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作者
刘畅1,2 章宝丹2 涂煜1,2 周丽伟2 刘玲1,2,*
1 山东第一医科大学临床与基础医学院,济南 250117;
2 中国科学院微生物研究所真菌学国家重点实验室,中国科学院大学,北京 100101
摘要
目的 研究高山木层孔菌Phellinus monticola 14a的次级代谢产物及其对α-葡萄糖苷酶的抑制活性。方法 利用硅胶柱层析和反相高效液相色谱等方法,对该菌株的次级代谢产物进行分离纯化;结合核磁共振和质谱等波谱技术,并与相关文献比对确定化合物结构;对分离所得化合物进行α-葡萄糖苷酶抑制活性评价,对于其中抑制活性良好的化合物,进一步测定其酶动力学曲线,并通过分子对接预测可能的结合位点。结果 从菌株P. monticola 14a发酵萃取物中共分离鉴定了6个已知化合物,分别鉴定为ergosta-4,6,8(14),22-tetraen-3-one (1)、(17R)-4-hydroxy-17-methylincisterol (2)、1,1'-oxybis(2,4-di-tert-butylbenzene) (3)、iltremulanol A (4)、4β,6β-dihydroxy-1α,5β(H)-guai-9-ene (5)和α-cadinol (6)。其中化合物2对α-葡萄糖苷酶具有良好的抑制活性,IC50值为(13.13±0.78) μmol/L。酶动力学曲线表明化合物2是α-葡萄糖苷酶的混合型抑制剂,分子对接表明化合物2与α-葡萄糖苷酶具有较强的结合能力,其结合能为-8.5 kcal/mol。结论 本研究从高山木层孔菌中发现了一个具有α-葡萄糖苷酶抑制活性的化合物,为新型降糖药物的研发提供了一定的理论依据。
关键词:木层孔菌;次级代谢产物;α-葡萄糖苷酶抑制活性;酶动力学;分子对接
Secondary metabolites and their α-glucosidase inhibitory activities from the alpine fungus Phellinus monticola
Abstract Objective To investigate secondary metabolites from the alpine fungus Phellinus monticola (P. monticola)14a and their α-glucosidase inhibitory activities. Methods Silica gel column chromatography and reversed-phase high-performance liquid chromatography(RP-HPLC) were used to isolate and purify the secondary metabolites of P. monticola 14a. Their structures were elucidated by comparing the nuclear magnetic resonance (NMR) and mass spectrometry (MS) spectroscopic data with those of literatures. The isolated compounds were evaluated for their α-glucosidase inhibitory activity. For those with good inhibitory activity, their enzyme kinetic profiles were further determined and possible binding sites were predicted by molecular docking. Results Six compounds were isolated from the fermented crude extract of P.monticola 14aand identified as ergosta-4,6,8(14),22-tetraen3-one (1), (17R)-4-hydroxy-17-methylincisterol (2), 1,1'-oxybis(2,4-di-tert-butylbenzene) (3), iltremulanolA (4), 4β,6β-dihydroxy-1α,5β(H)-guai-9-ene (5) and α-cadinol (6), respectively. Compound 2showed potential inhibitory activity against α-glucosidase, with the IC50value of (13.13±0.78) μmol/L. Enzyme kinetic analysis revealed that the inhibition of α-glucosidase by compound2 was a mixed inhibition type. And the molecular docking results indicated that compound 2 has a strong binding capacity to α-glucosidase with the binding energy of -8.5 kcal/mol. Conclusion The compound with α-glucosidase inhibitory activity isolated from P. monticola 14a was found, which provided a theoretical foundation for the development of new hypoglycemic drugs.
