无论是基础实验还是药物研发,细胞系和模式动物是探索基因水平、转录水平或蛋白水平干预后发生的分子生物学和病理生理学变化的两种重要实验模型。基于细胞模型的实验简便,通过永生化处理或从原代癌组织获取并培养可长期连续传代的细胞,也可从动物或患者血液等样本中分离培养原代细胞,可在干预后短期内反映细胞功能改变和分子生物学变化,但无法反映实际细胞生存的环境和器官间的互相作用。基于模式动物的实验可以从生物整体水平观察干预引起的生存状态和生理功能改变,但模式动物物种与人类相差较远,很难推广到人体。2009年,荷兰Hubrecht研究所的Hans Clevers团队首次将小肠隐窝底部的干细胞在基质胶和生长必须的培养基中培养成具有隐窝和绒毛结构的小肠类器官(结果发表在《自然(Nature)》杂志),类器官(organoid)横空出世[1]。后来,辛辛那提儿童医学中心James M Wells团队通过诱导性多能干细胞(iPSC,在第十五期【共想拾分钟】中有介绍)分化为终末内胚层并最终培养出了小肠类器官[2]。iPSC联合类器官进一步降低了类器官的构建难度,使各种体细胞都有构建类器官的潜力,后续各种器官的类器官层出不穷。类器官的优势在于可以利用人类细胞构建类器官,可在三维结构上反映某种干预下不同部位细胞的反应以及细胞间的互作。因此,类器官逐渐成为基础研究、药物研发的重要工具。然而,心脏这一具有心肌、瓣膜、血管等组织的复杂器官,如何利用类器官反映其复杂的不同类型细胞互作,是心血管类器官研究的重要课题。
2025年5月12日,澳大利亚QIMR Berghofer医学研究所团队在《自然心血管研究(Nature Cardiovascular Research, NCR)》子刊发表了通过心脏类器官模拟心脏成熟构建复杂疾病模型和药物筛选的研究——《Maturation of human cardiac organoids enables complex disease modeling and drug discovery》[3]。研究人员开发了AMPK和雌激素相关受体短暂激活的心脏类器官直接成熟方法,促进心脏类器官的肌浆网成熟、氧化磷酸化增加、代谢能力加强。利用两种肌浆网蛋白CASQ2和RYR2突变的人类胚胎干细胞,心脏类器官在成熟过程中可向促心律失常表型转变,该类器官由多种细胞类型组成,且更接近人类心脏的组成。利用桥粒斑蛋白(DSP)突变(在第十一期【共想拾分钟】中有提及)的人类胚胎干细胞可导致心肌纤维化和功能障碍,并在该类器官中筛选出INCB054329 (一种BET抑制剂,在动物实验中可抑制多发性骨髓瘤进展)可减轻DSP相关功能缺陷。因此,该方法可通过心脏类器官在体外模拟出遗传性心脏病,并在器官功能而非细胞功能水平上潜在药物的筛选。
慢性心血管疾病常由外周器官病变与心血管系统的不良互作而非单一心血管病变导致,类器官是否可以模拟多个器官间的互作呢?2025年2月19日,上海交通大学医学院公共卫生学院王艳教授团队在《危险材料杂志(Journal of Hazardous Materials, JHM)》上发表了肝-心类器官互作芯片探索低剂量微塑料(在第二十四期【共想拾分钟】中有提及)对心肌肥厚和还原应激影响的研究——《Low dose of micro-/nano-plastics mixture induced cardiac hypertrophy and reductive stress: The liver-heart crosstalk and hepatic-cardiac organoids-on-a-chip》[4]。微塑料可加重肝区类器官损伤及能量代谢异常,促进FGF21蛋白分泌,而在心区类器官可抑制心脏收缩功能并促进BNP蛋白分泌。而在肝-心互作区,心脏类器官的还原应激加重更明显,且与肝脏类器官分泌FGF21相关。这与研究事先在小鼠模型中发现微塑料通过促进肝脏FGF21分泌加重心肌还原应激从而促进心肌肥厚一致。无独有偶,英国牛津大学团队利用骨髓类器官与血管化心脏类器官模型在低氧刺激下构建缺血心脏损伤类器官模型,并通过单核RNA测序发现缺血后2天活化成纤维增加、免疫细胞浸润、血管平滑肌细胞减少,免疫-血管细胞间互作在第2天达到最高而到第5天显著降低,这表明缺血类器官模型同样表明免疫细胞参与缺血心肌损伤中的角色同样重要[5]。
美国密歇根州立大学团队将单核细胞融入心脏类器官形成心脏-巨噬细胞组装体(assembloids),其组织驻留巨噬细胞(TRMPs)比例与人类胚胎细水平相似。TRMPs通过分泌含SPP1的细胞外囊泡调节心肌细胞的发育及其周围环境,促进心肌类器官的成熟;通过与心肌细胞形成缝隙连接,参与电信号传导,维持心电活动稳定。此外,研究团队利用该模型模拟炎症对心律失常的影响,并发现抑制NLRP3炎症小体可逆转慢性心房颤动表型[6]。因此,基于类器官芯片可以模拟肝-心互作,且为其他器官间互作的类器官研究提供了一种潜在方法。
除了心肌收缩功能,心电信号传导功能也同样重要。2025年10月7日,美国约翰霍普金斯大学医学院心血管病学和肿瘤学团队联合发表在《先进材料(Advanced Materials, AM)》杂志上的一项研究利用壳装微电极阵列(MEA)检测了心脏类器官的三维时空电生理学,克服了传统膜片钳需要解离类器官结构的不足。结合多模态成像,例如钙成像方法,可对异丙肾上腺素(升高81%电位)、E-4031 (降低12%电位)和血清素(与既往研究相似)的长程心电药物反应[7]。因此,该方法为心脏疾病模型构建和药物测试提供了全方位的心电反应信息。
此外,第三军医大学朱楚洪教授与加拿大马尼托巴大学Malcolm Xing (邢孟秋)教授团队今年同样发表在《AM》上的研究中利用心脏类器官发现间充质干细胞来源的外泌体联合pH调控治疗可显著减少缺氧条件下细胞死亡,并基于此实验开发了微型机器人智能贴片以治疗心肌梗死大鼠模型的心肌损伤[8]。因此,心脏类器官也可作为动物实验前治疗条件的测试和机制探索。
思考1:类器官可以用于治疗吗?
