2005年,一项关于“合成致死”的发现悄然改写了癌症治疗的逻辑:当PARP抑制剂遇上BRCA突变的肿瘤细胞,两者“合谋”便足以杀死后者,却几乎不伤及正常细胞。这并非天方夜谭,而是过去二十年间从实验室走向临床的真实传奇。本文回顾了发表于《自然》的重磅综述,系统梳理了PARP抑制剂如何从机制探索、临床试验、监管获批,到耐药机制与联合治疗策略的全程演进。文章不仅揭示了BRCA突变与PARP抑制之间“你死我活”的分子博弈,还深入剖析了“合成致死外显率”“多基因性”等新概念的临床意义。更难能可贵的是,文中对PARPi耐药机制,尤其是BRCA回复突变的发现,为我们理解肿瘤进化与治疗失败提供了全新视角。如果你关心靶向治疗、DNA修复机制或肿瘤耐药问题,这篇文章将带你站在这一领域的最前沿。
参考文献:DOI: 10.1038/s41586-026-10404-y
一、综述背景
2005年,研究发现PARP抑制剂(PARPi)与BRCA1或BRCA2任一基因缺陷之间存在合成致死关系,从而为携带这两种胚系突变的肿瘤治疗提出了一种全新策略。该合成致死效应的发现,建立在此前数十年研究基础之上,这些研究分别:(1)鉴定BRCA1与BRCA2基因并明确其在维持基因组完整性中的作用;(2)解析PARP1蛋白并界定其在DNA修复中的功能;(3)发展PARP1的药物靶向策略;以及(4)提出合成致死概念并强调其在肿瘤治疗中的潜在价值(图1及框1)。
图1|BRCA–PARP合成致死的发展时间轴。展示了2005年之前促成BRCA–PARP合成致死发现的重要研究进展(详见框1),以及2005年之后推动当前BRCA–PARP合成致死机制认识不断深化的关键发现。
既往针对肿瘤特异性分子改变的治疗策略主要集中于“致癌基因依赖”概念,即抑制肿瘤细胞高度依赖的致癌蛋白,这些蛋白可以是肿瘤特异性表达(如BCR–ABL),或在肿瘤中显著高表达(如ERBB2),从而实现治疗窗(即在最小损伤正常组织的前提下诱导肿瘤细胞死亡)。Farmer等及Bryant等关于BRCA1或BRCA2突变细胞对PARPi敏感性的研究提出了一种替代策略,即利用“肿瘤特异性合成致死”概念,通过遗传或药理学两种扰动的组合获得显著治疗窗。在该模型中,BRCA1或BRCA2缺陷构成肿瘤特异性遗传扰动,而另一种可通过药物实现的扰动则用于选择性清除肿瘤细胞。
从机制上看,该合成致死效应依赖于BRCA1或BRCA2突变细胞无法通过高保真同源重组修复特定DNA损伤。随后研究发现,除BRCA1或BRCA2外,多种参与同源重组修复的蛋白缺陷同样可使细胞对PARPi产生敏感性。同源重组修复依赖于姐妹染色单体之间的模板修复过程,其中关键步骤为DNA链置换反应,即单链DNA侵入同源双链DNA,该过程由DNA重组酶RAD51驱动。
既往研究显示,PARP1功能缺失可诱导细胞核内RAD51焦点形成(链交换的生物标志物)及姐妹染色单体重组,因此推测PARP1抑制可能产生通常需同源重组修复的DNA损伤。在BRCA1或BRCA2功能缺失(即同源重组缺陷,HRD)情况下,这类损伤无法通过高保真途径修复,从而导致致死性染色体异常及细胞存活能力丧失。该假说亦得到既往研究支持:如铂类药物或丝裂霉素C等可诱导重组相关DNA损伤的药物,在正常细胞中可诱导RAD51焦点形成,但在具有BRCA1或BRCA2缺陷的HRD细胞中则不出现。
在实验验证中,Parp1 RNA干扰可在具有Brca1或Brca2缺陷的小鼠胚胎干细胞中诱导合成致死,但在等基因野生型细胞中不产生该效应。随后使用多种高效且特异性的小分子PARP1及其同源蛋白PARP2抑制剂(包括后续获批药物奥拉帕利和鲁卡帕利的前体化合物)进一步证实,该合成致死效应可通过药物方式实现,并在体外显示出显著治疗窗。
