小酸浆Physalis minima L.为茄科(Solanaceae)洋酸浆属Physalis L.一年生草本植物,分布于我国云南、广东、广西及四川海拔1 000~1 300 m的山坡。全草或果实作为民间草药被广泛应用,具有清热利湿、祛痰止咳、解毒消肿的功效,可用于治疗感冒发热、喉咙肿痛、湿热黄疸、慢性咳喘等[1]。小酸浆的化学成分包括甾体类、黄酮类、有机酸类及生物碱类等。现代药理学研究表明小酸浆具有抗炎[2-6]、抗肿瘤[7-10]、杀虫[11-12]等多种生物活性,具有很高的药用价值。醉茄内酯(withanolides)类化学成分为酸浆属植物中的特征性成分,根据C-17位侧链的不同分为A类(δ内酯)或B类(γ内酯)withanolides,多数的withanolides属于A类并且可再分为未骨架改变(Group I)和骨架改变(Group II)2个小类。酸浆苦素(physalins)类化合物属于骨架改变的withanolides,其结构多样,药理活性显著。为了挖掘小酸浆中结构新颖且抗肿瘤活性显著的化学成分,本研究对该植物中withanolides类化合物进行了分离鉴定,获得了2种新的physalin类化合物(1~2)和6个已知的化合物(3~8),结构见图1。分别鉴定为(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R, 20S,22R,24S)-14α,17α:16α,24α-二环氧-13α,14β,22α-三羟基-1,15-二酮-13,14-开环麦角甾-2,5-二烯-18, 20-内酯[(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R,20S,22R,24S)-14α,17α:16α,24α-diepoxy-13α,14β,22α-trihydroxy-1,15-dione-13,14-seco-ergosta-2,5-diene-18,20-olide 1]、(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R,20S,22R, 24R,25R)-14α,17α:14,27-二环氧-13α,22α-二羟基-1,15-二酮-13,14-开环麦角甾-2,5-二烯-18,20-内酯-24-丙酸[(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R,20S,22R,24R,25R)-14α, 17α:14,27-diepoxy-13α,22α-dihydroxy-1,15-dione-13, 14-seco-ergosta-2,5-diene-18,20-olide-24-propionic acid,2]、5α-乙氧基-6β-羟基-5,6-二氢酸浆苦素B(3)、physalin VI(4)、physaminin F(5)、physagulide D(6)、pubesenolide(7)、physaminilide I(8)。化合物1和2为新化合物,化合物1是首个22,26-开环/降碳酸浆苦素,命名为酸浆内酯A;而化合物2是首个具有24-丙酸结构以及C-14与C-27之间形成醚桥的22,26-开环酸浆苦素,命名为酸浆内酯B。抗肿瘤活性筛选发现,4个化合物(1、3~5)分别对3种不同的肿瘤细胞系展现出不同的抑制活性,其中化合物1、3、5对HCT-116细胞抑制活性半数抑制浓度(median inhibition concentration,IC50)值为(10.97±1.62)~(39.20±2.17)μmol/L;化合物3对MDA-MB-231细胞抑制活性IC50值为(19.36±1.03)μmol/L,化合物1、3、4对HEL癌细胞抑制活性IC50值为(8.27±0.37)~(38.97±1.77)μmol/L。
1 仪器与器材
Hanbon NP7005型半制备型高效液相色谱(江苏汉邦科技有限公司);Bruker AV III-600 MHz布鲁克核磁共振波谱仪(Bruker光谱仪器公司,美国);JASCO P-1020数字式全自动旋光仪(日本JASCO公司);Cary 60-UV-Vis紫外-可见光分光光度仪(美国安捷伦公司);iCNA 9傅里叶变换红外光谱仪(天津市能谱科技有限公司);QE Focus型液质联用高分辨质谱仪(美国ThermoFisher公司);JASCO CD J-1500圆二色谱仪(日本JASCO公司);DL SB-5/20低温冷却液循环泵(郑州长城科工贸有限公司);SHB-Ⅲ循环水式多用真空泵(郑州长城科工贸有限公司);N-1100D-WD旋转蒸发仪(上海爱郎仪器有限公司);LE204E/02电子天平(梅特勒-托利多仪器上海有限公司);KQ5200型超声波清洗仪(昆山市超生仪器有限公司)。