Key words Phellinus monticola; Secondary metabolites; α-Glucosidase inhibitory activity; Enzyme kinetics; Molecular docking
糖尿病是由遗传、环境、自身免疫缺陷、不良生活习惯等多因素造成的胰岛素分泌不足或胰岛素抵抗,从而引发的以高血糖为主要特征的慢性代谢性疾病[1-2],继而导致糖尿病酮症酸中毒、心血管疾病、肾微血管病变等各种严重的急慢性并发症,严重危害患者的身心健康[3]。α-葡萄糖苷酶(α-glucosidase)是机体内碳水化合物分解代谢的一种关键酶,是糖尿病药物的重要靶点,抑制其活性可有效降低餐后血糖水平。目前临床常用来治疗2型糖尿病的α-葡萄糖苷酶抑制剂如阿卡波糖(acarbose)和伏格列波糖(voglibose)等已成为治疗糖尿病的一线药物,但因其副作用限制了临床应用的广泛性[4]。因此,当下迫切需要聚焦于以α-葡萄糖苷酶为靶点的新型抑制剂的研发,以期为糖尿病患者提供更加安全有效的治疗选择。
天然产物凭借复杂多样的结构和良好的生物安全性,成为药物研发的重要来源。近年来,天然产物来源的α-葡萄糖苷酶抑制剂因高效低毒的优势逐渐受到关注。例如,Ning等[5]从Cyclocarya paliurus的叶片提取物中分离鉴定出11个潜在的α-葡萄糖苷酶抑制剂,包括槲皮素和槲皮素-3-O-葡萄糖醛酸苷,其IC50值分别为(9.66±3.57)和(23.12±1.71) μmol/L,具有降低小鼠餐后高血糖的潜力;Zhao等[6]从南海沉积物来源真菌Aspergillus insulicola的发酵培养物中分离鉴定出一系列酚类化合物,其中epicoccolide B具有最强的α-葡萄糖苷酶抑制活性,其IC50值为(17.04 ± 0.28) μmol/L,表明这些酚类化合物具有开发成新型降糖药物的巨大潜力。
木层孔菌属(Phellinus)具有丰富的化学多样性和生物活性,其能产生多糖、黄酮、萜类和生物碱等丰富的次级代谢产物,发挥抗肿瘤、抗氧化和降血糖等多种生物学活性,具有重要的药用价值和开发潜力[7–9]。本研究进一步丰富木层孔菌属次级代谢产物库,并挖掘潜在的活性化合物,以1株高山木层孔菌P. monticola 14a为研究对象,对其进行放大发酵、萃取、分离和鉴定后得到6个化合物,分别为ergosta-4,6,8(14),22-tetraen-3-one (1)、(17R)4-hydroxy-17-methylincisterol (2)、1,1'-oxybis(2,4di-tert-butylbenzene) (3)、iltremulanol A (4)、4β,6βdihydroxy-1α,5β(H)-guai-9-ene (5)和α-cadinol (6)。此外,对分离得到的化合物进行α-葡萄糖苷酶抑制活性评价、酶动力学曲线和分子对接。化合物1~6的结构式如图1所示。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 菌株来源与鉴定
实验菌株P. monticola 14a采自四川省九龙县贡嘎山国家级自然保护区,并由中国科学院微生物研究所真菌学国家重点实验室进行表型和分子鉴定。通过提取该菌株的基因组DNA,采用ITS5和ITS4作为引物进行ITS序列扩增[10],扩增产物随后送至北京六合华大基因科技有限公司进行测序。测序结果通过BLAST与NCBI数据库中的已知序列进行比对,并结合系统发育树的构建及形态学特征分析,最终确定该菌株为高山木层孔菌[11]。1.1.2 主要仪器和试剂
Agilent Technologies 1200 Series高效液相色谱仪(美国Agilent公司),Agilent 6520液相质谱仪(美国Agilent公司),Xbridge C18分析色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 μm,美国Fisher Wharton公司),Xbridge C18半制备色谱柱(10 mm × 250 mm,5 μm,美国Fisher Wharton 公司),Bruker Avance III 500核磁共振仪(德国Bruker公司)和FlexStation 3酶标仪(美国美谷分子仪器有限公司)等;石油醚、乙酸乙酯和无水甲醇(分析纯,北京市通广精细化工公司),甲醇(色谱纯,北京艾萌宏升石油化工有限公司),柱层析硅胶(10~40 μm,200~300 目,青岛海洋化工有限公司),ODS反相硅胶(日本YMC公司),氘代氯仿(剑桥同位素实验室公司),二甲基亚砜(DMSO,上海麦克林生化科技股份有限公司),α-葡萄糖苷酶(上海源叶生物科技有限公司),对硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG,上海源叶生物科技有限公司),阿卡波糖(上海阿拉丁生化科技股份有限公司)。
