“
点击蓝字 关注我们
交泰丸调控胰腺5-羟色胺系统改善胰岛β细胞功能的机制研究 PPS
曹雯1#,赵一璟1,2#,陈煜2,杨昱1,王苏1,陈堃1,王昆1*
(1. 南京医科大学附属江宁医院内分泌科,江苏 南京211100;2. 南京中医药大学附属中西医结合医院内分泌实验室,江苏 南京210028)
[摘要] 背景 胰岛β细胞功能损伤是2型糖尿病(type2 diabetes mellitus ,T2DM)的主要病理机制之一。胰岛β细胞自身分泌的血清素[5-羟色胺(5-hydroxytryptamine ,5-HT)]在葡萄糖刺激下能够增加胰岛β细胞数量并促进胰岛素分泌。交泰丸(Jiao-Tai-Wan, JTW)是一种具有降糖功效的传统中药方剂。然而,JTW是否通过调控胰腺5-HT系统改善胰岛β细胞功能损伤,目前尚不明确。目的 探究JTW在db/db小鼠中的降糖作用及其具体分子机制。方法 制备JTW溶液,采用高效液相色谱法鉴定其主要活性成分。将所有db/db小鼠随机分为5组,每组8只,分别为:糖尿病模型组(Mod组,灌胃等体积蒸馏水)、二甲双胍组(Met组,灌胃剂量0.25g·kg-1·d-1)、交泰丸低剂量组(JTWL组,灌胃剂量2.1g·kg-1·d-1)、交泰丸中剂量组(JTWM组,灌胃剂量4.2g·kg-1·d-1)和交泰丸高剂量组(JTWH组,灌胃剂量8.4g·kg-1·d-1)。实验周期为6周,每周测量小鼠体重和空腹血糖(fasting plasma glucose ,FPG),6周后内眦取血后脱颈处死小鼠。通过苏木素-伊红染色评估胰腺组织形态,采用酶联免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbent assay ,ELISA)检测各组小鼠血清胰岛素表达水平,采用定量逆转录聚合酶链反应(quantitative reverse transcription polymerase chain reaction ,qRT-PCR)检测胰腺组织中Ins1和Ins2的信使核糖核酸(messenger RNA ,mRNA)表达水平。采用ELISA、qRT-PCR、免疫荧光或免疫组化方法,评估胰腺5-HT系统相关指标的表达情况,包括5-HT、5-羟色胺受体2B(5-hydroxytryptamine receptor 2B, 5-HTR2B )和瞬时受体电位锚蛋白1(transient receptor potential ankyrin 1 ,TRPA 1)。结果 JTW可降低db/db小鼠的FPG水平,但对其体重无显著影响。同时,JTW可改善db/db小鼠的胰岛细胞形态结构,升高血清胰岛素浓度,上调胰腺组织中Ins1和Ins2的mRNA表达水平。此外,JTW还可上调db/db小鼠胰腺组织中5-HT、5-HTR2B和TRPA1的表达。结论 JTW可通过调控胰腺5-HT系统改善胰岛β细胞功能,为阐明JTW治疗T2DM的具体分子机制提供了新的研究思路。
2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus ,T2DM)是一种慢性代谢性疾病,发病机制复杂,胰岛β细胞功能障碍是其主要病理机制之一。胰岛β细胞功能障碍可导致胰岛素分泌不足,进而引发血糖升高,但其具体调控机制目前尚不完全明确。5-羟色胺(5-hydroxytryptamine ,5-HT)作为一种单胺类物质,具有多种生物学活性,需通过与不同亚型的5-羟色胺受体(5-hydroxytryptamine receptors ,5-HTRs)结合发挥生物学作用[1]。传统研究中,5-HT主要作为神经递质,在中枢神经系统疾病领域被广泛探讨。最近研究表明[2],5-HT可诱导α细胞向β细胞转化。在葡萄糖刺激条件下,胰岛β细胞也可自主合成并分泌5-HT[3],且该过程可进一步促进胰岛β细胞增殖和胰岛素分泌。基于上述研究推测,促进胰岛β细胞分泌5-HT并上调胰岛β细胞表面5-HTRs表达,可能是促进胰岛β细胞增殖、增加胰岛素分泌和改善血糖代谢的重要途径。
