食管癌是全球高发恶性肿瘤之一,其中食管鳞状细胞癌(ESCC)在中国尤为常见。目前晚期ESCC缺乏有效靶向治疗手段,患者5年生存率不足20%,临床亟需新策略。TROP2作为一种跨膜糖蛋白,在多种实体瘤中高表达,与不良预后相关,已成为ADC药物的重要靶点。此外,肿瘤细胞常依赖氧化磷酸化(OXPHOS) 维持能量代谢与耐药性,抑制OXPHOS成为潜在治疗方向。然而,TROP2靶向ADC与OXPHOS抑制剂联用是否可协同抗肿瘤,机制如何,尚未明确。
近日,来自赣南医学院的张书永教授团队,开展了一项从临床到基础的转化医学研究。该团队首先通过对222例ESCC患者组织的免疫组化分析,明确了TROP2在ESCC中的高表达谱;进而利用多种ESCC细胞系、患者来源类器官(PDXO)及异种移植(PDX)模型,首次系统评估了FDA已批准的TROP2-ADC药物IMMU132与选择性OXPHOS抑制剂IACS-010759联合使用的协同抗肿瘤效果。通过整合RNA测序、生物信息学分析与分子生物学实验,团队揭示了该联合策略通过抑制PI3K-AKT-mTOR信号通路、诱导线粒体凋亡与氧化应激而发挥协同作用的分子机制。这项研究不仅为TROP2阳性ESCC患者提供了一种极具前景的联合治疗新策略,也为针对肿瘤代谢脆弱性的ADC联合疗法提供了重要的临床前证据。
中文标题:靶向TROP2的ADC与氧化磷酸化抑制剂协同增强食管鳞状细胞癌凋亡并抑制PI3K-AKT-mTOR通路
期刊名称:Cell Death & Disease
影响因子:9.6
01
研究思路/流程
本研究采用“临床样本→细胞模型→类器官→动物模型”的递进式研究策略:
(1)临床样本分析:对222例ESCC患者组织进行免疫组化,评估TROP2表达。
(2)体外细胞实验:选用4种ESCC细胞系,评估IMMU132(TROP2-ADC)与IACS010759(OXPHOS抑制剂)单药及联用的细胞毒性、增殖、凋亡、迁移与侵袭能力。
(3)机制探索:通过RNA-seq、KEGG、GSEA等分析差异表达基因与信号通路;Western blot验证关键蛋白表达。
(4)类器官与动物模型验证:构建ESCC患者来源类器官(PDXO)与异种移植模型(PDX),验证联合治疗体内外协同抗肿瘤效果与安全性。
02
研究结果
✦ 确立治疗靶点:TROP2在ESCC中广泛高表达
本研究旨在开发针对ESCC的新靶向疗法。TROP2是ADC的一个有前景的靶点,但其在ESCC人群中的表达谱尚需大规模临床样本确认。
过程:研究者收集了222例ESCC患者的组织芯片,进行TROP2免疫组化(IHC)染色和定量分析。
结果:高达94.6%的样本呈TROP2阳性,其中超过一半(56.3%)表现为中度至强阳性。这从临床病理层面确立了TROP2作为ESCC治疗靶点的可行性,为后续使用TROP2-ADC(IMMU132)提供了根本依据。(图1A, 1B)
图1:IMMU132与IACS-010759单药对TROP2阳性ESCC细胞的体外抗增殖作用
A:222例ESCC肿瘤组织中TROP2表达强度的百分比分布,分为强、中、低、阴性四级。
B:代表性免疫组化图像显示TROP2在ESCC组织芯片中的四种染色强度(上排:25×,标尺=200μm;下排:400×,标尺=20μm)。
C-D:Western blot(C)和免疫荧光(D)检测ESCC细胞系中TROP2的表达水平(IF图像:400×,标尺=20μm)。
E-F:KYSE30、KYSE150、TE-12和KYSE410细胞分别经IMMU132(E)或IACS-010759(F)处理72小时后的细胞活力曲线及IC₅₀值。
G-H:使用IncuCyte S3活细胞成像系统监测ESCC细胞在IMMU132(G)或IACS(H)处理0-72小时内的增殖动态。
I-J:ATP检测试剂盒测定ESCC细胞经IMMU132(I)或IACS(J)处理后的细胞内ATP水平。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
✦ 单药活性评估:IMMU132与IACS-010759均能抑制ESCC细胞
在确定靶点后,需验证所选药物对ESCC细胞的单独杀伤效果。
过程:选取4株ESCC细胞系,用不同浓度的IMMU132(TROP2-ADC)和IACS-010759(OXPHOS抑制剂)处理,通过Cell Titer-Glo检测细胞活力,计算半数抑制浓度(IC50)。
结果:IMMU132对各细胞系均显示出强效抑制作用(IC50在0.54-6.68 µg/mL之间)。IACS-010759也表现出中度的抑制活性(IC50在0.009-6.65 µM之间)。实时活细胞成像(IncuCyte)和ATP检测进一步证实,两药均能剂量和时间依赖性地抑制细胞增殖和能量代谢。(图1C-J)
