ［19］ MOOLGAVKAR S H, MEZA R, TURIM J. Pleural and peritoneal mesotheliomas in SEER: age effects and temporal trends, 1973-2005［J］. Cancer Causes Control, 2009, 20(6): 935-944. ［20］ ALLEN T C, CAGLE P T, CHURG A M, et al. Localized malignant mesothelioma［J］. Am J Surg Pathol, 2005, 29(7): 866-873. ［21］ MALPICA A, EUSCHER E D, MARQUES-PIUBELLI M L, et al. Localized malignant peritoneal mesothelioma (LMPeM) in women: a clinicopathologic study of 18 cases［J］. Am J Surg Pathol, 2022, 46(10): 1352-1363. ［22］ MARCHEVSKY A M, KHOOR A, WALTS A E, et al. Localized malignant mesothelioma, an unusual and poorly characterized neoplasm of serosal origin: best current evidence from the literature and the International Mesothelioma Panel［J］. Mod Pathol, 2020, 33(2): 281-296. ［23］ ZHANG Y, PANG M J. Unveiling the mystery: a rare case of localized malignant pericardial mesothelioma-case report［J］. Front Oncol, 2024, 14: 1342748. ［24］ ESPINAL-WITTER R, SERVAIS E L, KLIMSTRA D S, et al. Localized intrapancreatic malignant mesothelioma: a rare entity that may be confused with other pancreatic neoplasms［J］. Virchows Arch, 2010, 456(4): 455-461. ［25］ JIANG Y Q, CAI Y, XU X P, et al. A rare malignant mesothelioma of the tunica vaginalis testis: a case report［J］. Oncol Lett, 2024, 27(4): 172. ［26］ HUNG Y P, DONG F, DUBUC A M, et al. Molecular characterization of localized pleural mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2020, 33(2): 271-280. ［27］ NICHOLSON A G, SAUTER J L, NOWAK A K, et al. EURACAN/IASLC proposals for updating the histologic classification of pleural mesothelioma: towards a more multidisciplinary approach［J］. J Thorac Oncol, 2020, 15(1): 29-49. ［28］ HUSAIN A N, CHAPEL D B, ATTANOOS R, et al. Guidelines for pathologic diagnosis of mesothelioma: 2023 update of the consensus statement from the international mesothelioma interest group［J］. Arch Pathol Lab Med, 2024, 148(11): 1251-1271. ［29］ KADOTA K, SUZUKI K, COLOVOS C, et al. A nuclear grading system is a strong predictor of survival in epitheloid diffuse malignant pleural mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2012, 25(2): 260-271. ［30］ SCHULTE J J, HUSAIN A N. Updates on grading mesothelioma［J］. Histopathology, 2024, 84(1): 153-162. ［31］ ORDÓÑEZ N G. Mesothelioma with rhabdoid features: an ultrastructural and immunohistochemical study of 10 cases［J］. Mod Pathol, 2006, 19(3): 373-383. ［32］ ORDÓÑEZ N G. Pleomorphic mesothelioma: report of 10 cases［J］. Mod Pathol, 2012, 25(7): 1011-1022. ［33］ LIU S, STAATS P, LEE M, et al. Diffuse mesothelioma of the peritoneum: correlation between histological and clinical parameters and survival in 73 patients［J］. Pathology, 2014, 46(7): 604-609. ［34］ OYAMA T, GOTO T, AMEMIYA K. Mixed micropapillary patterns found in malignant pleural mesothelioma with possibly worsened prognostic implication［J］. Thorac Cancer, 2022, 13(7): 1098-1099. ［35］ ROSEN L E, KARRISON T, ANANTHANARAYANAN V, et al. Nuclear grade and necrosis predict prognosis in malignant epithelioid pleural mesothelioma: a multi-institutional study［J］. Mod Pathol, 2018, 31(4): 598-606. ［36］ ALCHAMI F S, ATTANOOS R L, BAMBER A R. Myxoid variant epithelioid pleural mesothelioma defines a favourable prognosis group: an analysis of 191 patients with pleural malignant mesothelioma［J］. J Clin Pathol, 2017, 70(2): 179-182. ［37］ KLEBE S, BROWNLEE N A, MAHAR A, et al. Sarcomatoid mesothelioma: a clinical-pathologic correlation of 326 cases［J］. Mod Pathol, 2010, 23(3): 470-479. ［38］ 刘绮颖, 陈庆明, 喻　林, 等. 肉瘤样恶性间皮瘤的临床病理分析［J］. 