交泰丸(Jiao-Tai-Wan ,JTW)是一味经典中药方剂,由黄连和肉桂配伍组成,首载于中医典籍《韩氏医通》。其传统治则为交通心肾,临床常用于治疗心火亢盛证和心肾不交证。传统应用中,JTW多用于治疗失眠、认知障碍和抑郁[4-5];近期研究发现,JTW可通过上调中枢神经系统内5-HT水平发挥镇静催眠作用,从而改善失眠症状[6]。与此同时,大量临床研究证实,JTW具有显著降糖效应,其作用机制与改善胰岛β细胞功能和降低胰岛素抵抗密切相关[7-8]。然而,JTW是否通过调控胰腺5-HT系统,进而改善胰岛β细胞功能,目前尚未明确。本研究采用db/db小鼠进行体内实验,探究JTW是否通过促进胰岛β细胞产生5-HT、上调胰岛β细胞5-HTRs表达来改善胰岛β细胞功能,为阐明JTW治疗T2DM的具体分子机制提供实验依据与理论支撑。
1
材料和方法
1.1 药材与试剂
黄连(亳州市万珍中药饮片厂,产地:重庆石柱,规格:统货)和肉桂(贵州同德药业股份有限公司,产地:广西,规格:选丝)均购自江苏省中西医结合医院。所有药材均依据《中华人民共和国药典》(2020版)进行形态学鉴定。中药单体对照品包括表小檗碱、盐酸黄连碱、盐酸小檗碱、盐酸药根碱、4-羟基-3-甲氧基肉桂醛、松柏醛、肉桂醛和肉桂醇,购自拓普科学有限公司(中国)。二甲双胍片(中美上海施贵宝制药有限公司,国药准字H20023370,规格:500mg/片)购自江苏省中西医结合医院。胰岛素、5-HT、5-羟色胺受体2B(5-hydroxytryptamine receptor 2B ,5-HTR2B)和瞬时受体电位锚蛋白1(transient receptor potential ankyrin 1,TRPA 1)相关抗体均购自CST公司(德国)。5-HT和胰岛素酶联免疫吸附分析(enzyme-linked immu- nosorbent assay ,ELISA)试剂盒均购自R&D系统公司(美国)。cDNA逆转录试剂盒和SYBR Green Master Mix试剂购自应用生物系统公司(美国)。TRIzol试剂购自Invitrogen公司(美国)。
1.2 JTW制备
取黄连30g、肉桂3g,溶于80mL双蒸馏水中,制成质量浓度为0.42g·mL-1的药液,置于4℃冰箱冷藏保存,备用。
1.3 JTW化合物检测
采用高效液相色谱法(high performance liquid chromatography , HPLC)对JTW溶液进行成分分析,明确方剂中的主要化学成分。使用的对照品包括:盐酸黄连碱、表小檗碱、盐酸小檗碱、盐酸药根碱、4-羟基-3-甲氧基肉桂醛、松柏醛、肉桂醛和肉桂醇。HPLC分析采用UPLC BEH C18柱(2.1mm×100mm,1.7μm,Waters公司,美国);流动相由0.1%甲酸水溶液(A)和0.1%甲酸乙腈溶液(B)组成。洗脱梯度采用多级线性洗脱程序,具体如下:0~11min,85%~25%A;11~12min,25%~2%A;12~14min,2%A;14~14.1min,2%~85%A;14.1~16min,85%A。样品进样量设定为5μL,流速设定为0.5mL·min-1。
1.4 动物喂养和分组
5周龄雄性db/db小鼠40只(体重26~30g)购自江苏集萃药康生物科技有限公司(中国),饲养于江苏省中西医结合医院实验动物中心,研究时间为2023年6月至12月。小鼠分笼饲养,研究期间所有小鼠均不限制饮水和食物,室温(25±2)℃,相对湿度为50%~70%,通风性良好,12h交替照明。动物实验方案经江苏省中西医结合医院实验动物伦理委员会审查批准(伦理编号:AEWC-20230608-313),并遵循实验动物相关管理与保护准则。
