TMBIM6

中文摘要目的   研究绝对负压厂房对Sabin株脊髓灰质炎灭活疫苗（Sabin strain inactivated poliomyelits vaccine，sIPV）质量的影响。方法   按照批准的生产工艺在绝对负压厂房生产sIPV Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型单价原液各3批，配制3批sIPV三价半成品并分装成3批成品。按照企业注册标准（企标）对原液、半成品和成品进行全项检测，并将有效性指标（D抗原含量、效力试验）检测结果与相对负压厂房生产、检验合格的相对应中间产品和成品检测结果进行对比分析。对绝对负压厂房生产的Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型单价原液及成品进行2~8 ℃长期稳定性考察和25、37 °C加速稳定性考察，以进一步确认该厂房对sIPV质量的影响。结果   绝对负压厂房生产的单价原液中Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型D抗原含量分别为≥400、≥200、≥400 D抗原单位（D-antigen unit，DU）/ml，半成品中分别为48~84、54~90、82~128 DU/ml，成品中分别为24~42、27~45、41~64 DU/剂，各项检测结果均符合企标要求；供试品半成品半数有效剂量（50% effective dose，ED50）均高于参考品，且效力试验结果（供试品与参考品ED50比）均在警戒限内波动。相对负压与绝对负压厂房生产的sIPV原液、半成品、成品中Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型D抗原含量及半成品效力试验结果的差异无统计学意义（t值分别为-0.96、-1.69、-1.07、1.61、-0.85、0.07、0.00、-0.66、-1.04、1.93、0.83、1.31，P值均＞0.05）。稳定性考察结果显示，在疫苗有效期内的各个考察时间点的所有检测结果均符合企标的要求。结论   绝对负压厂房生产的sIPV质量稳定、可控，未对疫苗质量造成影响。正文Sabin株脊髓灰质炎（脊灰）灭活疫苗（Sabin strain inactivated poliomyelitis vaccine，sIPV）由稳定的减毒脊灰疫苗株制备而成[1]，是全球消灭脊灰的有效手段[2-3]。我国自主研发的sIPV于2015年在国内上市，安全性和免疫原性良好[4-8]。目前，国内sIPV生产均在相对负压厂房进行活病毒操作[9]，但WHO 2015年发布的《世界卫生组织在消灭特定型别野生脊灰病毒和相继停用口服OPV后最大程度降低脊灰病毒设施相关风险的全球行动计划》（GAP Ⅲ）[10]及2019年发布的《脊髓灰质炎疫苗安全生产和质量控制指南》附件4[11]，对生产脊灰病毒疫苗的设施提出了相对于环境绝对负压、安全防护和封存区的要求，以避免病毒外泄，进一步降低生物安全隐患。为确认绝对负压厂房生产的sIPV质量可控性，本研究将相对负压、绝对负压厂房生产的sIPV进行质量可比性研究[12-13]，为sIPV的生产以及生物安全保障提供指导。1材料与方法1.1供试品与参考品供试品为在绝对负压厂房采用与相对负压厂房相同条件、经批准的生产工艺生产的sIPV Ⅰ型（BⅠ1—BⅠ3）、Ⅱ型（BⅡ1—BⅡ3）和Ⅲ型单价原液（BⅢ1—BⅢ3）各3批，以及采用以上单价原液生产的三价半成品（BB1—BB3）和成品（B1—B3）各3批。D抗原参考品和效力参考品均由中国医学科学院医学生物学研究所（IMBCAMS）制备，采用中国食品药品检定研究院的国家标准品进行标定。1.2可比性研究对比数据来源相对负压厂房生产、检验合格的sIPV Ⅰ型单价原液28批（PⅠ1—PⅠ28），Ⅱ型单价原液46批（PⅡ1—PⅡ46），Ⅲ型单价原液32批（PⅢ1—PⅢ32），三价半成品52批（PB1—PB52）和成品52批（P1—P52）的检测数据均由IMBCAMS提供。1.3实验动物异常毒性试验：28~35日龄无特定病原体（specific pathogen free，SPF）级ICR小鼠，18~22 g，每批产品试验使用量5只，空白对照5只；42~56日龄清洁级Hartley豚鼠，250~350 g，每批产品试验使用量2只，空白对照2只。