薄层色谱硅胶GF254(100 mm×50 mm,青岛海洋化工厂);制备型GF254薄层(200 mm×200 mm,实验室自制);反相色谱材料Lichroprep RP-C18(40~70 μm,Merck,德国);反相树脂材料(75~150 μm,Mitsubishi Chemical,日本);羟丙基葡聚糖凝胶Sephadex LH-20(40~70 μm,Amersham Pharmacia Biotech AB,瑞士);正相色谱硅胶G(40~80、100~200、200~300、300~400目,青岛海洋化工厂);半制备柱YMC-Triart/pack C18(250 mm×10.0 mm,S-5 µm)、Nucifera-C18A(250 mm×10.0 mm,S-5 µm)和COSMOSIL5C18-MS-II(250 mm×10.0 mm,S-5 µm)。
色谱甲醇和乙腈(新蓝景化学工业有限公司);有机溶剂(石油醚、甲醇、醋酸乙酯、丙酮和二氯甲烷等)(科仪化玻有限公司)。MDA-MB-231和HEL细胞购自ATCC(美国弗吉尼亚州马纳萨斯)。HCT116细胞购自中国科学院。
植物采集自中国湖南省湘西土家族苗族自治州永顺县,由并由贵州省药用植物园侯小琪副研究员鉴定为小酸浆P. minima L.。标本(H20231110)存放在贵州省天然产物研究中心。
2 方法
2.1 提取与分离
小酸浆地上部分(45 kg),干燥粉末,室温下用95%乙醇冷浸提取7 d,该过程重复3次。随后,剩余药渣用95%乙醇回流提取,每次3 h。合并乙醇提取液,减压浓缩得浸膏(4.6 kg)。粗浸膏经硅胶柱色谱分离(石油醚-丙酮100∶0~40∶60梯度洗脱),得到6个流分(Fr. 1~6)。Fr.4经MCI凝胶柱色谱分离,甲醇-水60∶40~100∶0)梯度洗脱,得到13个亚流分(Fr. 4A~4H)。取Fr. 4D(150 g)进行硅胶柱色谱分离,以二氯甲烷-醋酸乙酯(95∶5~50∶50)洗脱,得到6个流分(Fr. 4D1~4D6)。
Fr. 4D2经Sephadex LH-20凝胶柱色谱分离(甲醇),得到化合物3(200 mg)。Fr. 4D4(43 g)经硅胶柱色谱分离,得到13个流分(Fr. 4D4A~ 4D4M)。其中,Fr.4D4M经Sephadex LH-20凝胶柱色谱(甲醇)分离后分为6个流分。Fr. 4D4M5经硅胶柱色谱分离得到化合物5(10 mg);Fr.4D4M6经半制备型高效液相色谱纯化(乙腈-水35∶65)得到化合物4(27 mg,tR=21 min)和6(8 mg,tR=27 min)。Fr. 4D4M4经半制备型高效液相色谱纯化(甲醇-水50∶50)得到化合物1(6 mg,tR=36 min)和7(5 mg,tR=27 min)。Fr. 4D5(57 g)经正相硅胶柱色谱分离,二氯甲烷-醋酸乙酯(85∶15~30∶70)洗脱,得到5个馏份(Fr. 4D5A~4D5E)。Fr.4D5B依次经Sephadex LH-20凝胶柱色谱(甲醇)和半制备型高效液相色谱纯化(乙腈-水35∶65),得到化合物2(11 mg,tR=16 min)、8(7 mg,tR=25 min)。
2.2 抗肿瘤活性筛选
采用MTT法评估了化合物对3种细胞株MDA-MB-231、HCT116和HEL的细胞毒性[13-15]。MDA-MB-231和HCT116细胞培养基为含胎牛血清的DMEM。将细胞以6×103个/孔的密度接种于96孔板,培养过夜。然后加入相应化合物并培养72 h。HEL细胞培养基为含胎牛血清的RPMI 1640,以5×103个/孔密度接种于96孔板,并用不同浓度的化合物处理72 h。向细胞中加入10 μL MTT,孵育4 h,然后通过加入DMSO溶解形成的结晶。使用酶标仪测定490 nm处的吸光度(A)。所有实验均重复3次。
3 结果
3.1 结构鉴定