所有db/db小鼠均喂养普通饲料(脂肪提供10%热量),喂养3周后,采用随机数字表法分为5组(每组8只),分别为糖尿病模型组(Mod组)、二甲双胍组(Met组)、交泰丸低剂量组(JTWL组)、交泰丸中剂量组(JTWM组)和交泰丸高剂量组(JTWH组)。各组小鼠每日灌胃干预1次,Mod组给予同体积蒸馏水,Met组给予二甲双胍(0.25g·kg-1·d-1),JTWL组、JTWM组、JTWH组分别给予低、中、高剂量JTW(剂量分别为2.1、4.2、8.4g·kg-1·d-1),灌胃干预持续6周。
1.5 体重和空腹血糖(fasting plasma glucose, FPG)的测定
实验期间每2周测量1次体重,同时通过尾静脉采血检测FPG水平。
1.6 血液及组织标本的留取
灌胃干预6周后,对所有小鼠采用内眦取血法采血,采血完毕后脱颈处死。所取血液于4℃条件下以3 000r·min-1转速离心10min,收集血清上清,置于-80℃冰箱保存待测。小鼠处死后,迅速剖开腹腔,摘取胰腺组织,用4℃生理盐水润洗。取部分胰腺组织置于标本冻存管中,-80℃冰箱保存待用;剩余胰腺组织用4%多聚甲醛溶液固定,用于病理形态学检测。
1.7 血清学指标检测
血清胰岛素和5-HT水平均采用ELISA法测定。
1.8 胰腺组织苏木素-伊红(hematoxylin-eosin, HE)染色
胰腺组织用4%多聚甲醛溶液固定,石蜡包埋后切成4μm厚切片;二甲苯脱蜡,梯度乙醇脱水,HE染色;染色完成后,梯度乙醇脱水,封片,于显微镜下观察胰腺组织形态并拍照留存。
1.9 免疫组化和免疫荧光检测
取石蜡包埋的胰腺组织,连续切成4μm厚切片,分别用于免疫荧光和免疫组化染色。免疫荧光染色使用5-HT抗体(大鼠来源,ImmunoStar公司,稀释比例1∶500)和胰岛素抗体(兔来源,Dako公司,稀释比例1∶500)。免疫组化染色使用5-HTR2B抗体(兔来源,Alomone公司,稀释比例1∶1 000)和TRPA1抗体(豚鼠来源,Abcam公司,稀释比例1∶500)。
1.10 胰腺组织相关基因表达检测
使用TRIzol试剂提取胰腺组织总RNA,测定RNA浓度和纯度并进行逆转录反应。定量逆转录聚合酶链反应(quantitative reverse transcription poly- merase chain reaction ,qRT-PCR)的反应程序设置如下:95℃预变性10min;随后进行40个循环的扩增反应(95℃变性10s,60℃退火与延伸60s);循环结束后进行熔解曲线分析(95℃保温15s,60℃缓慢升温至95℃)。使用相对定量2-ΔΔCt法计算各目标基因信使核糖核酸(messenger RNA,mRNA)的相对表达水平。使用的基因引物序列如表1所示。
1.11 统计分析
所有实验数据均以均值±标准差表示。2组比较采用t检验;多组比较采用单因素方差分析;多组组间比较时,方差齐性采用LSD检验,方差不齐采用Tamhane,s检验;小鼠FPG水平及体重同时采用重复测量方差分析进行比较。分析使用GraphPad Prism 7软件完成。P<0.05被视为差异具有统计学意义,分别用*P<0.05和**P<0.01表示。
2
结果
2.1 HPLC法鉴定JTW中的化合物
《中华人民共和国药典》(2020年版)中界定JTW组成的对照品包括以下化合物:盐酸黄连碱、盐酸小檗碱、表小檗碱、盐酸药根碱、4-羟基-3-甲氧基肉桂醛、松柏醛、肉桂醛和肉桂醇。采用HPLC法对JTW药液进行成分鉴定,通过与对照品比较,鉴定出JTW溶液中含有的上述8种化合物(见图1),该结果与既往相关研究结果基本一致[9]。
2.2 JTW对db/db小JTW对db/db小鼠体重和FPG水平的影响
本研究观察了JTW对db/db小鼠体重的影响,结果显示,JTW各剂量组对db/db小鼠体重无显著影响(见图2A)。对4个时间点的小鼠体重数据进行重复测量方差分析,结果显示:时间主效应显著(F=12.295,P=0.001),提示不同测量时间点小鼠体重的总体均值存在统计学差异;时间与分组的交互作用不显著(F=0.816,P=0.535),表明各组小鼠体重随时间的变化趋势一致。此外,主体间效应检验显示,不同分组间小鼠体重的平均值无显著差异(F=0.545,P=0.704)。