小结:上述研究表明,单药有效是联合治疗的基础。无论是靶向递送化疗药的ADC,还是干扰代谢的OXPHOS抑制剂,都能对ESCC细胞产生抗肿瘤效应,为探索二者联用能否产生“1+1>2”的效果埋下伏笔。
✦ 联合效应发现:两药联用产生强协同作用
临床常采用联合疗法以克服耐药、提高疗效。ADC与代谢抑制剂的联合是一个新兴策略。
过程:在KYSE30和KYSE150细胞中,将不同浓度的IMMU132与IACS-010759进行矩阵式组合处理,通过协同指数(CDI)和ZIP模型进行定量分析。
结果:几乎所有浓度组合都显示协同效应(CDI <1)。ZIP协同评分在最佳浓度组合(6 µg/mL IMMU132 + 6 µM IACS)下远大于10,表明强协同作用。EdU增殖实验、克隆形成实验和ATP测定均一致证实,联合组的抑制效果显著优于任一单药组。(图2A-H)
图2:IMMU132与IACS-010759联用在体外对ESCC细胞的协同抗肿瘤作用
A:KYSE30和KYSE150细胞经不同浓度IMMU132与IACS单独或联合处理72小时后的细胞活力热图,计算协同指数(CDI<1表示协同)。
B:使用SynergyFinder软件计算的ZIP协同评分热图,白色矩形标示最大协同区域(评分>10为强协同)。
C:IncuCyte实时监测联合处理对细胞增殖的协同抑制随时间变化。
D-E:Edu染色检测细胞增殖(红色为增殖细胞),显示联合处理显著抑制KYSE30(D)和KYSE150(E)细胞增殖(400×,标尺=20μm)。
F-G:克隆形成实验显示联合处理对KYSE30(F)和KYSE150(G)细胞集落形成的协同抑制作用。
H:ATP测定显示联合处理协同降低细胞内ATP水平。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:体外实验首次明确揭示了“TROP2-ADC + OXPHOS抑制剂”的协同抗ESCC效应,并确定了后续机制研究的最佳药物浓度。
✦ 表型机制初探:联用诱导凋亡、抑制转移并引发氧化应激
明确了协同效应后,需探究这种协同是如何实现的——是导致细胞死亡,还是抑制其恶性行为?
过程:
凋亡检测:使用Annexin V/PI流式细胞术。
迁移侵袭检测:使用Transwell小室(侵袭实验需预铺Matrigel)。
氧化应激检测:使用DCFH-DA荧光探针检测活性氧(ROS)。
线粒体功能检测:同时检测caspase-3活性和线粒体膜电位。
结果:联合治疗显著增加早期和晚期凋亡细胞比例,更强地抑制细胞的迁移和侵袭能力,协同提升细胞内ROS水平,有效地激活caspase-3并破坏线粒体膜电位,表明线粒体途径的凋亡被深度激活。(图3A-L)
图3:IMMU132联合IACS-010759协同诱导线粒体凋亡并抑制ESCC细胞运动能力
A-B:流式细胞术检测Annexin V/PI染色显示联合处理显著增加KYSE30(A)和KYSE150(B)细胞的凋亡比例。
C-F:Transwell实验显示联合处理对KYSE30(C, E)和KYSE150(D, F)细胞迁移(C-D)与侵袭(E-F)的协同抑制作用(标尺=250μm)。
G-J:DCFH-DA荧光探针检测ROS水平。荧光显微镜图像(G-H)显示联合处理增加ROS(绿色荧光);流式细胞术定量分析(I-J)进一步验证。
K-L:Caspase-3活性(绿色)与线粒体膜电位(红色)共检测。联合处理显著增强caspase-3活性并降低膜电位,表明线粒体凋亡通路被激活(标尺=100μm)。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:研究将协同效应与具体的细胞死亡(凋亡)和恶性表型(转移)抑制联系起来,并指出氧化应激和线粒体功能障碍可能是关键环节。
✦ 分子机制深挖:RNA-seq揭示对OXPHOS和PI3K-AKT-mTOR通路的双重抑制
表型变化背后必有基因和信号通路的改变。需要全局性、无偏倚地探索联合治疗作用的分子网络。
过程:对经联合处理的KYSE30细胞进行RNA测序(RNA-seq),并进行生物信息学分析(KEGG、GO、GSEA)。
结果:
OXPHOS通路下调:与单药或对照组相比,联合处理细胞中OXPHOS通路相关基因(涉及电子传递链所有五个复合物)被显著下调。GSEA分析也证实“氧化磷酸化”、“ATP合成过程”等基因集被强烈负向富集。(图4)
图4:RNA-seq分析揭示联合处理导致ESCC细胞依赖OXPHOS
A:主成分分析(PCA)显示对照组、单药组及联合处理组样本的基因表达差异。