化合物1:白色无定型粉末;[α]25 D+15.9 (c 0.3, MeOH);(nm): 200 (3.52);(cm−1): 3 409, 2 978, 1 766, 1 658, 1 384, 1 252, 1 021;HR-ESI-MSm/z495.162 1 [M+Na]+,计算值为C25H28O9Na,495.162 6,可知化合物1的分子式为C25H28O9,有12个不饱和度。IR显示特征吸收峰:3 409 cm−1(羟基)、1 766 cm−1(羰基)和1 658 cm−1(烯基)。化合物1的1H-NMR谱(表1)显示存在3个烯烃质子信号[δH 6.89 (1H, ddd, J = 10.0, 4.9, 2.6 Hz, H-3), 5.86 (1H, dd, J = 10.0, 3.2 Hz, H-6), 5.68 (1H, d, J= 6.4 Hz, H-2)],以及4个甲基单峰信号[δH 1.81 (3H, s), 1.60 (3H, s), 1.61 (3H, s), 1.21 (3H, s)]。13C-NMR和HMQC谱显示25个碳信号,包括3个甲基、6个含氧碳、4个烯烃和3个羰基。综合分析表明,化合物1为醉茄内酯衍生物。其1D NMR数据与酸浆苦素XI高度相似[16],虽然环A–E结构一致,主要区别在于F环的化学位移。HMBC相关信号(Me-21与C-17、C-20、C-22;Me-25与C-16、C-23、C-24),结合1H-1H COSY谱中H2-23/H-22的相关信号(图2),证实F环与D/E环骈合,且C-16与C-24之间形成环氧环。由此确定化合物1为首个22,26-开环/降碳浆苦素B类化合物。
化合物1的相对构型通过NOESY相关信号确定(图3)。Me-19/H-8、H-8/Me-25、H-8与H-12β、H-12β与H-23β之间的信号表明这些质子具有相同的空间取向。基于醉茄内酯类化合物生源途径,确定Me-25、H-8、H-12β、H-23β均为β构型,C-24与C-16之间的环氧环为α构型。通过ECD实验(图4),确定其绝对构型为8R,9S,10R,13R, 14R,16S,17R,20S,22R,24S。综上,化合物1被鉴定为(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R,20S,22R,24S)-14α,17α: 16α,24α-二环氧-13α,14β,22α-三羟基-1,15-二酮-13,14-开环麦角甾-2,5-二烯-18,20-内酯,并命名为酸浆内酯A(phyminate A)。
化合物2:黄色粉末;[α]25 D+8.8 (c 0.31, MeOH);(nm): 200 (4.44);(cm−1): 3 394, 2 922, 1 727, 1 648, 1 224, 1 061;HR-ESI-MS m/z551.188 7 [M+Na]+,计算值为C28H32O10Na,551.188 8,可知化合物2的分子式为C28H32O10。仔细比较化合物1和2的NMR数据,发现化合物2的F环信号有明显差异,并观察到特征羰基碳信号(δC 175.0)、双峰甲基信号(δC 14.9)以及含氧亚甲基信号(δC 63.7)。进一步通过HMBC相关信号(Me-21与C-17、C-20、C-22;H-16 与 C-17、C-15、C-24、C-23、C-25)构建F环的结构。值得注意的是,H2-27与C-16、C-23、C-24以及H-16与C-27有HMBC相关,表明该含氧亚甲基(δC63.7)连接在F环C-24位上(图2)。同时,Me-28与C-24、C-25、C-26的HMBC相关信号证实C-24位连有1个丙酸基团。此外,化合物2的C-14与C-27之间通过1个醚键相连再与C-24成环,消耗最后1个不饱和度。这是首个在C-24位有丙酸取代且C-14与C-27之间形成醚桥的22, 26-开环/酸浆苦素类化合物。
化合物2的相对构型由NOESY谱图可确定,其H-8/Me-19β/H-4β、H-27β/H-25/H-16/H-12β以及H-9/H-12α之间的相关信号,表明H-25、H-16和Me-19具有相同的空间取向,并将其确定为β构型,同时,根据该属植物中酸浆苦素类成分的生源合成途径,可以确定丙酸基团处于β构型(图3)。此外,化合物2是由酸浆苦素B衍生而来[17],因此C-25位的甲基为25S构型。最后,通过ECD计算结果证实了化合物2的绝对构型为8R,9S,10R,13R, 14R,16S,17R,20S,22R,24R,25R(图4)。综上,化合物2被鉴定为(8R,9S,10R,13R,14R,16S,17R,20S,22R, 24R,25R)-14α,17α:14,27-二环氧-13α,22α-二羟基-1,15-二酮-13,14-开环麦角甾-2,5-二烯-18,20-内酯-24-丙酸,并命名为酸浆内酯B(phyminate B)。