与体重变化不同,JTW能够显著降低db/db小鼠的FPG水平,且该降糖作用呈剂量依赖性,其中JTWH组的降糖效果最为显著(见图2B)。对4个时间点的小鼠FPG数据进行重复测量方差分析,结果显示:时间主效应不显著(F=0.605,P=0.574),提示不同时间点小鼠FPG测量值无统计学差异;时间与分组的交互作用不显著(F=1.142,P=0.352)。此外,主体间效应检验显示,不同分组间小鼠FPG的平均值存在显著差异(F=2.957,P=0.043)。
2.3 JTW对db/db小JTW对db/db小鼠体重和FPG水平的影响
胰腺组织HE染色结果显示,Mod组db/db小鼠胰腺组织中,胰岛体积缩小、边界模糊、形状不规则,胰岛内细胞数量显著减少,细胞形态异常且排列稀疏。与Mod组相比,JTW各剂量组和Met组小鼠的胰岛数量增多、体积增大,且胰岛内细胞排列更规整,胞质含量更丰富,胰腺组织病理损伤得到明显改善(见图3)。
血清学检测结果显示,与Mod组相比,JTWL组、JTWM组、JTWH组db/db小鼠的血清胰岛素水平显著升高(均P<0.05),而Met组对血清胰岛素水平的影响较小,差异无统计学意义(P>0.05),具体数据见表2。同时,JTWL组、JTWM组、JTWH组胰腺组织中Ins1和Ins2的mRNA相对表达水平均显著高于Mod组(P<0.05或P<0.01),具体数据见表2。
2.4 血清5-HT质量浓度的变化
血清ELISA检测结果显示,JTWM组、JTWH组db/db小鼠血清5-HT质量浓度显著高于Mod组(P<0.05或P<0.01),而Met组和JTWL组小鼠血清5-HT质量浓度与Mod组相比,差异无统计学意义(P>0.05),具体数据见表2。
2.5 胰腺组织中5-HT表达的变化
免疫荧光染色结果显示,与Mod组和Met组相比,JTW各剂量组胰腺组织中5-HT阳性染色面积占比增加(见图4)。该结果表提示,JTW可上调胰腺组织中5-HT的表达水平。
2.6 胰腺组织中5-HTR2B表达的变化
免疫组化染色结果显示,与Mod组和Met组相比,JTW各剂量组胰腺组织中5-HTR2B阳性染色面积占比明显增加(见图5)。qRT-PCR检测结果进一步证实,JTWL组、JTWM组、JTWH组胰腺组织中Htr2b的mRNA相对表达水平显著高于Mod组(P<0.05),具体数据见表2。
2.7 胰腺组织中TRPA1表达的变化
免疫组化染色结果显示,与Mod组和Met组相比,JTW各剂量组胰腺组织中TRPA1阳性染色面积占比增加(见图6)。qRT-PCR检测结果与之相符,JTWL组、JTWM组、JTWH组胰腺组织中Trpa1的mRNA相对表达水平显著高于Mod组(均P<0.05),具体数据见表2。
3
讨论
目前,T2DM的主要治疗手段是口服降糖药物和胰岛素注射治疗,但此类治疗方案仍存在肝功能异常、低血糖和胃肠道不适等潜在不良反应,临床应用存在一定局限性。传统中医药在T2DM的预防和治疗中展现出独特的潜在优势。近年来临床和动物实验研究均证实,JTW具有显著降糖作用[7-8],与本研究结果一致。本研究中JTW以剂量依赖方式降低db/db小鼠FPG水平,并能明显改善糖尿病小鼠胰岛细胞的形态结构。而二甲双胍仅有降糖效果,不能促进胰岛素分泌及改善胰岛形态,这是由二甲双胍作用机制决定的,其通过改善胰岛素敏感性、减少肝糖输出来降低血糖,并抑制胰岛素分泌。此外,本研究未发现JTW和二甲双胍对db/db小鼠体重产生显著影响,提示2种药物具有较好的用药安全性。已有研究报道,JTW可改善胰岛β细胞功能并降低胰岛素抵抗[7],其组方中的黄连、肉桂及从中提取的中药单体均具有促进胰岛β细胞功能完善和增殖的作用[10-11],本研究结果进一步佐证了这一结论:经JTW治疗后,糖尿病小鼠血清胰岛素浓度显著升高,胰腺组织中Ins1和Ins2的mRNA相对表达水平明显上调,提示JTW可通过促进胰岛素合成与分泌,改善胰岛β细胞功能。