中华病理学杂志, 2014, 43(6): 364-369. LIU Q Y, CHEN Q M, YU L, et al. Sarcomatoid malignant mesothelioma: A clinicopathologic and immunohistochemical analysis of 22 cases［J］. Chin J Pathol, 2014, 43(6): 364-369. ［39］ GALATEAU-SALLÉ F, ATTANOOS R, GIBBS A R, et al. Lymphohistiocytoid variant of malignant mesothelioma of the pleura: a series of 22 cases［J］. Am J Surg Pathol, 2007, 31(5): 711-716. ［40］ CANTIN R, AL-JABI M, MCCAUGHEY W T. Desmoplastic diffuse mesothelioma［J］. Am J Surg Pathol, 1982, 6(3): 215-222. ［41］ KLEBE S, MAHAR A, HENDERSON D W, et al. Malignant mesothelioma with heterologous elements: clinicopathological correlation of 27 cases and literature review［J］. Mod Pathol, 2008, 21(9): 1084-1094. ［42］ DACIC S, STANG N L, HUSAIN A, et al. Interobserver variation in the assessment of the sarcomatoid and transitional components in biphasic mesotheliomas［J］. Mod Pathol, 2020, 33(2): 255-262. ［43］ SALLE F G, LE STANG N, TIRODE F, et al. Comprehensive molecular and pathologic evaluation of transitional mesothelioma assisted by deep learning approach: a multi-institutional study of the international mesothelioma panel from the MESOPATH reference center［J］. J Thorac Oncol, 2020, 15(6): 1037-1053. ［44］ FORTAREZZA F, PEZZUTO F, MANIGLIO S, et al. Adverse prognostic impact of transitional and pleomorphic patterns in pleural nonepithelioid mesothelioma: insights from comprehensive analysis and reticulin stain［J］. Arch Pathol Lab Med, 2024. ［45］ GALATEAU SALLE F, STANG N L, NICHOLSON A G, et al. New insights on diagnostic reproducibility of biphasic mesotheliomas: a multi-institutional evaluation by the international mesothelioma panel from the MESOPATH reference center［J］. J Thorac Oncol, 2018, 13(8): 1189-1203. ［46］ FOREST F, PATOIR A, DAL COL P, et al. Nuclear grading, BAP1, mesothelin and PD-L1 expression in malignant pleural mesothelioma: prognostic implications［J］. Pathology, 2018, 50(6): 635-641. ［47］ ZHANG Y Z, BRAMBILLA C, MOLYNEAUX P L, et al. Presence of pleomorphic features but not growth patterns improves prognostic stratification of epithelioid malignant pleural mesothelioma by 2-tier nuclear grade［J］. Histopathology, 2020, 77(3): 423-436. ［48］ ZHANG Y Z, BRAMBILLA C, MOLYNEAUX P L, et al. Utility of nuclear grading system in epithelioid malignant pleural mesothelioma in biopsy-heavy setting: an external validation study of 563 cases［J］. Am J Surg Pathol, 2020, 44(3): 347-356. ［49］ WANG Q, XU C W, WANG W X, et al. Chinese expert consensus on the diagnosis and treatment of malignant pleural mesothelioma［J］. Thorac Cancer, 2023, 14(26): 2715-2731. ［50］ POPAT S, BAAS P, FAIVRE-FINN C, et al. Malignant pleural mesothelioma: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up ［J］. Ann Oncol, 2022, 33(2): 129-142. ［51］ TÜRK İ, FINDIK G, ÇETIN M, et al. Importance of histopathological grading for treatment selection in malignant mesothelioma［J］. Thorac Cardiovasc Surg, 2023, 71(6): 497-503. ［52］ SCHULTE J J, CHAPEL D B, ATTANOOS R, et al. Comparison of nuclear grade, necrosis, and histologic subtype between biopsy and resection in pleural malignant mesothelioma: an international multi-institutional analysis［J］. Am J Clin Pathol, 2021, 156(6): 989-999. ［53］ VALENTE K, BLACKHAM A U, LEVINE E, et al. A histomorphologic grading system that predicts overall survival in diffuse malignant peritoneal mesothelioma with epithelioid subtype［J］. Am J Surg Pathol, 2016, 40(9): 1243-1248. ［54］ PEZZUTO F, VIMERCATI L, FORTAREZZA F, et al. Evaluation of prognostic histological parameters proposed for pleural mesothelioma in diffuse malignant peritoneal mesothelioma. A short report［J］. Diagn