化合物3:白色无定型粉末;1H-NMR (600 MHz,CDCl3)δ: 6.57 (1H, ddd, J= 10.2, 5.2, 2.2 Hz, H-3), 5.84 (1H, dd, J = 10.2, 3.0 Hz, H-2), 4.56 (1H, m, H-27β), 4.54 (1H, t, J= 3.0 Hz, H-22), 3.75 (1H, dd, J = 13.3, 1.4 Hz, H-27α), 3.26 (1H, m, H-9), 3.19 (2H, m, CH3CH2O), 3.10 (1H, m, H-16) 3.02 (1H, m, H-25), 2.44 (1H, dd, J = 14.2, 3.7 Hz, H-23β), 2.40(1H, m, H-4β), 2.35 (1H, m, H-4α), 2.30 (1H, m, H-8), 2.18 (1H, s, H-21), 2.06 (1H, m, H-12β), 2.02 (1H, m, H-23α), 1.98 (3H, s, H-28), 1.79 (1H, m, H-12α), 1.72 (1H, m, H-7β), 1.69 (1H, m, H-11α), 1.68 (1H, m, H-7α), 1.60 (1H, m, H-12β), 1.25 (3H, s, H-28), 1.24 (3H, s, H-19), 1.10 (1H, m, H-11β), 0.99 (3H, t, J = 6.8 Hz, CH3CH2O);13C-NMR (150 MHz, CDCl3) δ:208.7 (C-15), 206.9 (C-1), 172.6 (C-18), 167.2 (C-26), 141.4 (C-3), 128.3 (C-2), 107.7 (C-14), 81.1 (C-5), 81.1 (C-20), 80.6 (C-17), 80.1 (C-13), 77.2 (C-22), 68.8 (C-6), 60.8 (C-27), 57.3 (CH3CH2O), 56.3 (C-16), 54.9 (C-10),51.0 (C-25), 38.4 (C-8), 33.0 (C-23), 31.2 (C-24), 29.9 (C-9), 28.1 (C-4), 27.6 (C-7), 26.7 (C-12), 26.0 (C-11), 25.1 (C-28), 21.0 (C-21), 15.4 (CH3CH2O), 14.0 (C-19)。数据与文献报道基本一致[18],故鉴定化合物3为5α-ethoxy-6β-fhydroxy-5,6-dihydrophysalin B。
化合物4:白色粉末;1H-NMR (600 MHz, DMSO-d6) δ: 6.43 (1H, s, 14-OH), 6.08 (1H, s, 13-OH), 6.07 (1H, d, J = 11.2 Hz, H-4), 5.93 (1H, s, OH-25), 5.70 (1H, d, J = 4.8 Hz, H-6), 5.67 (1H, m,H-3), 4.42 (1H, d, J = 5.3 Hz, H-22), 3.42 (1H, d, J = 20.0 Hz, H-2), 2.95 (1H, dd, J = 10.4, 7.4 Hz, H-9), 2.78 (1H, s, H-16), 2.71 (1H, dd, J = 14.3, 5.3 Hz, H-23), 2.61 (1H, dd, J = 20.0, 4.3 Hz, H-2β), 2.44 (1H, dd, J = 14.3, 4.8 Hz, H-7α), 2.15 (1H, m, H-12α), 2.07 (1H, m, H-7β), 2.06 (1H, m, H-8), 1.86 (1H, m, H-12β), 1.75 (3H, s, H-21), 1.43 (3H, s, H-28), 1.38 (1H, m, H-23β), 1.36 (1H, m, H-11α), 1.36 (3H, s, H-27), 1.08 (1H, m, H-11β), 1.06 (3H, s, H-19);13C-NMR (150 MHz, DMSO-d6) δ:215.4 (C-15), 202.6 (C-1), 172.5 (C-18), 169.9 (C-26), 146.5 (C-3), 135.9 (C-5), 127.0 (C-2), 124.4 (C-6), 100.9 (C-14), 82.9 (C-20), 82.2 (C-17), 79.2 (C-13), 76.7 (C-22), 72.6 (C-25), 52.7 (C-10), 51.4 (C-16), 42.0 (C-8), 41.1 (C-24), 34.5 (C-9), 32.3 (C-4), 28.9 (C-12), 27.0 (C-23), 25.9 (C-7), 23.2 (C-11), 22.4 (C-28), 20.7 (C-21), 19.5 (C-27), 16.2 (C-19)。数据与文献报道基本一致[19],故鉴定化合物4为physalin VI。