B:热图展示联合处理组中下调最显著的50个基因。
C:韦恩图显示各处理组与对照组相比的差异表达基因(DEGs)数量及重叠情况。
D:火山图展示联合处理组与对照组之间的DEGs(上调:红色;下调:绿色)。
E-F:示意图(E)及KEGG通路富集分析(F)显示OXPHOS通路及相关电子传递链复合物基因被显著下调。
G:GO富集分析显示DEGs在氧化磷酸化、ATP合成、线粒体内膜组织等生物学过程中显著富集。
H:GSEA分析证实“氧化磷酸化”、“ATP合成过程”及“线粒体内膜”基因集在联合处理组中显著负向富集。
关键致癌通路被抑制:KEGG和GSEA分析共同显示,PI3K-AKT-mTOR信号通路在联合处理后受到显著抑制。同时,细胞周期、上皮-间质转化(EMT)等相关通路也被下调。
蛋白水平验证:Western blot证实,联合处理能更有效地降低p-AKT(Ser473)和p-mTOR(Ser2448) 等关键磷酸化蛋白水平,并下调凋亡抑制蛋白和EMT标志物。(图5)
图5:IMMU132与IACS-010759联合处理影响癌症相关信号通路
A:KEGG通路富集分析展示联合处理组DEGs显著富集的信号通路,如PI3K-AKT-mTOR、p53、MAPK等。
B:GSEA分析(使用MSigDB hallmark基因集)展示联合处理后显著富集的通路。
C:GSEA曲线显示p53通路和缺氧信号通路被正向富集。
D:GSEA曲线显示PI3K/AKT/mTOR信号、mTORC1信号、脂肪酸代谢等通路被负向富集。
E-H:Western blot验证联合处理下调PI3K-AKT-mTOR通路关键蛋白(p-AKT, p-mTOR)、凋亡相关蛋白及上皮-间质转化(EMT)标志物在KYSE30(E, G)和KYSE150(F, H)细胞中的表达。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:机制研究取得核心发现:联合治疗的协同效应并非偶然,其分子基础在于同时打击了肿瘤细胞的“能量工厂”(OXPHOS)和“生长司令部”(PI3K-AKT-mTOR通路)。这为理解协同性提供了清晰的信号轴。
✦ 机制验证:mTOR是协同作用的关键枢纽
生物信息学分析提示mTOR是关键节点,需要遗传学和药理学实验进行功能验证。
过程:
基因敲低:使用siRNA敲低ESCC细胞中的mTOR基因。
药理学干预:使用mTOR抑制剂(雷帕霉素)和激活剂(MHY1485)。
结果:敲低mTOR能模拟联合治疗的效果,进一步增强联合用药对细胞活力的抑制和凋亡的诱导。加入雷帕霉素能增强IMMU132或IACS单药乃至两药联用的效果。加入MHY1485则能部分逆转联合治疗带来的生长抑制。(图6A-G)
图6:mTOR敲低抑制ESCC细胞生长并诱导凋亡
A:Western blot验证siRNA有效敲低KYSE30和KYSE150细胞中的mTOR蛋白。
B-C:mTOR敲低细胞经药物处理后,Western blot检测mTOR和S6蛋白及其磷酸化水平。
D:Cell Titer-Glo检测显示联合处理在mTOR敲低细胞中仍具有强生长抑制活性。
E-F:流式细胞术显示联合处理在mTOR敲低细胞中诱导更强的凋亡。
G:雷帕霉素(mTOR抑制剂)增强而MHY1485(mTOR激活剂)逆转联合处理的抗增殖效果。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:这一部分通过“增益”和“失活”实验,确凿证明了mTOR信号的下调是联合治疗产生协同效应的必要条件和关键执行环节,将机制从相关性推向因果性。
✦ 转化模型验证(一):在患者来源类器官(PDXO)中再现协同疗效
细胞系模型无法完全模拟患者肿瘤的异质性和三维结构。需要更接近临床的模型验证。
过程:从ESCC PDX小鼠模型肿瘤组织培养出PDXO,并通过H&E和IHC验证其保留了原发肿瘤的组织学特征和TROP2表达。随后在PDXO中进行药物处理。
结果:PDXO模型成功构建。联合治疗在ESCC-241-O和ESCC-291-O两个PDXO模型中,均表现出比单药更强、时间依赖性的生长抑制。(图7A-G)
图7:IMMU132联合IACS-010759对ESCC PDX来源类器官的协同抗肿瘤作用
A:ESCC PDX来源类器官(PDXO)构建与药物筛选流程示意图。
B:ESCC-241-O和ESCC-291-O类器官的明场图像(标尺=300μm)。
C:H&E染色显示PDXO保留了原发肿瘤及PDX组织的异质性形态(400×,标尺=20μm)。