Pathol, 2021, 16(1): 64. ［55］ CHAPEL D B, SCHULTE J J, ABSENGER G, et al. Malignant peritoneal mesothelioma: prognostic significance of clinical and pathologic parameters and validation of a nuclear-grading system in a multi-institutional series of 225 cases［J］. Mod Pathol, 2021, 34(2): 380-395. ［56］ FUCHS T L, CHOU A, AKSOY Y, et al. A critical assessment of current grading schemes for diffuse pleural mesothelioma with a proposal for a novel mesothelioma weighted grading scheme (MWGS)［J］. Am J Surg Pathol, 2022, 46(6): 774-785. ［57］ AKSOY Y, CHOU A, MAHJOUB M, et al. A novel prognostic nomogram for predicting survival in diffuse pleural mesothelioma［J］. Pathology, 2023, 55(4): 449-455. ［58］ GALEANO B, SMITH C J, YI E S, et al. Ki-67 proliferation index is associated with tumor grade and survival in pleural epithelioid mesotheliomas［J］. Am J Surg Pathol, 2024, 48(5): 615-622. ［59］ H U N G Y P , C H I R I E A C L R . M o l e c u l a r a n d immunohistochemical testing in mesothelioma and other mesothelial lesions［J］. Arch Pathol Lab Med, 2024, 148(5): e77-e89. ［60］ NASO J R, TSUJI S, CHURG A. HEG1 is a highly specific and sensitive marker of epithelioid malignant mesothelioma［J］. Am J Surg Pathol, 2020, 44(8): 1143-1148. ［61］ NAKAGIRI T, AMATYA V J, KUSHITANI K, et al. SPARC is a novel positive immunohistochemical marker of epithelioid mesothelioma to differentiate it from lung adenocarcinoma and/ or squamous cell carcinoma［J］. Am J Surg Pathol, 2024, 48(2): 140-149. ［62］ KIMURA N, HASEGAWA M, HIROSHIMA K. SMARCB1/ INI1/BAF47- deficient pleural malignant mesothelioma with rhabdoid features［J］. Pathol Int, 2018, 68(2): 128-132. ［63］ HUNG Y P, DONG F, WATKINS J C, et al. Identification of ALK rearrangements in malignant peritoneal mesothelioma［J］. JAMA Oncol, 2018, 4(2): 235-238. ［64］ XING D Y, BANET N, SHARMA R, et al. Aberrant Pax-8 expression in well-differentiated papillary mesothelioma and malignant mesothelioma of the peritoneum: a clinicopathologic study［J］. Hum Pathol, 2018, 72: 160-166. ［65］ BERG K B, CHURG A. GATA3 immunohistochemistry for distinguishing sarcomatoid and desmoplastic mesothelioma from sarcomatoid carcinoma of the lung［J］. Am J Surg Pathol, 2017, 41(9): 1221-1225. ［66］ TERRA S B S P, RODEN A C, AUBRY M C, et al. Utility of immunohistochemistry for MUC4 and GATA3 to aid in the distinction of pleural sarcomatoid mesothelioma from pulmonary sarcomatoid carcinoma［J］. Arch Pathol Lab Med, 2021, 145(2): 208-213. ［67］ TERRA S, RODEN A C, YI E S, et al. Loss of methylthioadenosine phosphorylase by immunohistochemistry is common in pulmonary sarcomatoid carcinoma and sarcomatoid mesothelioma［J］. Am J Clin Pathol, 2022, 157(1): 33-39. ［68］ RIENZO A D, CHIRIEAC L R, HUNG Y P, et al. Largescale analysis of BAP1 expression reveals novel associations with clinical and molecular features of malignant pleural mesothelioma［J］. J Pathol, 2021, 253(1): 68-79. ［69］ CHAPEL D B, HORNICK J L, BARLOW J, et al. Clinical and molecular validation of BAP1, MTAP, P53, and Merlin immunohistochemistry in diagnosis of pleural mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2022, 35(10): 1383-1397. ［70］ PETERS S, SCHERPEREEL A, CORNELISSEN R, et al. First-line nivolumab plus ipilimumab versus chemotherapy in patients with unresectable malignant pleural mesothelioma: 3-year outcomes from CheckMate 743［J］. Ann Oncol, 2022, 33(5): 488-499. ［71］ CHAPEL D B, STEWART R, FURTADO L V, et al. Tumor PDL1 expression in malignant pleural and peritoneal mesothelioma by Dako PD-L1 22C3 pharmDx and Dako PD-L1 28-8 pharmDx assays［J］. Hum