1.2 方法1.2.1 菌株发酵
将保藏于-80 ℃超低温冰箱甘油管内的菌株接种至PDA平板(新鲜去皮马铃薯200 g,葡萄糖20 g,琼脂20 g,蒸馏水1 L)进行活化,28 ℃倒置培养3 d后,切取平板外缘3~4块约0.5 cm2菌块接种至YMG培养基(葡萄糖4 g,酵母提取物4 g,麦芽糖提取物10 g,蒸馏水1 L)中28 ℃恒温振荡培养箱中200 r/min培养 3~4 d获得种子液,镜检无染菌后以5%的量接种至大米固体培养基(大米100 g,蒸馏水110 mL)中,28 ℃恒温静置发酵30 d,总发酵量为10 kg。1.2.2 化合物分离纯化
发酵产物经乙酸乙酯萃取3次,减压浓缩获得乙酸乙酯粗提物60.5 g。利用减压正相硅胶柱进行分离,经石油醚-乙酸乙酯体系梯度洗脱(15:1~0:1, V/V),最后用100%甲醇洗脱,经薄层色谱分析合并相似组分后,共得到6个馏分(Fr.1~Fr.6)。Fr.2(15.5 g,PE:EA=10:1)以石油醚/乙酸乙酯(20:1~0:1, V/V)梯度洗脱进行正相硅胶柱分离,得到5个亚馏分(Fr.2.1~Fr.2.5),其中Fr.2.2(530.5 mg)经反相高效液相色谱(81%甲醇等度洗脱,2.0 mL/min)分离得到化合物4(1.5 mg,tR= 38.0 min)和化合物6(1.5 mg,t R=36.2 min)。Fr.4(12.5 g,PE:EA=8:1)以甲醇/水(3:7~1:0, V/V)梯度洗脱进行ODS反相硅胶柱分离,得到12个亚馏分(Fr.4.1~Fr.4.12),其中Fr.4.12(52.5 mg)经反相高效液相色谱(98.5%甲醇等度洗脱,2.0 mL/min)分离得到化合物1(2.8 mg,tR=31.1 min)和化合物3(3.2 mg,tR=33.0 min)。Fr.5(2.5 g,PE:EA=6:1)以甲醇/水(4:6~1:0, V/V)梯度洗脱进行ODS反相硅胶柱分离,得到5个亚馏分(Fr.5.1~Fr.5.5),其中Fr.5.3(55.6 mg)经反相高效液相色谱(84%甲醇等度洗脱,2.0 mL/min)分离得到化合物5(4.4 mg,tR=16.5 min),Fr.5.4(45.3 mg)经反相高效液相色谱(100%甲醇等度洗脱,2.0 mL/min)分离得到化合物2(4.8 mg,tR=12.8 min)。1.2.3 α-葡萄糖苷酶抑制活性评价及IC50测定
参考Zhu等[12]文献方法并稍作调整,以PNPG为底物对化合物1~6(终浓度为100、50、25、12.5、6.25和3.125 μmol/L)进行α-葡萄糖苷酶抑制活性评价。将DMSO溶解的化合物用PBS缓冲液(100 mmol/L,pH 6.8)配制25 μL的化合物溶液,加入50 μL的0.5 U/mL的 α-葡萄糖苷酶,在37 ℃下孵育10 min后,加入25 μL的2.5 mmol/L PNPG混合反应10 min,反应结束后加入100 μL 0.1 mol/L的Na2CO3溶液终止反应,并立即用酶标仪检测405 nm下的吸光度,计算抑制率。使用阿卡波糖作为阳性对照,DMSO作为阴性对照,PBS缓冲液作为空白对照。实验平行3次。
抑制率计算公式:
抑制率(%)=[1‒(A样品组‒A样品对照组)/(A阴性对照组‒A空白对照组)]×100%
根据不同浓度下的抑制率用Graphpad Prism9.5软件计算化合物抑制α-葡萄糖苷酶的IC50值。1.2.4 α-葡萄糖苷酶抑制活性动力学分析
参考Zhang等[13]文献方法并稍作调整,保持酶浓度(0.5 U/mL)不变,分别改变化合物浓度(12.5、25和50 μmol/L)和底物浓度(1.5625、3.125、6.25、12.5和25 mmol/L),参考“1.2.3”所述方法在405 nm下测定A值。使用双倒数作图法(Lineweaver-Burk),以1/[S](PNPG浓度的倒数)为横坐标,1/V(酶促分解速率的倒数)为纵坐标绘制相关曲线,同时确定酶的Michaelis-Menten常数(Km,直线与X轴交点的倒数)和最大速率(Vmax,直线与Y轴交点的倒数)参数。然后通过比较化合物加入与否Km及Vmax的变化来判断其对α-葡萄糖苷酶的抑制类型。同时通过二次作图计算化合物的游离酶抑制常数(Ki)值和酶-底物复合物抑制常数(Kis)值,判断化合物与游离酶/酶-底物复合物结合的优先程度。1.2.5 分子对接预测α-葡萄糖苷酶结合位点