既往研究证实,胰岛β细胞在葡萄糖刺激下可合成并分泌5-HT,而5-HT通过与5-HTRs结合后能够促进胰岛素分泌,这也为进一步探究中医药通过调控胰腺5-HT系统治疗T2DM提供了重要研究思路。已有报道显示,JTW可调节中枢神经系统中的5-HT水平[6],但该方剂是否能调控胰腺组织中5-HT的产生与分泌,目前尚未明确。本研究发现,JTW干预可显著改善糖尿病小鼠的胰岛素分泌功能,同时能促进胰腺组织中5-HT的表达,并提高血清5-HT质量浓度,提示JTW改善胰岛β细胞功能的作用,可能与上调胰腺5-HT的产生及分泌密切相关。
5-HTRs多属于G蛋白偶联受体家族,5-HT通过与不同亚型的5-HTRs结合发挥不同作用[12]。在5-HTRs中,5-HTR2B被证实与5-HT介导的胰岛β细胞增殖和胰岛素分泌改善相关。一项研究表明,哺乳期间,胰岛β细胞中Htr2b的表达水平显著升高,且与胰岛β细胞数量增加、功能改善呈正相关[3]。黄连作为JTW的主要组方药材,已被证实可促进胰岛β细胞产生胰岛素,但其具体机制尚未完全明确[13]。另有研究显示,黄连提取物中的小檗碱能够激活神经元突触前5-HTR1A并抑制突触后5-HTR1A和5-HTR2的表达,提示小檗碱能够特异性调控不同细胞中5-HTRs的表达[14]。然而,目前尚未有研究探讨黄连对胰岛β细胞中5-HTRs的调控作用。本研究发现,JTW干预能够上调胰腺组织中5-HTR2B的蛋白及mRNA表达水平,并同步促进胰岛素分泌,提示Htr2b可能参与JTW改善胰岛β细胞功能的调控过程,但具体机制尚不清楚。
TRPA1是一种非选择性阳离子通道,可通过介导钙离子内流促进细胞内相关物质的释放。TRPA1广泛分布于胃肠道组织,同时也在胰岛β细胞中表达[15]。已有研究证实,TRPA1通道的激活剂可导致胰岛β细胞膜去极化并产生动作电位,从而促进胰岛素分泌,且该效应可被选择性TRPA1抑制剂阻断[16]。此外,肉桂醛作为一种特异性TRPA1激动剂,可通过激活TRPA1通道,以剂量依赖方式促进细胞释放5-HT[17]。另有研究发现,低剂量肉桂醛可上调血清胰岛素水平[18]。肉桂作为JTW的另一重要组方药材,其主要有效成分肉桂醛可能通过调控TRPA1通道发挥作用。本研究结果显示,JTW干预后,胰腺组织中TRPA1的蛋白及mRNA表达水平显著升高,初步证实JTW可通过激活胰腺组织中的TRPA1,促进5-HT产生,进而介导胰岛素释放,这为阐明JTW调控胰腺5-HT系统的具体通路提供了重要线索。然而,5-HT如何进一步促进胰岛β细胞增殖和胰岛素分泌,其详细分子机制仍需后续研究深入探究。
本研究初步证实,JTW可通过激活胰腺组织TRPA1促进5-HT的产生与分泌,并上调胰腺组织中5-HTR2B的表达,进而促进胰岛素合成与分泌,最终改善胰岛β细胞功能。但本研究仍存在一定局限性:首先,本研究仅开展了体内动物实验,上述调控机制的具体细节仍需通过体外细胞实验进一步验证;其次,胰腺细胞中还表达其他亚型的5-HTRs,这些受体是否参与JTW介导的胰岛β细胞功能改善,其作用及调控关系仍需进一步探究。
4
结论
本研究初步证实,JTW可通过调控胰腺5-HT系统改善db/db小鼠胰岛β细胞功能、促进胰岛素分泌、降低FPG水平,为阐明JTW治疗T2DM的具体分子机制提供了新的见解。
参考文献:
[1] Wang H, Gu Y, Khalid R, et al. Herbal medicines for insomnia through regulating 5-hydroxytryptamine receptors: a syste- matic review[J]. Chin J Nat Med, 2023, 21(7): 483-498.