D-E:IHC染色显示PDXO与原发肿瘤、PDX组织在CK5/6、P63(D)和TROP2(E)表达上的一致性(蓝色为DAPI核染,400×,标尺=20μm)。
F:IncuCyte动态监测显示联合处理对两种PDXO的生长具有时间依赖性的协同抑制。
G:处理144小时后PDXO的明场图像,直观展示联合处理的抑制效果(标尺=300μm)。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:在更接近人体肿瘤微环境的离体模型中验证了协同效应,增强了研究发现的临床相关性,并为后续选择体内实验模型提供了指导。
✦ 转化模型验证(二):在多种PDX活体模型中证实强效且安全
最终疗效和安全性必须在活体动物模型中评估。不同患者肿瘤对治疗反应可能不同,需在多个模型中进行测试。
过程:在三个不同的ESCC PDX模型(ESCC-241, -266, -291)荷瘤小鼠中,分别设置对照组、IMMU132单药组、IACS单药组和联合治疗组,监测肿瘤体积、小鼠体重及器官毒性。
结果:
强效抑瘤:在三个模型中,联合治疗的肿瘤生长抑制率(TGI)均最高,尤其在ESCC-266模型中达到94.2%,且疗效显著优于单药。
机制一致:对瘤组织的IHC分析显示,联合组Ki67(增殖标志)降低,cleaved caspase-3(凋亡标志)升高,与体外发现一致。TROP2表达未因治疗改变,说明疗效依赖其基础表达。
安全性良好:治疗期间小鼠体重稳定,心、肝、脾、肺、肾等重要器官未见明显病理损伤,血清肝肾功能指标(ALT, AST, BUN, Cr)均在正常范围。(图8A-J)
图8:联合治疗在PDX模型中抑制ESCC肿瘤生长
A:体内实验设计示意图,展示给药方案(IMMU132:静脉注射,每周一次;IACS:灌胃,每周五次)。
B-D:联合治疗在ESCC-241(B)、ESCC-266(C)和ESCC-291(D)三种PDX模型中均表现出最强的肿瘤生长抑制效果(TGI最高达94.2%)。
E:IHC染色显示各组肿瘤组织中TROP2表达水平未因治疗而改变。
F-j:IHC染色定量分析显示,联合治疗组肿瘤中增殖标志物Ki67表达显著降低(F-G),而凋亡标志物cleaved caspase-3表达显著升高(H-j)(400×,标尺=20μm)。数据以均值±SEM表示,*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。
小结:这是最终也是最有力的证据,表明“IMMU132 + IACS-010759”联合方案在模拟患者肿瘤的活体环境中不仅高效,而且耐受性良好,具备了向临床推进的坚实临床前基础。
本研究始于一个明确的临床问题(ESCC缺药),通过临床样本锁定靶点,在细胞水平发现并验证了新的联合策略及其协同机制(打击PI3K-AKT-mTOR和OXPHOS),随后在类器官和PDX动物模型中层层推进,最终在活体水平证实了该策略的强效性与安全性,并初步探索了其精准化应用的潜在标志物。整个研究证据链完整、逻辑环环相扣,从基础到转化,为这种联合疗法进入临床试验提供了强有力的科学依据。
03
总结与展望
本项研究将ADC靶向治疗与肿瘤代谢干预这两个前沿领域紧密联结。其意义不仅在于为ESCC患者带来了新的希望,更在于它示范了一种理性的联合治疗开发范式:即基于肿瘤的分子特征(TROP2高表达)和代谢弱点(OXPHOS依赖),设计具有协同机制的药物组合。
随着未来转化研究的深入,这种策略有望从ESCC出发,最终惠及更广泛的癌症患者,推动肿瘤治疗进入更精准、更高效的“组合拳”时代。
参考文献Liu X, Liu J, Zhou Y, Li M, Wang F, Jiang G, Xiao Y, Cui W, Jiang M, Gu L, Zhang Z, Zheng Y, Zhang S. A TROP2-targeting ADC synergizes with oxidative phosphorylation inhibitor to enhance apoptosis in ESCC by suppressing the PI3K-AKT-mTOR signaling pathway. Cell Death Dis. 2025 Dec 1. doi: 10.1038/s41419-025-08278-5. Epub ahead of print. PMID: 41326355.
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END
编辑丨月亮
排版丨舟舟
审核丨舟舟
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