参考Zhang[14]等文献方法,从Pubchem数据库下载化合物的SDF格式,随后导入到Chemdraw 3D中,利用MM2模块进行能量最小化,获得能量最低的优势构象并保存为Mol2文件。从PDB(Protein Data Bank)数据库中下载α-葡萄糖苷酶受体蛋白的晶体结构文件(PDBID:3A4A),随后利用Pymol进行可视化,然后用Mgtools 1.5.6通过去水、加氢,计算电荷和合并非极性氢等处理后,将配体与受体分别保存为PDBQT格式。使用Autodock Vina 1.1.2软件将配体与受体进行对接,取打分较高的构象并用Pymol和Discovery Studio软件作图。
2 结果与分析2.1 结构解析
化合物1:淡黄色油状。[α]25D+40.0 (c 0.1, MeOH),ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 393.32 [M+ H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C28H40O,不饱和度为9。1H NMR (500 MHz, CDCl3)δH: 6.61 (d, J=9.4 Hz, 1H, H-7), 6.03 (d, J=9.4 Hz, 1H, H-6), 5.73 (s, 1H, H-4), 5.26 (dd, J=7.4, 15.2 Hz, 1H, H-23), 5.20 (dd, J=8.1, 15.2 Hz, 1H, H-22), 2.53 (m, 1H, Ha-2), 2.48 (m, 1H, Ha-15), 2.44 (m, 1H, Hb-2), 2.38 (m, 1H, Hb-15), 2.15 (m, 1H, H-20), 2.13 (m, 1H, H-9), 2.08 (dt, J=3.5, 12.9 Hz, 1H, Ha-12), 2.04 (m, 1H, Ha-1), 1.87 (m, 1H, H-24), 1.83 (m, 1H, Ha-16), 1.80 (m, 1H, Hb-1), 1.70 (m, 1H, Hb-11), 1.60 (m, 1H, Ha-11), 1.50 (m, 1H, Hb-16), 1.49 (m, 1H, H-25), 1.29 (m, 1H, Hb-12), 1.25 (m, 1H, H-17), 1.06 (d, J=6.9 Hz, 3H, H3-21), 0.99 (s, 3H, H319), 0.96 (s, 3H, H3-18), 0.93 (d, J=6.9 Hz, 3H, H3-28), 0.85 (d, J=6.7 Hz, 3H, H3-27), 0.83 (d, J=6.7 Hz, 3H, H3-26); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 199.7 (C-3), 164.5 (C-5), 156.2 (C-14), 135.2 (C-22), 134.2 (C-7), 132.7 (C-23), 124.6 (C-6/8), 123.2 (C-4), 55.9 (C-17), 44.5 (C-9), 44.1 (C-13), 43.0 (C-24), 39.4 (C-20), 36.9 (C-10), 35.7 (C-12), 34.3 (C-1/2), 33.2 (C-25), 27.9 (C16), 25.2 (C-15), 21.4 (C-21), 20.1 (C-26), 19.8 (C-27), 19.1 (C-11/18), 17.8 (C-28), 16.8 (C-19)。以上波谱数据与文献数据比对一致[15],因此鉴定该化合物为ergosta-4,6,8(14),22-tetraen-3-one。
化合物2:淡黄色油状。[α]25D+74.0 (c 0.1, MeOH),ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 333.24 [M+H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C21H32O3,不饱和度为6。