Pathol, 2019, 87: 11-17. ［72］ BRCIC L, KLIKOVITS T, MEGYESFALVI Z, et al. Prognostic impact of PD-1 and PD-L1 expression in malignant pleural mesothelioma: an international multicenter study［J］. Transl Lung Cancer Res, 2021, 10(4): 1594-1607. ［73］ GAZIVODA V P, KANGAS-DICK A W, GREENBAUM A A, et al. Expression of PD-L1 in patients with malignant peritoneal mesothelioma: a pilot study［J］. J Surg Res, 2022, 277: 131-137. ［74］ BUENO R, STAWISKI E W, GOLDSTEIN L D, et al. Comprehensive genomic analysis of malignant pleural mesothelioma identifies recurrent mutations, gene fusions and splicing alterations［J］. Nat Genet, 2016, 48(4): 407-416. ［75］ HMELJAK J, SANCHEZ-VEGA F, HOADLEY K A, et al. Integrative molecular characterization of malignant pleural mesothelioma［J］. Cancer Discov, 2018, 8(12): 1548-1565. ［76］ DAGOGO-JACK I, MADISON R W, LENNERZ J K, et al. Molecular characterization of mesothelioma: impact of histologic type and site of origin on molecular landscape［J］. JCO Precis Oncol, 2022, 6: e2100422. ［77］ LADANYI M. Implications of P16/CDKN2A deletion in pleural mesotheliomas［J］. Lung Cancer, 2005, 49(Suppl 1):  S95-S98. ［78］ ILLEI P B, RUSCH V W, ZAKOWSKI M F, et al. Homozygous deletion of CDKN2A and codeletion of the methylthioadenosine phosphorylase gene in the majority of pleural mesotheliomas［J］. Clin Cancer Res, 2003, 9(6): 2108-2113. ［79］ BRCIC L, STANG N L, GALLOB F, et al. A combination of MTAP and p16 immunohistochemistry can substitute for CDKN2A fluorescence in situ hybridization in diagnosis and prognosis of pleural mesotheliomas［J］. Arch Pathol Lab Med, 2023, 147(3): 313-322. ［80］ SA-NGIAMWIBOOL P, HAMASAKI M, KINOSHITA Y, et al. Usefulness of NF2 hemizygous loss detected by fluorescence in situ hybridization in diagnosing pleural mesothelioma in tissue and cytology material: a multi-institutional study［J］. Lung Cancer, 2023, 175: 27-35. ［81］ MARTIN S D, CHEUNG S, CHURG A. Immunohistochemical demonstration of merlin/NF2 loss in mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2023, 36(1): 100036. ［82］ 孙蒙, 柏乾明, 赵露, 等. 荧光原位杂交检测p16基因缺失在恶性间皮瘤中的诊断价值［J］. 中华病理学杂志, 2020, 49(12): 1314-1316. SUN M, BAI Q M, ZHAO L, et al. Detection of p16 by fluorescence in situ hybridization and immunohistochemistry in malignant mesothelioma ［J］. Chin J Pathol, 2020, 49(12): 1314-1316. ［83］ SMITH-HANNAH A, NAOUS R. Primary peritoneal epithelioid mesothelioma of clear cell type with a novel VHL gene mutation: a case report［J］. Hum Pathol, 2019, 83: 199-203. ［84］ MICHAL M, KRAVTSOV O, ROSS J S, et al. Clear cell mesotheliomas with inactivating VHL mutations and nearhaploid genomic features［J］. Genes Chromosomes Cancer, 2023, 62(5): 267-274. ［85］ ARGANI P, LIAN D W Q, AGAIMY A, et al. Pediatric mesothelioma with ALK fusions: a molecular and pathologic study of 5 cases［J］. Am J Surg Pathol, 2021, 45(5): 653-661. ［86］ PANAGOPOULOS I, THORSEN J, GORUNOVA L, et al. RNA sequencing identifies fusion of the EWSR1 and YY1 genes in mesothelioma with t(14;22)(q32;q12)［J］. Genes Chromosomes Cancer, 2013, 52(8): 733-740. ［87］ DERMAWAN J K, TORRENCE D, LEE C H, et al. EWSR1: : YY1 fusion positive peritoneal epithelioid mesothelioma harbors mesothelioma epigenetic signature: report of 3 cases in support of an emerging entity［J］. Genes Chromosomes Cancer, 2022, 61(10): 592-602. ［88］ DESMEULES P, JOUBERT P, ZHANG L, et al. A subset ofmalignant mesotheliomas in young adults are associated with recurrent EWSR1/FUS-ATF1 fusions［J］. Am J Surg Pathol, 2017, 41(7): 980-988. ［89］ WHITAKER D, HENDERSON D W, SHILKIN K B. The concept of mesothelioma in situ: implications for diagnosis and histogenesis［J］. Semin Diagn Pathol, 1992, 9(2): 151-161. ［90］ CHURG A, HWANG H, TAN L, et al. Malignant mesothelioma in situ［J］. Histopathology, 2018, 72(6): 1033-1038. ［91］ CHURG A, GALATEAU-SALLE F, RODEN A C, et al. Malignant mesothelioma in situ: morphologic features and clinical outcome［J］. Mod Pathol, 2020, 33(2): 297-302. ［92］ DANUZZO F, RAVEGLIA F, SPINELLI F, et al. Pleural mesothelioma in situ: a comprehensive review［J］. Eur J Cancer Prev, 2024, 33(6): 545-551. ［93］ SYMES E, TJOTA M, CODY B, et al. Mesothelioma in situ of the peritoneum: report of three cases and review of the literature［J］. Histopathology, 2024, 84(3): 492-506. ［94］ KOBAYASHI Y, YASUHARA Y, ARAI H, et al. Mesothelioma in situ of the spermatic cord arising from a patent processus vaginalis: a case report［J］. Urol J, 2020, 17(6): 671-673. ［95］ GALATEAU-SALLE F, HAMILTON T, MACNEILL A, et al. Mesothelioma in situ mimicking well-differentiated papillary mesothelial tumor［J］. Am J Surg Pathol, 2023, 47(5): 611-617. ［96］ HIDAKA K, TAKEDA T, KINOSHITA Y, et al. Development of mesothelioma in situ and its progression to invasive disease observed in a patient with uncontrolled pleural effusions for 15 years［J］. Pathol Int, 2020, 70(12): 1009-1014. ［97］ KLEBE S. Progression of mesothelioma in situ to invasive disease 4 years and 10 months after initial diagnosis［J］. Pathology, 2022, 54(3): 384-386. ［98］ NASO J R, CHURG A. Claudin-4 shows superior specificity for mesothelioma vs non-small cell lung carcinoma compared with MOC-31 and Ber-EP4［J］. Hum Pathol, 2020, 100: 10-14. ［99］ STEVERS M, RABBAN J T, GARG K, et al. Well-differentiated papillary mesothelioma of the peritoneum is genetically defined by mutually exclusive mutations in TRAF7 and CDC42［J］. Mod Pathol, 2019, 32(1): 88-99. ［100］ HUNG Y P, DONG F, TORRE M, et al. Molecular characterization of diffuse malignant peritoneal mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2020, 33(11): 2269-2279. ［101］ SHAH I A, SALVATORE J R, KUMMET T, et al. Pseudomesotheliomatous carcinoma involving pleura and peritoneum: a clinicopathologic and immunohistochemical study of three cases［J］. Ann Diagn Pathol, 1999, 3(3): 148-159. ［102］ PRABHAKARAN S, HOCKING A, KIM C, et al. The potential utility of GATA binding protein 3 for diagnosis of malignant pleural mesotheliomas［J］. Hum Pathol, 2020, 105: 1-8. ［103］ CHURG A, LE STANG N, DACIC S, et al. Solid papillary mesothelial tumor［J］. Mod Pathol, 2022, 35(1): 69-76. ［104］ AGAIMY A, BRCIC L, BRISKI L M, et al. NR4A3 fusions characterize a distinctive peritoneal mesothelial neoplasm of uncertain biological potential with pure adenomatoid/microcystic morphology［J］. Genes Chromosomes Cancer, 2023, 62(5): 256-266. ［105］ DERAKHSHAN F, IONESCU D, CHEUNG S, et al. Use of programmed death ligand-1 (PD-L1) staining to separate sarcomatoid malignant mesotheliomas from benign mesothelial reactions［J］. Arch Pathol Lab Med, 2020, 144(2): 185-188. ［106］ MEYERHOFF R R, YANG C F, SPEICHER P J, et al. Impact of mesothelioma histologic subtype on outcomes in the Surveillance, Epidemiology, and End Results database［J］. J Surg Res, 2015, 196(1): 23-32. ［107］ SINGHI A D, KRASINSKAS A M, CHOUDRY H A, et al. The prognostic significance of BAP1, NF2, and CDKN2A in malignant peritoneal mesothelioma［J］. Mod Pathol, 2016, 29(1): 14-24. ［108］ MCGREGOR S M, MCELHERNE J, MINOR A, et al. BAP1 immunohistochemistry has limited prognostic utility as a complement of CDKN2A (p16) fluorescence in situ hybridization in malignant pleural mesothelioma［J］. Hum Pathol, 2017, 