效力试验：42~56日龄SPF级Wistar大白鼠，175~200 g，每批产品试验使用量40只，接种效力参考品40只，空白对照10只。以上实验动物均由IMBCAMS提供，实验动物生产许可证号：SCXK（滇）K2019-002。1.4主要试剂一抗、二抗、2 mol/L H2SO4、PBS和M199稀释液均由IMBCAMS制备，牛血清白蛋白（bovine serum albumin，BSA）购自北京索莱宝科技有限公司，0.05% Tween 20购自美国Sigma公司，酶标抗体购自美国Thermo Fisher公司，3,3´,5,5´-四甲基联苯胺购自美国Seracare-KPL公司，定量检测BSA ELISA试剂盒购自无锡博生医用生物技术开发有限公司，Vero细胞蛋白质残留试剂盒购自北京天坛生物制品股份有限公司，卡那霉素残留ELISA试剂盒购自北京勤邦生物技术有限公司，Hep2细胞购自美国典型培养物保藏中心。1.5方法按照企业注册标准（企标）[14]对单价原液、三价半成品和成品进行各项检定。1.5.1  D抗原含量测定  采用ELISA测定Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型D抗原含量。用PBS将Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型一抗按一定比例稀释后，加入酶标板，室温过夜。加封闭液（PBS+1% BSA）150 μl/孔，室温封闭1.5 h。用稀释液（PBS+0.5% BSA+0.05% Tween 20）将D抗原参考品及供试品稀释至适宜浓度后加入板中，100 μl/孔，阴性对照为稀释液100 μl/孔，4 °C过夜。用稀释液将Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型二抗稀释到适宜浓度，加入板中，100 μl/孔，室温孵育。加酶标抗体室温孵育1.5 h。加底物100 μl，室温显色10 min，加2 mol/L H2SO4终止。以450 nm为检测波长测吸收值，记录各孔吸收值，通过四参数曲线拟合法计算D抗原含量。判定标准：单价原液、半成品和成品中Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型D抗原含量应分别为≥400、≥200、≥400、48~84、54~90、82~128 D抗原单位（D-antigen unit，DU）/ml和24~42、27~45、41~64 DU/剂。1.5.2  鉴别试验  同D抗原含量测定，应证明含有脊灰病毒Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型D抗原。1.5.3  病毒灭活验证试验  采用细胞培养法进行病毒灭活验证。取含1 500剂D抗原量的样品接种到Hep2细胞，于（35.5±0.5）℃培养至21 d（原始培养），并于14 d和21 d取原始培养上清液分别盲传培养各14 d。原始培养结束后，观察细胞，并在原始细胞培养物上接种与单价病毒灭活液同型别的病毒进行攻击，攻击病毒量应为接近检测限的低剂量病毒，攻击后的细胞应出现细胞病变。原始细胞培养和2次盲传细胞培养均应无致细胞病变效应（cytopathic effect，CPE）发生，表示病毒灭活彻底，无活病毒存在。1.5.4  外观检测  肉眼观察，应为橘红色或橘黄色液体，澄清透明无异物。1.5.5  效力试验  供试品和效力参考品分别按未稀释、1：3、1：9、1：27稀释度接种Wistar大白鼠，每个稀释度接种10只，每只腿部肌内注射0.5 ml。10只Wistar大白鼠接种M199稀释液，0.5 ml/只作为阴性对照。饲养观察21 d，采血分离血清，于56 ℃灭活30 min。采用中和试验方法检测血清中的抗Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型脊灰病毒抗体，以1：4为阳性判定标准，结果用Reed-Muench方法计算半数有效剂量（50% effective dose，ED50），供试品的ED50应不低于效力参考品的ED50。