由于携带BRCA1/2胚系突变的个体其正常细胞仍保留一份功能性等位基因,而肿瘤细胞通常发生杂合性缺失,因此一个关键发现为:BRCA1/2杂合细胞对PARPi的敏感性与野生型细胞无显著差异。此外,BRCA1/2缺陷细胞对PARPi的敏感性在多种细胞类型及体内模型中均得到验证,提示该效应具有高度稳定性。
在表型层面,PARPi在野生型及BRCA1/2缺陷细胞中均可诱导DNA损伤(以γH2AX焦点形成评估),但仅在野生型细胞中诱导RAD51焦点形成,符合BRCA1/2缺陷细胞同源重组修复受损的特征。BRCA1/2缺陷细胞在PARPi作用下多停滞于G2或M期,或在DNA未修复情况下进入有丝分裂,最终形成严重染色体结构异常,包括染色单体断裂及三射体、四射体染色体。
总体来看,PARPi在BRCA1/2缺陷细胞中的合成致死效应源于其无法依赖RAD51介导的错误率极低的同源重组修复PARPi诱导的DNA损伤;相反,细胞可能转向单链退火及/或非同源末端连接等易错修复通路,从而进一步促进严重染色体重排。重要的是,与诱导DNA交联并在基因组中长期存在损伤的传统化疗不同,PARPi诱导的细胞致死需要持续药物暴露,这提示PARPi相关DNA损伤在药物移除后可较快得到清除或修复。该现象对后续PARPi临床应用策略及机制理解均具有重要指导意义。
综上,两项关于BRCA1/2与PARPi合成致死关系的研究证明该机制具有明确的治疗潜力。除明确PARP1这一治疗靶点及BRCA1/2突变这一同源重组缺陷(HRD)预测性生物标志物外,该研究还提出γH2AX作为PARPi暴露的药效学生物标志物,并在后续临床试验中得到应用。
二、PARP抑制剂的临床发展
过去20年间,BRCA1/2与PARP抑制剂(PARPi)之间合成致死这一生物学现象,已成功转化为用于治疗乳腺癌、卵巢癌、前列腺癌及胰腺癌等一系列难治性肿瘤亚群的新型治疗策略(图1及补充表1)。目前全球已有4种PARPi获批用于治疗富集同源重组缺陷(HRD)的肿瘤,另有2种在中国获得监管批准。
首个PARPi临床试验在BRCA1/2合成致死机制发现之前即已启动,该研究并未评估合成致死效应,而是探索PARPi鲁卡帕利是否可增强DNA烷化化疗药物替莫唑胺对肿瘤细胞的敏感性,研究对象为基因未明确的人群。在BRCA1/2合成致死机制被发现之后,奥拉帕利的后续临床开发路径发生转变,即将PARPi作为单药(非联合治疗)用于诱导BRCA1/2相关合成致死效应。奥拉帕利首次人体(first-in-human)I期临床试验除评估药物安全性与不良反应外,还在设计阶段即纳入携带胚系BRCA1/2突变(gBRCAm)肿瘤患者。该研究扩展队列中相当一部分患者在剂量确定后显示出显著且持久的抗肿瘤反应,从而在人体肿瘤中初步验证了合成致死效应的存在。这些疗效在未出现多数常规化疗常见严重毒副作用的情况下实现。
该试验还评估了PARPi作用的机制相关药效学生物标志物,即毛囊细胞核内γH2AX焦点形成。该指标证实奥拉帕利可诱导DNA损伤,与其作用机制预测一致。基于这一在遗传学定义人群中的初步疗效信号,以及BRCA1/2快速测序技术的可及性提升,随后开展了两项概念验证II期临床试验,分别纳入gBRCAm乳腺癌和卵巢癌患者。
这两项研究在奥拉帕利首次人体试验报告后一年发表,结果显示,在大量既往多线治疗的gBRCAm患者中,约33%(卵巢癌)及41%(乳腺癌)出现显著且持续的抗肿瘤反应。然而此后PARPi临床开发一度进入停滞期,部分原因在于所谓PARPi药物伊尼帕利(iniparib)在临床试验中的失败导致该药物类别信心下降。随后证据表明,伊尼帕利可能并不具备真实PARPi机制。与此同时,药物研发机构、监管机构及研究者也面临在小规模遗传定义人群中开展药物开发的复杂挑战。监管要求通常需要大型随机III期临床试验,并以生存期作为主要终点,同时需明确伴随的生物标志物用于药物审批。这导致PARPi的III期研究需跨多个国家和中心开展,以纳入足够规模的BRCA1/2突变患者群体。