[2] Liu N, Liu T, Alim N, et al. 5-HT promotes pancreatic α-to-β cell transdifferentiation[J]. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res, 2025, 1872(5): 119958.
[3] Goyvaerts L, Schraenen A, Lemaire K,et al. Normal pregnancy-induced islet beta cell proliferation in mouse models that are deficient in serotonin-signaling[J]. Int J Mol Sci, 2022, 23(24): 15816.
[4] Xia N, Jiang C, Zhou Y, et al. A double-blind, randomized, placebo-controlled, single-center clinical trial of jiaotaiwan for the treatment of insomnia symptoms caused by disharmony of the heart and kidney[J]. Front Pharmacol, 2022, 13: 1011003.
[5] 王妍, 阮毓卿, 崔璨, 等 . 交泰丸通过激活 PI3K/AKT 信号通路改善阿尔茨海默病模型小鼠大脑的葡萄糖代谢[J]. 南方医科大学学报, 2024, 44(5): 894-903.
[6] 石晓雨, 陈丽萍, 李文斌, 等 . 经典名方防治失眠的研究进展[J]. 中南大学学报(医学版), 2023, 48(10): 1494-1505.
[7] Chen X, Yang Z, Du L, et al. Study on the active ingredients and mechanism of action of Jiaotai Pill in the treatment of type 2 diabetes based on network pharmacology: a review[J]. Medicine, 2023, 102(13): e33317.
[8] Tang Y, Su H, Wang H, et al. The effect and mechanism of Jiao-Tai-Wan in the treatment of diabetes mellitus with depression based on network pharmacology and experimental analysis[J]. Mol Med, 2021, 27(1): 154.
[9] 陈佩瑶 , 戴国梁 , 王艳军 , 等 . 交泰丸入脑成分通过 PTEN/ AKT/NF-κB通路抑制 LPS 诱导 BV2 细胞炎症的机制研究[J]. 中国医院药学杂志, 2025, 45(6): 614-621.
[10] Yu C, Qiu Y, Yan D, et al. Berberine treatment inhibits ferroptosis in NIT-1 murine pancreatic cell line via inhibiting OGT expression levels[J]. Sci Rep, 2025, 15(1): 18504.
[11] Li W, Qiao J, Lin K, et al. Ethyl-acetate fraction from a cinnamon-cortex extract protects pancreatic β -cells from oxi- dative stress damage[J]. Front Pharmacol, 2023, 14: 1111860.