1.5.6  装量、pH、游离甲醛、蛋白质含量、DNA残留、无菌、细菌内毒素、异常毒性、2-苯氧乙醇含量检测  按照中国药典2015年版四部通则的相关要求进行检测[15]，其中，异常毒性检查采用ICR小鼠及豚鼠进行试验，2-苯氧乙醇含量采用高效液相色谱法检测。判定标准：装量应不少于0.5 ml，pH应在6.5~7.5，游离甲醛应≤25 μg/剂，蛋白质含量应≤10 μg/剂，DNA残留应≤50 pg/剂，无菌检查、异常毒性应为阴性，细菌内毒素应＜10 内毒素单位/剂，2-苯氧乙醇含量应在4.0~6.0 mg/ml。1.5.7  BSA、Vero细胞蛋白质、抗生素残留检测  分别采用定量检测BSA ELISA试剂盒、Vero细胞蛋白质残留试剂盒及卡那霉素残留ELISA试剂盒进行检测，BSA残留应≤50 ng/剂，Vero细胞蛋白质残留应≤200 ng/剂，抗生素残留应≤50 ng/剂。1.6统计学分析1.6.1  趋势分析  分别计算PⅠ1—PⅠ28、PⅡ 1—PⅡ46、PⅢ1—PⅢ32、PB1—PB52、P1—P52各型别D抗原含量均值（x̅）、标准差（s）、警戒上限（x̅+2s）、警戒下限（x̅-2s）、行动上限（x̅+3s）和行动下限（x̅-3s），对BⅠ1—BⅠ3、BⅡ1—BⅡ3、B Ⅲ1—BⅢ3、BB1—BB3、B1—B3各型别 D 抗原含量进行趋势分析；分别计算PB1—PB52各型别效力试验结果的x̅、s、x̅+2s、x̅-2s、x̅+3s 和x̅-3s，对 BB1—BB3各型别效力试验结果进行趋势分析。1.6.2  独立样本t检验  使用SPSS 20.0软件分别对PⅠ1—PⅠ28和BⅠ1—BⅠ3、PⅡ1—PⅡ46和BⅡ1—BⅡ3、PⅢ1—PⅢ32和BⅢ1—BⅢ3、PB1—PB52和BB1—BB3、P1—P52 和B1—B3各型别的D抗原含量及PB1—PB52和BB1—BB3各型别效力试验结果进行独立样本t检验，P＜0.05为差异有统计学意义。1.7稳定性考察对绝对负压厂房生产的sIPV Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型单价原液和成品各3批分别进行2～8 ℃长期稳定性考察和25、37 ℃加速稳定性考察，并绘制D抗原含量稳定性趋势图。1.7.1  单价原液  2~8 °C长期稳定性考察在0、3、6、9、12、18、24个月进行，0个月进行全项检测，3、6、9、18个月进行D抗原含量测定，12和24个月进行D抗原含量测定和无菌检查。25 ℃加速稳定性考察在0、1、2、3、4周进行，0周进行全项检测，1、2、3周进行D抗原含量测定，4周进行D抗原含量测定和无菌检查。37 ℃加速稳定性考察在0、7、14 d进行，0 d进行全项检测，7 d进行D抗原含量测定，14 d进行D抗原含量测定和无菌检查。1.7.2  成品  2~8 ℃长期稳定性考察在0、3、6、9、12、18、24个月进行，0、12和24个月进行全项检测，3、6、9、18个月进行鉴别试验及外观、蛋白质含量、2-苯氧乙醇含量、细菌内毒素、pH、D抗原含量检测。25 ℃加速稳定性考察在0、1、2、3、6个月进行，0、1、6个月进行全项检测，2、3个月进行外观、蛋白质含量、2-苯氧乙醇含量、细菌内毒素、pH、D抗原含量检测。37 ℃加速稳定性考察在0、7、14 d进行，0、14 d进行全项检测，7 d进行外观、蛋白质含量、2-苯氧乙醇含量、细菌内毒素、pH、D抗原含量检测。2结果2.1绝对负压厂房生产的sIPV检测结果2.1.1  单价原液  绝对负压厂房生产的3个型别sIPV单价原液各3批的检测结果均符合企标的要求，其中D抗原含量见表1。2.1.2  三价半成品  绝对负压厂房生产的sIPV三价半成品BB1—BB3检测结果均符合企标要求，其中D抗原含量及效力试验结果见表2。2.1.3  成品  绝对负压厂房生产的sIPV成品B1—B3检测结果均符合企标要求，其中D抗原含量见表3。2.2统计学分析2.2.1  趋势分析  相对负压厂房生产的sIPV各阶段D抗原含量及效力试验结果见表4—6。