在此背景下,部分II期临床试验未依据gBRCAm分层,而是选择在HRD富集的癌种(如既往多线治疗的高级别浆液性卵巢癌HGSOC及三阴性乳腺癌TNBC)中探索疗效。结果显示,TNBC总体未观察到明确疗效,而HGSOC中,既往对铂类化疗敏感的患者亚群表现出较好反应。推测该差异可能源于铂类反应史可作为HRD富集的替代筛选指标,而TNBC队列中未出现类似富集效应。
这一发现推动将“既往铂类敏感性”作为HRD功能性指标,并用于奥拉帕利在复发性HGSOC中的注册策略设计。随后开展的随机研究将奥拉帕利用于维持治疗,即在初始治疗后延缓疾病进展。该策略显示,在卵巢癌再次接受铂类治疗后使用奥拉帕利,可显著延长无进展生存期(PFS),并且该获益在gBRCAm患者中最为显著。基于该研究结果,2014年奥拉帕利获得首次监管批准,用于既往接受≥3线化疗的复发性gBRCAm HGSOC患者,这是继囊性纤维化CFTR增强剂伊伐卡托之后第二个针对遗传性疾病的靶向药获批。随后SOLO-1 III期研究进一步证明,在一线铂类治疗后立即使用奥拉帕利维持治疗,可显著延缓疾病进展并推迟后续化疗需求,同时改善长期生存,使PARPi进入早期治疗阶段。
进一步进展来自尼拉帕利与鲁卡帕利的III期研究,这些研究在更广泛HGSOC人群中开展,将HRD定义从仅BRCA突变扩展至包含同源重组相关基因体细胞突变或表观遗传沉默所致的HRD突变特征。尽管这些研究同样显示疾病进展显著延缓,但近期监管策略发生调整,将PARPi使用范围收窄至最可能获益人群,即BRCA1/2突变所致HRD的复发性卵巢癌患者,因为在更广泛人群中未观察到总生存获益,且在多线化疗后患者中血液系统不良事件及继发白血病风险增加。
在乳腺癌领域,作为最常见HRD相关恶性肿瘤,两项III期研究OlympiAD(奥拉帕利)与EMBRACA33(他拉唑帕利)证实,在既往化疗后复发或晚期gBRCAm乳腺癌患者中,PARPi较标准化疗可显著延缓疾病进展并改善生活质量。在前列腺癌及胰腺癌中,基于II期研究的积极信号,后续III期研究进一步证明PARPi在HRD或DNA修复基因突变相关肿瘤中具有临床意义的疗效,并推动其在相关适应证获批。此外,OlympiA研究显示,在早期gBRCAm乳腺癌中,奥拉帕利作为辅助治疗可显著提高治愈相关结局。其潜在原因可能包括:(1)早期治疗线较少,减少耐药克隆选择;(2)总体肿瘤负荷较低,包括可能仅存在微小转移灶,使PARPi更易实现完全清除。
OlympiA长期随访结果显示,在标准治疗(化疗、手术及放疗)后使用奥拉帕利12个月作为辅助治疗,在2.5年时复发风险降低约40%,在3.5年时总体生存改善约30%。基于此结果,奥拉帕利成为首个基于gBRCAm生物标志物获批的辅助靶向治疗。该研究同时推动国际指南更新:所有复发性乳腺癌且符合PARPi治疗指征的患者,无论家族史均应接受BRCA1/2检测,从而显著提升遗传检测在乳腺肿瘤学中的应用。PARPi的临床发展也逐步促进了对耐药机制的理解,并提示既往治疗(尤其是铂类化疗)可显著影响PARPi疗效。下文将进一步讨论合成致死的机制基础,以及耐药发生机制与潜在干预策略。
三、BRCA–PARPi合成致死效应的机制理解