1H NMR (500 MHz, CDCl3)δH: 5.63 (d, J=1.9 Hz, 1H, H-2), 5.25 (dd, J=8.4, 15.3 Hz, 1H, H-16), 5.16 (dd, J=7.7, 15.3 Hz, 1H, H-15), 2.64 (m, 1H, H-8), 2.28 (m, 1H, Hb-5), 2.06 (m, 1H, H-13), 1.95 (m, 1H, Hb-6), 1.85 (m, 1H, Hb-10), 1.84 (m, 1H, H-17), 1.82 (m, 1H, Ha-5), 1.69 (m, 1H, Hb-9), 1.61 (m, 1H, Ha-6), 1.48 (m, 1H, Ha-9), 1.47 (m, 1H, H-11), 1.46 (m, 1H, H-18), 1.45 (m, 1H, Ha-10), 1.04 (d, J=6.7 Hz, 3H, H3-14), 0.92 (d, J=6.9 Hz, 3H, H3-21), 0.84 (d, J=6.6 Hz, 3H, H3-20), 0.82 (d, J=6.9 Hz, 3H, H3-19), 0.60 (s, 3H, H3-12); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 171.1 (C-1), 170.8 (C-3), 134.8 (C-15), 133.0 (C-16), 112.4 (C-2), 105.0 (C-4), 55.5 (C-11), 50.5 (C-8), 49.0 (C-7), 43.0 (C-17), 40.3 (C-13), 35.4 (C-5), 35.2 (C-6), 33.2 (C-18), 29.0 (C-10), 21.5 (C-9), 21.2 (C-14), 20.1 (C-20), 19.8 (C-19), 17.8 (C-21), 11.9 (C-12)。以上波谱数据与文献数据比对一致[16],因此鉴定该化合物为(17R)-4-hydroxy-17methylincisterol。
化合物3:淡黄色油状。ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 395.32 [M+ H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C28H42O,不饱和度为8。1H NMR (500 MHz, CDCl3) δH: 7.54 (d, J=8.6 Hz, 2H, H-6/6'), 7.36 (d, J=2.2 Hz, 1H, H-3), 7.35 (d, J=2.2 Hz, 1H, H-3'), 7.13 (dd, J=2.5, 8.6 Hz, 2H, H-5/5'), 1.34 (s, 18H, H38/8'/9/9'/10/10'), 1.29 (s, 18H, H3-12/12'/13/13'/14/14'); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 147.8 (C-1/1'), 147.2 (C-4/4'), 138.6 (C-2/2'), 124.6 (C-3/3'), 124.1 (C-5/5'), 119.2 (C-6/6'), 35.0 (C-7/7'), 34.6 (C-11/11'), 31.5 (C-12/12'/13/13'/14/14'), 30.3 (C-8/8'/9/9'/10/10')。以上波谱数据与文献数据比对一致[17],因此鉴定该化合物为1,1'-oxybis(2,4-di-tert-butylbenzene)。
化合物4:无色油状。[α]25D+25.3 (c 0.1, MeOH), ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 221.19 [M+ H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C15H26O,不饱和度为3。1H NMR (500 MHz, CDCl3)δH: 3.78 (dd, J=9.4, 10.7 Hz, 1H, Ha-12), 3.69 (dd, J=6.2, 10.7 Hz, 1H, Hb-12), 2.95 (m, 1H, H-7), 2.28 (m, 1H, H-3), 2.08 (dd, J=2.4, 15.0 Hz, 1H, Ha-10), 1.89 (m, 1H, Ha-5), 1.86 (m, 1H, Hb-10), 1.75 (m, 1H, Ha-4), 1.72 (m, 1H, H-6), 1.69 (s, 3H, H3-11), 1.64 (m, 1H, Hb-4), 1.58 (m, 1H, Hb-5), 1.55 (m, 1H, Hb-8), 1.44 (m, 1H, Ha-8), 1.05 (s, 3H, H315), 0.84 (s, 3H, H3-14), 0.81 (d, J=6.9 Hz, 3H, H3-13); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 140.0 (C-1), 127.7 (C2), 61.5 (C-12), 49.0 (C-3), 48.8 (C-10), 46.0 (C-7), 45.9 (C-8), 37.0 (C-9), 32.0 (C-6), 31.9 (C-5), 28.8 (C-15), 27.2 (C-14), 23.8 (C-11), 20.8 (C-4), 12.2 (C-13)。以上波谱数据与文献数据比对一致[18],因此鉴定该化合物为iltremulanol A。