由表1一3可见，绝对负压厂房生产的sIPV Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型单价原液D抗原含量均在警戒限范围内波动；三价半成品Ⅰ、Ⅱ型D抗原含量在行动限范围内波动，Ⅲ型D抗原含量在警戒限范围内波动；成品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型D抗原含量均在警戒限范围内波动；三价半成品Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型效力试验结果均在警戒限范围内波动。2.2.2  独立样本t检验  经计算，相对负压和绝对负压厂房生产的sIPV单价原液、三价半成品、成品的D抗原含量以及三价半成品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型效力试验结果均服从正态分布。相对负压与绝对负压厂房生产的sIPV单价原液、三价半成品、成品中Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型D抗原含量差异均无统计学意义（t值分别为-0.96、-1.69、-1.07、1.61、-0.85、0.07、0.00、-0.66、-1.04，P值均＞0.05）；三价半成品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型效力试验结果差异也均无统计学意义（t值分别为1.93、0.83、1.31，P值均＞0.05）。2.3绝对负压厂房内生产的sIPV稳定性考察2.3.1  单价原液  绝对负压厂房生产的sIPV单价原液2~8 °C长期稳定性考察和25、37 °C加速稳定性考察全部时间点的所有考察项目均符合企标的要求，其中D抗原含量趋势见图1。2.3.2  成品  对绝对负压厂房生产的sIPV成品进行2~8 ℃长期稳定性考察，每一个考察时间点下的考察项目均符合企标的要求。在25 ℃、37 ℃加速稳定性考察中，除B1批Ⅰ、Ⅲ型和B3批Ⅱ型D抗原含量在25 ℃加速稳定性考察6个月的结果，以及B1、B2、B3批Ⅲ型D抗原含量在37 ℃加速稳定性考察14 d的结果低于合格下限外，其余考察项目的检测结果均符合企标的要求。sIPV成品D抗原含量考察趋势见图2。3讨论相比用野毒株生产的脊灰灭活疫苗，sIPV生产成本低，生产过程更安全，若产生泄露，所造成的生物安全风险也相对较低[10]。因此，WHO鼓励脊灰疫苗生产厂家采用Sabin株进行疫苗生产，以降低脊灰病毒传播风险，并将sIPV纳入WHO预认证高优先级别疫苗[16-18]。然而，WHO对sIPV活病毒的生产环境提出了绝对负压的要求，旨在消灭特定型别野生脊灰病毒和相继停用口服脊灰疫苗后最大程度地降低脊灰病毒设施的相关风险[10-11]。目前，全球已经进入消灭脊灰病毒的最终阶段，对sIPV需求逐年增加[19]，按照WHO要求设计绝对负压厂房，生产出安全、有效的sIPV具有重大意义。本研究显示，绝对负压厂房生产的sIPV Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型单价原液以及三价半成品和成品各3批检测结果均合格。此外，本研究对相对负压和绝对负压厂房生产的sIPV有效性指标D抗原含量和效力试验检测结果进行了趋势分析和独立样本t检验。趋势分析结果显示，绝对负压厂房生产的sIPV各阶段D抗原含量均在行动限范围内波动，三价半成品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型供试品ED50均高于参考品ED50，且两者比值均在警戒限范围内波动。经过独立样本t检验，相对负压与绝对负压厂房生产的sIPV各阶段D抗原含量、三价半成品效力试验结果差异均无统计学意义（P值均＞0.05）。另外，疫苗温度标签反应速率的研究显示，2~8 ℃条件下有效期为2年的疫苗（sIPV满足该条件），可等效为25 ℃保存45 d、37 ℃保存7 d[20]。在sIPV产品有效期内的各个考察时间点的所有检测结果均符合企标的要求，绝对负压厂房生产的sIPV稳定性良好，质量可靠。绝对负压的设计可减少脊灰病毒传播，降低生物安全的风险，在今后的工作中，我们应持续关注绝对负压厂房下生产的sIPV质量，为中国及世界儿童提供安全、有效的sIPV。