化合物5:白色粉末;1H-NMR (600 MHz, DMSO-d6) δ:9.56 (1H, dd, J = 2.3, 0.9 Hz, H-3′), 8.67 (1H, m, H-2′), 8.62 (1H, m, H-5′), 7.13 (1H, m, H-4′), 6.58 (1H, ddd, J = 10.0, 5.0, 3.0 Hz, H-3) 5.91 (1H, dd, J = 10.0, 3.0 Hz, H-2), 5.24 (1H, s, H-6), 4.76 (1H, m, H-22), 4.75(1H, d, J = 13.5 Hz, H-27β), 4.31 (1H, m, H-9), 4.00 (1H, dd, J = 20.5, 5.0 Hz, H-4β), 3.98 (1H, dd, J = 13.5, 4.0 Hz, H-27α), 3.59 (1H, dt, J = 20.5, 3.5 Hz, H-4α), 3.16 (1H, s, H-16), 3.08 (1H, dt, J = 12.6, 3.5 Hz, H-8), 2.97(1H, m, H-25), 2.90 (1H, m, H-7β), 2.64 (1H, m, H-23β), 2.38 (3H, s, H-21), 2.32 (1H, m, H-12β), 2.20 (1H, m, H-23α), 2.12 (1H, m, H-11β), 2.03 (1H, m, H-7α), 1.60 (1H, m, H-12α), 1.55 (3H, s, H-19), 1.42 (1H, m, H-11α). 1.31 (3H, s, H-28);13C- NMR (150 MHz, DMSO-d6) δ: 209.7 (C-15), 202.4 (C-1), 171.6 (C-18), 167.3(C-26), 163.3 (C-6′), 153.8 (C-2′), 150.3 (C-3′), 142.4(C-3), 137.4 (C-5′), 127.3 (C-2), 126.1 (C-1′), 123.8(C-4′), 106.5 (C-14), 91.5 (C-5), 81.0 (C-17), 80.5(C-13), 78.7 (C-20), 76.4 (C-22), 65.5 (C-6), 60.6(C-27), 54.0 (C-16), 53.9 (C-10), 49.3 (C-25), 37.9(C-8), 31.3 (C-24), 30.5 (C-9), 30.3 (C-4), 28.7(C-6), 26.8 (C-28), 25.9 (C-11), 24.4 (C-12), 21.6(C-21), 13.2 (C-19)。数据与文献报道基本一致[20],故鉴定化合物5为physaminin F。
化合物6:白色粉末;1H-NMR (600 MHz, CDCl3) δ: 6.95 (1H, dd, J = 10.0, 5.7 Hz, H-3), 6.18 (1H, d, J = 10.0 Hz, H-2), 6.01 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-16), 5.90 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-15), 4.48 (1H, s, H-22), 4.48 (1H, s, H-23), 4.06 (1H, d, J = 6.0 Hz, H-4), 3.36 (1H, m, H-6), 3.13 (1H, m, H-20), 2.93 (1H, m, H-7α), 2.36 (1H, m, H-9), 2.24 (1H, m, H-11α), 2.07 (1H, m, H-8), 2.42 (3H, s, OAc), 1.98 (1H, m, H-7), 1.87 (1H, m, H-12α), 1.87 (3H, s, H-19), 1.84 (3H, s, H-28), 1.84 (3H, s, H-27), 1.71 (1H, m, H-12β), 1.61 (1H, m, H-11β), 1.47 (3H, s, H-18), 