60: 86-94. ［109］ BAUMANN F, FLORES E, NAPOLITANO A, e t a l . Mesothelioma patients with germline BAP1 mutations have 7-fold improved long-term survival［J］. Carcinogenesis, 2015, 36(1): 76-81. ［110］ BLUM Y, MEILLER C, QUETEL L, et al. Dissecting heterogeneity in malignant pleural mesothelioma through histo-molecular gradients for clinical applications［J］. Nat Commun, 2019, 10(1): 1333. ［111］ ALCALA N, MANGIANTE L, LE-STANG N, et al. Redefining malignant pleural mesothelioma types as a continuum uncovers immune-vascular interactions［J］. EBioMedicine, 2019, 48: 191-202. ［112］ BROSSEAU S, DANEL C, SCHERPEREEL A, et al. Shorter survival in malignant pleural mesothelioma patients with high PD-L1 expression associated with sarcomatoid or biphasic histology subtype: a series of 214 cases from the bio-MAPS cohort［J］. Clin Lung Cancer, 2019, 20(5): e564-e575. ［113］ SOBHANI N, ROVIELLO G, PIVETTA T, et al. Tumour infiltrating lymphocytes and PD-L1 expression as potential predictors of outcome in patients with malignant pleural mesothelioma［J］. Mol Biol Rep, 2019, 46(3): 2713-2720. ［114］ KLEBE S, JUDGE M, BRCIC L, et al. Mesothelioma in the pleura, pericardium and peritoneum: recommendations from the international collaboration on cancer reporting (ICCR)［J］. Histopathology, 2024, 84(4): 633-645. ［115］ WITTEKIND C, GOSPODAROWICZ M, SOBIN L. TNM classification of malignant tumours, 7th edition［M］. UICC, 8th ed. Chicago: Wiley Blackwell, 2009. ［116］ BRIERLEY J D, GOSPODAROWICZ M K, WITTEKIND C, eds. TNM classification of malignant tumours ［M］. 8th ed. Chicago: Wiley Blackwell, 2016. ［117］ RUSCH V W, CHANSKY K, NOWAK A K, et al. Malignant pleural mesothelioma. In: AJCC cancer staging manual ［M］. 8th ed. Springer, 2017: 457-468. ［118］ GILLY F N, COTTE E, BRIGAND C, et al. Quantitative prognostic indices in peritoneal carcinomatosis［J］. Eur J Surg Oncol, 2006, 32(6): 597-601. ［119］ SALO S A S, LANTTO E, ROBINSON E, et al. Prognostic role of radiological peritoneal cancer index in malignant peritoneal mesothelioma: national cohort study［J］. Sci Rep, 2020, 10(1): 13257. ［120］ CARBONE M. Transitional mesothelioma and artificial intelligence: do we need one more subtype? And do we need computers to identify them?［J］. J Thorac Oncol, 2020, 15(6): 884-887. ［121］ HARTMAN D J. Applications of artificial intelligence in lung pathology［J］. Surg Pathol Clin, 2024, 17(2): 321-328. （来源：中国癌症杂志） 声 明 凡署名原创的文章版权属《肿瘤瞭望》所有，欢迎分享、转载。本文仅供医疗卫生专业人士了解最新医药资讯参考使用，不代表本平台观点。该等信息不能以任何方式取代专业的医疗指导，也不应被视为诊疗建议，如果该信息被用于资讯以外的目的，本站及作者不承担相关责任。

Protein-making AI models have fueled the launch of a $1 billion startup and a Nobel Prize win in 2024, but are they ready to actually make drugs? Leaders of some of the largest startups working on that question say the technology is promising but not yet ready. But a tiny startup called Nabla Bio is far more bullish, posting a preprint Thursday highlighting its progress in creating antibodies from scratch that look therapeutically viable against some hard-to-drug targets in what it’s calling a first for the field. This isn’t the holy grail of having fully optimized drug candidates at the push of a button. But Nabla’s research is a step forward. The biotech’s leaders say their antibodies showed strong binding affinities and, in general, looked and behaved more like drug candidates than previous de novo efforts. Nabla said these are the first computer-generated antibodies against the family of proteins called GPCRs, which are notoriously hard to drug. The research includes eight examples of de novo antibodies against a range of targets, including