作者周振歆1，2  易力1，2  刘一凡1，2  杨晓蕾1，2，3  杨净思1，2，31中国医学科学院&北京协和医学院医学生物学研究所，昆明  650031；2国家药品监督管理局疫苗及生物制品质量控制与评价重点实验室，成都  611731；3病毒性传染病生物制品国家地方联合工程研究中心，昆明  650503通信作者：杨净思，Email：yjs@imbcams.com.cn引用本文：周振歆, 易力, 刘一凡, 等. 绝对负压厂房生产的Sabin株脊髓灰质炎灭活疫苗质量研究 [J]. 国际生物制品学杂志, 2023, 46(3):134-140.  DOI: 10.3760/cma.j.cn311962-20221024-00072

在心肌梗死的病理过程中，冠状动脉闭塞会减少心肌细胞的新鲜血液和氧气。 在心肌梗死的病理过程中，冠状动脉闭塞会减少心肌细胞的新鲜血液和氧气。尽管再灌注和血运重建是减少心肌梗死引起的心肌缺血损伤的标准治疗方法，但再灌注本身会损伤心脏，因此心肌缺血再灌注（I/R）损伤似乎是血运重建治疗引起的并发症。 临床证据表明，心肌再灌注挑战与心肌梗死后围手术期并发症的程度密切相关。然而，由于I/R诱导的心肌功能障碍的分子途径尚不完全清楚，因此没有有效的方法来减轻心肌血运重建应激诱导的额外损伤。 图片来源：https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36923943/ 近日，来自广州医科大学的研究者们在Int J Biol Sci.杂志上发表了题为“Transmembrane BAX inhibitor motif containing 6 suppresses presenilin-2 to preserve mitochondrial integrity after myocardial ischemia-reperfusion injury”的文章，该研究表明TMBIM6和PS2是治疗心脏再灌注损伤的有前途的治疗靶点。 心肌缺血再灌注（I/R）损伤以心肌细胞线粒体损伤为特征。TMBIM6和PS2参与多种线粒体途径。研究者研究了这些蛋白质在急性再灌注损伤过程中对线粒体稳态的影响。心肌缺血再灌注后应激通过破坏野生型小鼠的线粒体完整性而损害心肌功能，诱导结构异常，并促进心肌细胞死亡，但TMBIM6转基因小鼠没有。研究者发现TMBIM6直接与PS2结合，并促进其转录后降解。 研究结果还表明，TMBIM6是一种与PS2结合并在转录后下调PS2的上游抑制剂。在小鼠中敲除PS2通过改善线粒体完整性来减少I/R损伤诱导的心脏功能障碍、炎症反应、心肌肿胀和心肌细胞死亡。这些发现表明，在心脏I/R损伤过程中，足够的TMBIM6表达可以防止PS2的积累，从而在I/R损伤时保持线粒体的完整性，并有利于心肌细胞的生存能力。 PS2缺乏维持了线粒体的潜力，减少了线粒体衍生的ROS的产生，并抑制了线粒体诱导的心肌细胞死亡，从而增强了心肌细胞的活力，提高了它们对再灌注损伤的抵抗力。迄今为止，这是首次证明PS2在I/R损伤过程中诱导线粒体功能障碍的探索。 TMBIM6和PS2。 图片来源：https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36923943/ 综上所述，TMBIM6下调和PS2上调是心脏I/R损伤期间线粒体损伤的病理因素。恢复足够的TMBIM6表达可以防止PS2的积累，从而阻断再灌注诱导的线粒体损伤，对心脏有益。因此，TMBIM6和PS2是心脏I/R损伤患者的潜在治疗靶点。（生物谷 Bioon.com） 参考文献 Li Ma et al. Transmembrane BAX inhibitor motif containing 6 suppresses presenilin-2 to preserve mitochondrial integrity after myocardial ischemia-reperfusion injury. Int J Biol Sci. 2023 Feb 13;19(4):1228-1240. doi: 10.7150/ijbs.81100.