最初提出的BRCA–PARPi合成致死机制认为,PARP抑制可诱导DNA损伤形成,可能包括单链DNA断裂或单链缺口;当复制叉遭遇这些损伤时,将产生通常依赖RAD51介导同源重组进行修复的DNA损伤。在存在BRCA1或BRCA2缺陷的肿瘤细胞中,由于无法通过同源重组修复这些DNA损伤,细胞被迫依赖替代性的错误率较高的DNA修复方式,从而导致染色体不稳定性增加,最终引起细胞适应性下降并导致肿瘤细胞死亡。
与许多治疗策略类似,该初始模型随后不断演变(图2)。目前对PARPi作用机制的理解已进一步认识到:尽管所有已获批PARPi均可抑制PARP1和PARP2的催化活性,但能够产生最强BRCA1/2合成致死效应的PARPi,还可诱导PARP1/2发生构象改变,从而增强这些DNA结合蛋白对DNA的亲和力,即所谓“PARP捕获(PARP trapping)”。由PARP1/2捕获形成的DNA–蛋白复合物,通常发生于DNA复制叉上冈崎片段之间的单链DNA缺口处。尽管PARP捕获在合成致死机制中的重要性曾受到质疑,但与同时具备PARP捕获及PARylation抑制作用的PARPi相比,那些虽能有效抑制PARylation、但几乎不引起PARP捕获的PARPi,在临床前模型中仅表现出较弱的BRCA1/2合成致死效应。
图2|癌症中PARPi敏感性的机制
a|PARP1可结合单链DNA断裂等DNA损伤位点,该过程可诱导PARP1构象发生改变并激活其催化活性,即PARylation。在不存在PARP抑制剂时,PARP1底物蛋白的PARylation有助于DNA修复;PARP1自身PARylation最终促使PARP1从DNA上解离。临床应用的PARPi不仅抑制PARP1催化活性,还可诱导PARP1发生别构变化,从而增加PARP1在DNA上的滞留时间(即PARP1 trapping)。在PARP1功能缺失情况下,未修复的DNA损伤以及被捕获的PARP1均会阻碍复制叉正常推进,进而形成通常需依赖同源重组修复的DNA损伤。例如,复制叉处形成单端双链DNA断裂。目前尚不明确究竟是位于复制叉前方还是后方的被捕获PARP1阻碍复制叉推进(图中两种情况均有显示)。
b|在保留至少一个功能性BRCA1或BRCA2拷贝的非肿瘤细胞中,PARPi对复制叉造成的损伤可通过BRCA1/2介导的同源重组得到修复。该过程可维持基因组稳定性并促进细胞存活。
c|在所有野生型BRCA1/2拷贝均缺失的肿瘤细胞中,由于缺乏同源重组修复,细胞只能依赖高错误率DNA修复方式修复复制叉。在PARPi持续作用下,经过多个细胞周期后,这类修复方式可导致结构异常基因组不断积累(图中显示BRCA2突变细胞中期染色体结构作为示例,箭头所示为染色单体断裂、三射体及其他染色体异常)。
d|BRCA1/2–/–细胞暴露于PARPi后产生的染色体异常,最终会削弱其细胞适应性,尤其与BRCA1/2+/–或BRCA1/2+/+细胞相比更为明显(图示为体外对PARPi KU0058948的敏感性)。数据以均值和标准差表示。
e|除改变基因组正常结构外,PARPi暴露还可导致BRCA1/2缺陷细胞胞质DNA增加,这可能是基因组不稳定性的副产物。胞质DNA可被cGAS模式识别受体识别,进而激活STING信号通路,并诱导Ⅰ型干扰素(IFN)及促炎趋化因子释放。这些信号随后可激活适应性免疫系统(T细胞)和先天免疫系统(巨噬细胞);在小鼠模型中,缺乏这些免疫效应细胞可降低PARPi体内疗效,提示除肿瘤细胞内在的合成致死机制(如c、d图所示)外,非肿瘤细胞同样参与PARPi合成致死效应。