化合物5:无色油状。[α]25D +12.8 (c 0.1, MeOH), ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 239.19 [M+ H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C15H26O2,不饱和度为3。1H NMR (500 MHz, CDCl3)δH: 5.50 (brd, J=9.5 Hz, 1H, H-9), 4.14 (dd, J=4.1, 9.6 Hz, 1H, H-6), 2.30 (m, 1H, H-1), 2.27 (m, 1H, Ha-8), 2.09 (dd, J=9.5, 12.0 Hz, 1H, H-5), 1.83 (m, 1H, Ha-2), 1.80 (m, 1H, Hb8), 1.73 (m, 1H, Ha-3), 1.69 (m, 1H, Hb-2), 1.67 (brs, 3H, H3-14), 1.63 (m, 1H, H-11), 1.60 (m, 1H, Hb-3), 1.32 (s, 3H, H3-15), 1.26 (m, 1H, H-7), 1.02 (d, J=6.7 Hz, 3H, H3-12), 0.95 (d, J=6.6 Hz, 3H, H3-13); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 139.4 (C-10), 126.3 (C-9), 81.3 (C-4), 72.6 (C-6), 57.6 (C-5), 50.7 (C-7), 42.5 (C-1), 40.1 (C3), 28.6 (C-11), 26.8 (C-2), 24.5 (C-8), 24.3 (C-14), 23.3 (C-15), 21.6 (C-13), 21.5 (C-12)。以上波谱数据与文献数据比对一致[19],因此鉴定该化合物为4β,6β-dihydroxy-1α,5β(H)-guai-9-ene。
化合物6:无色油状。[α]25D-5.7(c 0.1, MeOH), ESI-MS显示其分子离子峰为m/z 223.19 [M+ H]+,结合1H NMR与13C NMR数据推测其分子式为C15H26O,不饱和度为3。1H NMR (500 MHz, CDCl3)δH: 5.50 (s, 1H, H-5), 2.16 (m, 1H, H-11), 1.99 (m, 1H, Hb-3), 1.98 (m, 2H, H-2), 1.80 (m, 1H, Hb-9), 1.72 (m, 1H, H-6), 1.67 (s, 3H, H3-15), 1.60 (m, 1H, Hb-8), 1.42 (m, 1H, Ha9), 1.23 (m, 1H, Ha-3), 1.22 (m, 1H, H-1), 1.13 (m, 1H, Ha-8), 1.10 (s, 3H, H3-14), 1.04 (m, 1H, H-7), 0.92 (d, J=7.0 Hz, 3H, H3-12), 0.77 (d, J=7.0 Hz, 3H, H3-13); 13C NMR (125 MHz, CDCl3) δC: 135.1 (C-4), 122.5 (C-5), 72.6 (C-10), 50.2 (C-1), 46.8 (C-7), 42.3 (C-9), 40.0 (C6), 31.1 (C-2), 26.1 (C-11), 24.0 (C-15), 22.8 (C-3), 22.1 (C-8), 21.7 (C-12), 20.9 (C-14), 15.3 (C-13)。以上波谱数据与文献数据比对一致[20],因此鉴定该化合物为α-cadinol。
2.2 α-葡萄糖苷酶抑制活性实验结果
2.2.1 α-葡萄糖苷酶抑制活性评价及IC50测定