[12] Cummins B R, Billac G B, Nichols D E, et al. 5-HT2A receptors: pharmacology and functional selectivity[J]. Pharmacol Rev, 2025, 77(4): 100059.
[13] 陈可, 张效科 . 中药黄连治疗 2 型糖尿病药理机制研究进展[J]. 辽宁中医药大学学报, 2025, 27(2): 94-98.
[14] Vaishnav V A D, Patel R, Maturkar V, et al. Berberine-induced behavioral effects on tail suspension test, BDNF, and CREB levels in the prefrontal cortex, hippocampus, and amygdala: modulation by central serotonergic transmission[J]. Synapse, 2025, 79(5): e70028.
[15] KudsiSQ, Piccoli B C, Ardisson-AraújoD,et al. Transcriptional landscape of TRPV 1, TRPA 1, TRPV4, and TRPM8 channels throughout human tissues[J]. Life Sci, 2022, 308: 120977.
[16] Islam M S. Molecular regulations and functions of the transient receptor potential channels of the islets of Langerhans and insulinoma cells[J]. Cells, 2020, 9(3): 685.
[17] Lieder B, Hoi J, Burian N, et al. Structure-dependent effects of cinnamaldehyde derivativeson TRPA 1-inducedserotonin release in human intestinal cell models[J]. JAgric Food Chem, 2020, 68(13): 3924-3932.
[18] 褚鹿鹿, 郭智慧, 侯婧悦, 等 . 肉桂醛防治糖尿病的药理作用研究进展[J]. 现代药物与临床, 2023, 38(2): 483-487.
本文引文格式:
曹雯, 赵一璟, 陈煜, 等. 交泰丸调控胰腺5-羟色胺系统改善胰岛β细胞功能的机制研究[J]. 药学进展, 2026, 50(01): 35-41.
美编排版:杨书惠
感谢您阅读《药学进展》微信平台原创好文,也欢迎各位读者转载、引用。本文选自《药学进展》2026年第 1 期。
《药学进展》杂志由教育部主管、中国药科大学主办,中国科技核心期刊(中国科技论文统计源期刊)。刊物以反映药学科研领域的新方法、新成果、新进展、新趋势为宗旨,以综述、评述、行业发展报告为特色,以药学学科进展、技术进展、新药研发各环节技术信息为重点,是一本专注于医药科技前沿与产业动态的专业媒体。
《药学进展》注重内容策划、加强组稿约稿、深度挖掘、分析药学信息资源、在药学学科进展、科研思路方法、靶点机制探讨、新药研发报告、临床用药分析、国际医药前沿等方面初具特色;特别是医药信息内容以科学前沿与国家战略需求相合,更加突出前瞻性、权威性、时效性、新颖性、系统性、实战性。根据最新统计数据,刊物篇均下载率连续三年蝉联我国医药期刊榜首,复合影响因子1.311,具有较高的影响力。
《药学进展》编委会由国家重大专项化学药总师陈凯先院士担任主编,编委由新药研发技术链政府监管部门、高校科研院所、制药企业、临床医院、CRO、金融资本及知识产权相关机构近两百位极具影响力的专家组成。
联系《药学进展》↓↓↓
编辑部官网:pps.cpu.edu.cn;
邮箱:yxjz@163.com;
电话:025-83271227。
欢迎投稿、订阅!
往期推荐
聚焦“第七届药学前沿学术论坛暨《药学进展》编委会会议”
聚力前沿赛道,共启学术新程:第七届药学前沿学术论坛在南京隆重启幕
承学术匠心,启时代新章:《药学进展》第七届编委会、第三届青年编委会成立大会在宁召开
聚焦“兴药为民·2023生物医药创新融合发展大会”“兴药为民·2023生物医药创新融合发展大会”盛大启幕!院士专家齐聚杭城,绘就生物医药前沿赛道新蓝图“兴药强刊”青年学者论坛暨《药学进展》第二届青年编委会议成功召开“兴药为民·2023生物医药创新融合发展大会”路演专场圆满收官!校企合作新旅程已启航
我知道你在看哟