1.37 (3H, d, J = 7.0 Hz, H-21);13C-NMR (150 MHz, CDCl3) δ: 202.4 (C-1), 169.9 (OAc), 164.6 (C-26), 161.5 (C-17), 151.2 (C-24), 142.9 (C-3), 131.6 (C-2), 122.7 (C-16), 122.5 (C-25), 83.2 (C-22), 83.0 (C-15), 81.8 (C-14), 69.7 (C-4), 66.1 (C-23), 63.8 (C-5), 63.4 (C-6), 52.3 (C-13), 47.7 (C-10), 39.5 (C-9), 37.3 (C-12), 35.0 (C-8), 33.6 (C-20), 24.7 (C-7), 21.8 (C-11), 21.5 (OAc), 17.6 (C-21), 17.3 (C-18), 16.3 (C-28), 15.9 (C-19), 13.0 (C-27)。数据与文献报道基本一致[21],故鉴定化合物6为physagulide D。
化合物7:白色粉末;1H-NMR (600 MHz, DMSO-d6)δ: 5.56 (1H, dt, J = 4.5, 2.1 Hz, H-6), 4.43 (1H, dt, J = 13.3, 3.5 Hz, H-22), 4.35 (2H, q, J = 12.6 Hz, H-27), 3.96 (1H, tt, J = 11.0, 5.0 Hz, H-3), 3.83 (1H, t, J= 2.8 Hz, H-1), 3.04 (1H, s, H-5), 2.51 (1H, m, H-23α), 2.39 (1H, m, H-4α), 2.31 (1H, m, H-4β), 2.10 (1H, m, H-2α), 2.02 (1H, m, H-23β), 2.03 (3H, s, H-28), 1.98 (1H, m, H-7α), 1.68 (1H, m, H-16α), 1.63 (1H, m, H-15α), 1.61 (1H, m, H-9), 1.58 (1H, m, H-7β), 1.68 (1H, m, H-16α), 1.49 (2H, m, H-11), 1.37 (1H, m, H-16β), 1.15 (1H, m, H-15β), 1.02 (3H, s, H-19), 1.03 (3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 0.71 (3H, s, H-18);13C-NMR (150 MHz, CDCl3) δ:167.2 (C-26), 153.3 (C-24), 137.6 (C-5), 125.7 (C-6), 125.4 (C-25), 78.9 (C-22), 73.0 (C-1), 66.4 (C-3), 57.4 (C-27), 56.3 (C-14), 52.1 (C-17), 42.9 (C-13), 41.7 (C-10), 41.6 (C-9), 41.4 (C-4), 39.5 (C-12), 38.9 (C-20), 38.4 (C-2), 31.9 (C-7), 31.8 (C-8), 29.9 (C-23), 27.4 (C-16), 24.5 (C-15), 20.3 (C-28), 20.2 (C-11), 19.5 (C-19), 13.5 (C-21), 11.8 (C-18)。数据与文献报道基本一致[22],故鉴定化合物7为pubesenolide。
化合物8:白色粉末;1H-NMR (600 MHz, CDCl3) δ: 6.95 (1H, dd, J = 10.4, 2.2 Hz, H-3), 6.28 (1H, dd, J = 10.4, 2.2 Hz, H-2), 5.66 (1H, s, H-15), 5.61 (1H, s, H-4), 4.49 (1H, dt, J= 13.0, 3.4 Hz, H-22), 4.45 (1H, s, H-6), 3.09 (1H, m, H-7α), 2.45 (1H, m, H-9), 2.42 (1H, m, H-16α), 2.36 (1H, m, H-8), 2.29 (1H, m, H-20), 2.29 (1H, m, H-23α), 2.22 (1H, m, H-7β), 2.14 (3H, s, OAc), 2.01 (1H, m, H-16), 1.98 (1H, m, H-12α), 1.95 (1H, m, H-23β), 