proteins found in the membrane of cells like Claudin-4 and CXCR7. “The antibodies are developable, and they could potentially be real drugs,” said Frances Anastassacos, co-founder and president of Nabla. “They will have to go through lead optimization, but unlocking target space is a very exciting space to be. That’s the real promise of de novo design.” Other startups appear to be close behind, if not in lockstep, with Nabla, and that makes its first-ever claims hard to judge. For instance, a California startup called Abalone Bio told Endpoints News it has also generated de novo antibodies targeting GPCRs, the same hard-to-hit protein family cited in Nabla’s preprint. Abalone has not published those results, but presented some of its findings at an antibody engineering conference earlier this month and also framed them as a first for the field. “To our knowledge, these are the first designed GPCR antibody sequences that are functionally active,” its research poster stated. Protein design has arguably become the hottest space when applying AI to biology in 2024. David Baker, a pioneer in the field, won a share of the Nobel Prize in Chemistry last month. He also co-founded Xaira Therapeutics, which launched earlier this year with $1 billion to bring AI into drug R&D, specifically designing antibodies. A year ago, Flagship Pioneering’s Generate:Biomedicines published its own de novo model , called Chroma, and has raised nearly $750 million to build an extensive pipeline of antibody drugs. The leaders of those startups have also acknowledged the limitations of their recent work. Xaira CEO Marc Tessier-Lavigne recently told Endpoints News the AI models can generate initial hit candidates, but those still need to be improved by “old-school methods.” Generate R&D head Alexandra Snyder said earlier this year that designing from scratch isn’t yet ready for prime time, echoing what Baker has acknowledged in his own lab’s research. Despite having a fraction of the resources of Xaira or Generate, Nabla hopes to lead the field. It recently closed a $26 million Series A round and employs 16 people in its 4,500-square-foot lab in Cambridge, MA. CEO Surge Biswas, who co-founded Nabla in 2020 based on his PhD work in Harvard University geneticist George Church’s lab, said technology, rather than capital, is the key limit to progress. “Developing a system like we developed, the scarce commodity is not that you have $100 million to solve this problem,” Biswas said in an interview. “It’s not cheap, but you don’t need to raise giant amounts of capital to unlock some of these technologies.” In an interview, Church called Nabla’s preprint one of “relatively few actual success stories” in applying de novo work for so-called undruggable targets. “My hat is off to them for choosing targets well and not settling for a bunch of academic papers that settle five-decade-old challenges,” Church said. Nabla’s preprint details an AI system called JAM, or Joint Atomic Modeling, in which scientists provide the sequence and structure of a desired drug target. The system then generates antibodies that may fit that target. The most promising creations showed strong binding affinities and looked developable in lab testing, according to the preprint. There are still limitations to Nabla’s findings. They mainly made nanobodies rather than full-sized monoclonal antibodies that are commonplace in the drug industry. The paper included one example of a de novo monoclonal antibody, but that larger size also contributed to a lower binding success rate of 0.0017% for that project. Nabla doesn’t plan to advance these antibodies itself, as the company is focused on partnering with pharma, with ongoing deals with AstraZeneca, Bristol Myers Squibb and Takeda.