化合物1~6的α-葡萄糖苷酶抑制活性评价结果(图2A)表明,在100 μmol/L终浓度下,化合物 2对α-葡萄糖苷酶表现较强的抑制活性,抑制率为(82.32±0.18)%,阳性对照阿卡波糖的抑制率为 (90.14±0.47)%。进一步测定IC50值,结果如图2B所示,IC50值为(13.13±0.78) μmol/L,阳性对照阿卡波糖的IC50值为(1.59±0.37) μmol/L。其余化合物在测试浓度范围内对α-葡萄糖苷酶均未表现出明显的抑制活性。
2.2.2 α-葡萄糖苷酶动力学曲线
运用Lineweaver-Burk图(双倒数作图)来确定化合物2对α-葡萄糖苷酶的抑制模式。在Lineweaver-Burk图中(图3A),化合物2随着其化合物浓度的增加,Km值增加,Vmax值减小,所有直线相交于第二象限,表明化合物2既能结合游离酶又能结合酶-底物复合物,是α-葡萄糖苷酶的混合型抑制剂。进一步通过对斜率和截距进行二次作图(图3B~C),计算其Kis值(酶-底物复合物抑制常数)为31.89 μmol/L;Ki值(游离酶抑制常数)为200.83 μmol/L,Ki值大于Kis值,表明化合物2优先与酶-底物复合物结合。
2.2.3 分子对接预测α-葡萄糖苷酶结合位点
进一步使用Autodock vina 1.1.2软件将配体与受体进行分子对接,结果如图4所示,化合物2与α-葡萄糖苷酶的结合能为-8.5 kcal/mol,小于-5 kcal/mol,表明化合物2能够有效地结合到蛋白的活性口袋。随后通过分析三维相互作用,化合物2主要通过氢键和疏水相互作用与α-葡萄糖苷酶活性位点的氨基酸残基结合从而发挥抑制活性,分别与蛋白的THR-310氨基酸残基形成氢键相互作用,与蛋白的TYR-158、PHE-159、TYR-72、VAL-216、PHE-303氨基酸残基形成疏水相互作用,这些相互作用共同促进化合物2结合到蛋白的活性口袋形成复合物。
3 讨论与结论
本研究从一株高山木层孔菌P. monticola 14a发酵产物中共分离鉴定得到6个化合物,包括2个甾体类化合物(1和2),1个双酚类化合物(3)以及3个倍半萜类化合物(4~6),其中化合物2~6从木层孔菌属中首次分离得到。据文献报道,化合物1对脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)诱导的RAW 264.7细胞中一氧化氮(nitric oxide,NO)的生成具有一定抑制作用[21],表现出潜在的抗炎活性,还具有一定的细胞毒[22]和除草[23]活性;化合物2对卵巢癌SK-OV-3细胞、皮肤黑色素瘤SK-MEL-2细胞和结肠癌HCT-15细胞等多株肿瘤细胞系具有显著的细胞毒活性,IC50值在(1.14~1.97) μmol/L之间[24-25],还能通过直接抑制乙酰胆碱酯酶活性并上调α7nAchR的表达从而发挥抗炎作用[26];化合物3显著抑制LPS诱导的BV2细胞中NO的生成,具有潜在的抗神经炎作用[27];化合物6具有一定的钙拮抗[28]、抗真菌[29]和显著的血管紧张素转换酶(angiotensin-converting enzyme,ACE)抑制活性[30],对结肠癌HCT-15细胞具有显著的细胞毒活性,IC50值为0.7 μmol/L[31]。
临床常用α-葡萄糖苷酶抑制类抗糖药物阿卡波糖主要通过其类似寡糖的结构与关键氨基酸残基(包括Asp542、Asp443、His600、Asp327和Arg526等)形成氢键和疏水相互作用,与小肠上皮细胞的α-葡萄糖苷酶活性中心可逆性结合,结合能低至-7.6 kcal/mol,从而延缓碳水化合物的分解和葡萄糖的吸收,进而降低餐后血糖水平[32]。本研究通过PNPG法筛选出化合物2对α-葡萄糖苷酶具有良好的抑制活性,其IC50值为(13.13±0.78) μmol/L,并通过酶动力学曲线确定化合物2为α-葡萄糖苷酶的混合型抑制剂。进一步利用分子对接预测了其与α-葡萄糖苷酶可能的结合位点,推测化合物2的活性基团主要是羰基和烷烃侧链,通过氢键和疏水相互作用分别与THR-310、TYR-158、PHE-159、TYR-72、VAL-216和PHE-303等氨基酸残基结合,其结合能为-8.5 kcal/mol,从而稳定结合在酶的活性位点,发挥抑制活性。本研究发现了具有α-葡萄糖苷酶抑制活性的化合物,为新型降糖药物的研发提供了一定的理论依据。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突
参考文献(略)
来源:刘畅, 章宝丹, 涂煜, 等. 高山木层孔菌Phellinus monticola次级代谢产物及其α-葡萄糖苷酶抑制活性研究[J]. 中国抗生素杂志, 2026, 51(4): 423-430.
本期目录:《中国抗生素杂志》第51卷第4期目次
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