肺癌是全球最常见的恶性肿瘤，也是癌症相关死亡的主要原因。它主要包括非小细胞肺癌(NSCLC)和小细胞肺癌(SCLC)。非小细胞肺癌占所有肺癌患者的75%-85%。 肺癌是全球最常见的恶性肿瘤，也是癌症相关死亡的主要原因。它主要包括非小细胞肺癌(NSCLC)和小细胞肺癌(SCLC)。非小细胞肺癌占所有肺癌患者的75%-85%。约40-60%的患者在确诊时已是晚期和转移性疾病。 然而，手术切除一般不适合晚期患者。推荐的治疗策略是综合全身治疗(例如，化疗、放射治疗、分子靶向治疗或免疫治疗)。但由于远处转移，晚期患者的五年生存率仅为5%。以往的研究表明，非小细胞肺癌最常见的转移部位是肺、骨、脑和肝脏。 因此，制定合理的术后随访计划，采取有针对性的干预措施，筛选转移相关蛋白，研究非小细胞肺癌的转移机制，有助于制定合理的术后随访计划和采取针对性的干预措施。 图片来源: https://doi.org/10.1186/s13046-022-02573-1 近日，来自湖州大学第一附属医院的研究者们在J Exp Clin Cancer Res杂志上发表了题为“STRIP2 motivates non-small cell lung cancer progression by modulating the TMBIM6 stability through IGF2BP3 dependent”的文章，该研究结果表明，STRIP2与IGF2BP3相互作用，以m6A依赖的方式调节TMBIM6mRNA的稳定性，可能是一种潜在的NSCLC预后生物标志物和治疗靶点。 Striatin Interaction Protein 2(STRIP2)是STRIPAK复合体的核心成分，通过调节细胞收缩和转移参与肿瘤的发生和发展。然而，STRIP2在非小细胞肺癌(NSCLC)进展中的潜在分子机制在很大程度上仍不清楚。 研究者采用定量RT-PCR、Western blotting和免疫组织化学(IHC)方法检测STRIP2和IGF2BP3在人NSCLC标本和NSCLC细胞系中的表达。在体内外研究了STRIP2在促进NSCLC进展中的作用及其分子机制。 在本研究中，研究者发现STRIP2在非小细胞肺癌组织中的表达显著升高，并且高表达与预后不良相关。STRIP2基因的敲除在体内外均能抑制肿瘤的生长和转移，而过表达的STRIP2则起到相反的作用。 机制上，P300/CBP介导的STRIP2启动子H3K27乙酰化激活可诱导STRIP2转录，并与胰岛素样生长因子2mRNA结合蛋白3(IGF2BP3)相互作用，上调IGF2BP3转录。此外，STRIP2IGF2BP3轴刺激TMBIM6mRNA的m6A修饰，增强TMBIM6的稳定性。 因此，TMBIM6依赖于STRIP2和IGF2BP3参与NSCLC细胞的增殖、迁移和侵袭。在NSCLC患者中，STRIP2、IGF2BP3和TMBIM6的高共表达与不良预后相关。 STRIP2促进非小细胞肺癌肿瘤进展的分子机制 图片来源: https://doi.org/10.1186/s13046-022-02573-1 总体而言，本研究表明，STRIP2是一种癌基因，以m6A依赖的方式介导非小细胞肺癌TMBIM6水平的稳定。（生物谷 Bioon.com） 参考文献 Xilin Zhang et al. STRIP2 motivates non-small cell lung cancer progression by modulating the TMBIM6 stability through IGF2BP3 dependent. J Exp Clin Cancer Res. 2023 Jan 13;42(1):19. doi: 10.1186/s13046-022-02573-1.