The floodgates for AI-enabled protein design burst open in 2024, with the Institute for Protein Design's David Baker claiming a Nobel Prize in chemistry for his foundational work, and DeepMind's unveiling of AlphaFold 3 to predict protein structures and interactions with  "unprecedented accuracy" (see – ViewPoints: Madrona's Chris Picardo on the AI-biotech convergence and ViewPoints: Expert expounds on potential for AlphaFold 3 to revolutionise research, democratise drug discovery).The year has also seen a slew of startups launch with aspirations to leverage computational technologies for drug design — and now Nabla Bio claims to have accomplished just that. The biotech, which emerged from stealth with a $26-million series A in May, pulled back the curtain on its Joint Atomic Modeling (JAM) platform on Friday. The technology, based on work out of George Church's laboratory at Harvard Medical School, can design lead-quality antibodies based on a target protein sequence or structure, the company said. Announcing the release of its technical paper detailing JAM's capabilities, the Nabla team noted that substantial progress has been made to predict protein structure and design proteins de novo — but noted that in regards to therapeutics, computational protein design tools have made relatively little progress to develop viable drugs. "Antibodies, as the most established drug format, are a great first real-world test for de novo drug design," Nabla said. "However, so far no AI systems have shown they are able to produce high quality lead antibodies from scratch in a way that is robust and generalises across protein targets and antibody formats."According to the company, JAM can design de novo proteins that closely resemble chimeric or humanised antibodies with good affinity, epitope-specificity and function — with no optimisation. With the technology, Nabla theorised that it's possible to replace traditional discovery methods with de novo design, thereby accelerating the development process while also cutting costs. Specificity against intractable targetsTo challenge its JAM platform, Nabla set out to design antibodies that can target several challenging or intractable classes of proteins, including multipass membrane proteins like GPCRs, tight junction proteins, disorder proteins and transiently stable complexes.The company successfully designed de novo, therapeutic-range antibodies against one undisclosed protein target and seven disclosed proteins: SARS-CoV-2 RDB, HER2, IL-13, PD-1, TrkA, CLDN4, CXCR7. Nabla said that its antibodies against the latter two targets, which are multipass membrane proteins, are the first computational designed binders of any kind to engage with CLDN4 and CXCR7.While the generated antibodies are more representative of lead molecules than fully optimised drugs, Nabla said they serve as "a robust starting point… to reach therapeutic-grade performance." The company highlighted that the AI-designed antibodies had high epitope-specificity, as they rarely bound another target. "This boost in specificity increases the likelihood of discovering functional leads and cuts down on wasted effort," Nabla said. Additionally, the firm said the antibodies had expression levels, monomericity and polyreactivity at or better than leading monoclonal products, suggesting they are well suited for manufacturing and formulation.