1.92 (3H, s, H-27), 1.77 (1H, m, H-12β), 1.60 (3H, s, H-28), 1.58 (3H, s, H-19), 1.52 (1H, m, H-11α), 1.36 (3H, s, H-18), 1.34 (1H, m, H-11β), 1.07 (3H, d, J = 7.0 Hz, H-21);13C-NMR (150 MHz, CDCl3)δ: 201.0 (C-1), 169.8 (OAc), 166.8 (C-26), 150.0 (C-24), 144.2 (C-3), 128.0 (C-2), 121.9 (C-25), 84.4 (C-14), 80.7 (C-15), 78.8 (C-5), 78.7 (C-22), 74.6 (C-6), 67.0 (C-4), 55.9 (C-10), 52.9 (C-17), 46.6 (C-13), 42.5 (C-12), 40.2 (C-9), 39.9 (C-8), 37.2 (C-20), 33.1 (C-7), 32.3 (C-16), 32.0 (C-23), 22.5 (C-11), 21.6 (-OAc), 20.7 (C-28), 17.5 (C-18), 17.0 (C-21), 12.5 (C-27), 9.1 (C-19)。数据与文献报道基本一致[23],故鉴定化合物8为physaminilide I。
3.2 生物活性评价
采用MTT法,对分离鉴定化合物开展了抗肿瘤活性筛选,以阿霉素(adriamycin,ADR)作阳性对照,结果显示,化合物1、3~5对HCT116、MDA-MB-231和HEL具有显著抗肿瘤活性(表2)。化合物1、3和5对HCT-116抑制活性的半数抑制浓度(median inhibition concentration,IC50)值为(10.97±1.62)~(39.20±2.17)μmol/L;化合物3对MDA-MB-231抑制活性的IC50值为(19.36±1.03)μmol/L,化合物1、3、4对HEL抑制活性的IC50值为(8.27±0.37)~(38.97±1.77)μmol/L;其余化合物在40 μmol/L浓度下没有表现出抑制活性。通过对比最优活性化合物3与无活性化合物(2、6、7、8)的结构特征,可知“Michael受体”“笼状骨架”和“侧链结构”是活性3要素。
4 讨论
天然产物在肿瘤治疗方面具有多靶点、低毒性等特点,是目前抗肿瘤药物发现的有效途径之一。醉茄内酯类是茄科洋酸浆属植物的特征性成分,该类成分具有显著的体内外抗肿瘤活性,具有进一步开发成抗肿瘤药物的潜力。基于此,本研究选取茄科植物小酸浆的地上部分作为研究对象,分离得到8个醉茄内酯类化合物,包括2个新化合物。从结构上看,化合物1是首个22,26-开环/降碳酸浆苦素,而化合物2是首个具有24-丙酸结构以及C-14与C-27之间形成醚桥的22,26-开环-酸浆苦素。体外抗肿瘤活性表明,化合物1、3~5对3种不同的肿瘤细胞系表现出一定抑制活性,其IC50值为(8.27±0.37)~(39.20±2.17)μmol/L。
初步构效关系分析表明,此类withanolides化合物发挥细胞毒活性的关键在于其特有的“笼状”酸浆苦素型骨架,以及A环中必不可少的α,β-不饱和酮片段。化合物7的活性丧失进一步凸显了A环Michael加成受体的关键作用,其结构的饱和化会导致抑制活性的完全消失。值得注意的是,环系统的复杂程度显著影响了药效:结构复杂的酸浆苦素类衍生物(1、3~5)均显示出良好的细胞毒性,而结构较为简单的类似物(6和8)在40 μmol/L浓度下无活性,这表明刚性且高度氧化的骨架结构对于靶点识别至关重要。此外,侧链结构也是决定活性的关键因素,对比化合物1,在C-24位引入羧酸基团的衍生物2活性完全丧失。不仅如此,化合物3在C-4位引入乙氧基后,其活性相较于化合物1和4得到了显著提升,这暗示C-4位的细微亲脂性修饰可能优化了分子与蛋白结合口袋间的疏水相互作用。
本研究不仅充实了洋酸浆属醉茄内酯类的结构谱系,更结合活性筛选与构效规律总结,初步揭示了该类成分作为潜在抗肿瘤候选药物的构效本质。这一发现为小酸浆中天然先导药物的结构修饰与创新药物研发提供了关键的理论依据及科学视角。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突
参考文献(略)
来 源:许洪志,张 锋,陶林岚,李亚男,苑春茂,金 军,易 平.小酸浆中2种新的醉茄内酯及其抗肿瘤活性研究 [J]. 中草药, 2026, 57(10): 3685-3692.