除了用于构建模型以利于探索机制和药物筛选外,可能有潜在的治疗作用。2024年朱楚洪教授和华南理工大学边黎明教授团队发表在《AM》上的研究将血管类器官包裹进同时具备粘性和弹性特性的动态水凝胶的机械力微环境中可通过激活间充质干细胞的notch受体3通路并降低内皮细胞血小板源性生长因子B的表达促进类器官向含平滑肌细胞的动脉分化和血管新生。这一类器官和水凝胶移植入大鼠梗死心脏中可促进血管重建和心功能恢复[9]。这一研究提示动态水凝胶诱导的类器官在再生医学中的应用潜力。自体细胞诱导的多能干细胞产生的类器官可能在移植时的免疫排斥反应会更低,但除了免疫排斥以外,体外培养的类器官的尺寸(尺寸是最大的问题,目前并不能打印适合人体尺寸的器官)、功能差异、无菌条件、毒性、持久性、癌变风险等等均是未来需要解决的难题。
思考2:类器官会替代动物实验吗?
因为大多数动物试验证实安全性高的药物在人体实验中出现毒性或无明显疗效而失败,而动物试验的伦理争议、耗时长、费用高昂等缺点导致时间和金钱的浪费。美国食品药品监督管理局(FDA)在2025年4月发布了《减少临床前安全性研究中动物试验的路线图(Roadmap to Reducing Animal Testing in Preclinical Safety Studies)》,旨在利用类器官、计算机建模等新的体外实验手段,加速临床药物的验证并提高预测准确度,减少实验动物应用[10]。首阶段聚焦单克隆抗体(mAb)等生物制剂,后续将扩展至小分子药物和医疗对策产品。我国药监局药审中心于2021年也发布了《基因治疗产品非临床研究与评价技术指导原则》和《基因修饰细胞治疗产品非临床研究技术指导原则》,将类器官纳入基因治疗产品的非临床药理学研究。因此,基于人胚胎干细胞的类器官的时间和成本优势可能对减少动物浪费,加快临床试验进度,提高临床试验的疗效准确性方面均有帮助,可能终有一天取代动物实验。
思考3:类器官研究的管理有什么难题?
类器官研究目前仍处于初级阶段,尽管其展现出强大的转化潜力,但每个实验室间的类器官培养条件差异大,无与实际器官相似的标准化类器官作为对照,药物筛选的实验结果可复现性差,各研究无法得出一致结论,存在人为干预结果的操作漏洞,难以判断结果能否推广至目标人群,研究管理难度大。因此,尽快设立标准化的类器官条件和标准,增加可重复性和可信度,是类器官推广应用的关键。
感谢阅读第二十七期【共想拾分钟】。下一期笔者想讨论其他动物生存特性对心血管健康的提示。我们下期再见。
参考文献
[1] SATO T, VRIES R G, SNIPPERT H J, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche [J]. Nature, 2009, 459(7244): 262-5.
[2] SPENCE J R, MAYHEW C N, RANKIN S A, et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro [J]. Nature, 2011, 470(7332): 105-9.
[3] POCOCK M W, REID J D, ROBINSON H R, et al. Maturation of human cardiac organoids enables complex disease modeling and drug discovery [J]. Nature cardiovascular research, 2025, 4(7): 821-40.
[4] CHENG W, CHEN H, ZHOU Y, et al. Low dose of micro-/nano-plastics mixture induced cardiac hypertrophy and reductive stress: The liver-heart crosstalk and hepatic-cardiac organoids-on-a-chip [J]. Journal of hazardous materials, 2025, 490: 137686.
[5] REYAT J S, SHEN Y, POOLOGASUNDARAMPILLAI G, et al. Human Multi-Organoid Platform to Model Immune Dynamics in Cardiac Injury and Disease [J]. Circulation research, 2025, 137(8): 1133-6.
[6] O'HERN C, CAYWOOD S, AMINOVA S, et al. Human heart-macrophage assembloids mimic immune-cardiac interactions and enable arrhythmia disease modeling [J]. Cell stem cell, 2025, 32(11): 1671-90.e13.
[7] CHOI S J, LIU Z, YANG F, et al. 3D Spatiotemporal Electrophysiology of Cardiac Organoids Using Shell Microelectrode Arrays [J]. Advanced materials (Deerfield Beach, Fla), 2025: e06793.
[8] WANG F, XU Z, ZHENG F, et al. Cardiac Organoid Model Inspired Micro-Robot Smart Patch to Treat Myocardial Infarction [J]. Advanced materials (Deerfield Beach, Fla), 2025, 37(26): e2417327.
[9] SUN D, ZHANG K, ZHENG F, et al. Matrix Viscoelasticity Controls Differentiation of Human Blood Vessel Organoids into Arterioles and Promotes Neovascularization in Myocardial Infarction [J]. Advanced materials (Deerfield Beach, Fla), 2025, 37(5): e2410802.
[10] ADMINISTRATION U F A D. Roadmap to Reducing Animal Testing in Preclinical Safety Studies. 2025: 1-11.