在临床中,PARP捕获能力较弱的PARPi作为单药用于BRCAm患者时疗效结果并不一致;但其通过抑制PARP催化活性并增强化疗敏感性的能力,则在与卡铂及紫杉醇联合治疗BRCAm卵巢癌或乳腺癌患者时得到明确体现,可延长无进展生存(PFS)。PARP捕获还可能影响PARPi单药或联合治疗时的剂量限制性毒性。例如,小鼠中T细胞毒性或红细胞母细胞毒性分别被归因于PARP1或PARP2捕获。这推动了PARP1选择性PARPi的研发与临床测试,该类药物在大鼠中显示出明显降低的血液学毒性。
过去20年中,对于BRCA1和BRCA2在PARP1合成致死中的关键功能认识也不断深化。BRCA1与BRCA2不仅在复制叉处调控同源重组,还参与维持复制叉稳定性、抑制复制后单链DNA缺口形成、促进DNA–RNA R环结构解离,以及特别对于BRCA1而言,还参与DNA双链断裂(DSB)末端切除及另一种DSB修复机制——单链退火。尽管复制后单链DNA缺口认为是PARP1结合与捕获的重要底物,并可能驱动合成致死,但实验模型显示:仅导致缺口抑制功能缺陷、而保留同源重组能力的BRCA2突变,并不会诱导PARPi合成致死;相反,导致同源重组缺陷的BRCA2突变则可明显诱导PARPi敏感性。这提示,同源重组功能丧失才是PARPi敏感性的主导机制。近期研究还提出,PARPi合成致死可能与PARP1和RAD51竞争结合单链DNA丝状结构有关,其中BRCA2正常情况下可稳定RAD51丝状结构并阻止PARP1结合DNA。
四、PARPi敏感性与耐药性的多种途径
小规模及全基因组遗传扰动实验表明,除BRCA1/2之外,大量与同源重组相关的肿瘤抑制基因缺陷同样可导致PARPi敏感性,这一发现最终推动PARPi常规应用于携带PALB2、RAD51C和RAD51D等基因有害突变的肿瘤。证明这些基因功能异常可产生合成致死效应的最终证据,来自PARPi耐药及铂类化疗耐药肿瘤中继发性体细胞“回复”突变的发现。这类突变可在不逆转肿瘤既有高度基因组紊乱状态的情况下恢复同源重组基因功能(图3a)。由于发生同源重组基因回复的患者在停止PARPi治疗后,肿瘤仍表现出高度侵袭性,提示恢复同源重组基因功能对肿瘤适应性影响有限,因此这一现象说明,尽管这些基因最初归类为肿瘤抑制基因,但其功能恢复并不具有肿瘤抑制作用。相反,这些基因缺失通过一种“潘多拉魔盒”效应,在疾病早期促进基因组突变,从而驱动肿瘤发生;而在疾病进展至一定阶段后,BRCA1/2功能异常似乎已不再是肿瘤维持所必需。
尽管不同研究估计存在差异,但约39%的卵巢癌HRD靶向治疗耐药与同源重组基因回复相关,而这一比例在晚期乳腺癌中为57%,在晚期前列腺癌中则高达80%。除导致PARPi耐药外,BRCA1/2回复突变同样可引起铂类药物耐药。在晚期BRCA1/2突变乳腺癌和卵巢癌中,由于目前通常先使用铂类化疗后再给予PARPi治疗,因此患者接受铂类药物治疗后循环肿瘤DNA中检测到的回复突变,似乎可预测后续PARPi治疗获益有限。这提示,回复突变可能成为PARPi治疗无效的预测性生物标志物。在少数未接受既往DNA损伤性化疗的晚期前列腺癌患者循环肿瘤DNA中,也观察到BRCA2回复突变,提示该类突变可能原本即存在于初治人群中,或由抗雄激素治疗选择性富集。同源重组基因回复相关DNA序列分析显示,大多数回复突变源于缺乏同源重组条件下运行的DNA双链断裂修复方式,例如DNA聚合酶θ(Pol θ)介导的末端连接(图3a)。因此,有研究提出,在PARPi或铂类药物初治肿瘤中联合应用Pol θ抑制剂,以预防或延缓回复型肿瘤的出现。临床前模型显示,尽管回复型肿瘤细胞对PARPi耐药,但对ATR或WEE1激酶抑制剂等实验性药物仍保留一定敏感性;这些药物可促进高度基因组紊乱肿瘤细胞提前进入有丝分裂。一项早期临床试验显示,ATR抑制剂在既往PARPi治疗后进展的BRCA1/2回复型肿瘤患者中具有一定临床获益。
除回复相关机制外,临床前研究还发现多种非回复相关PARPi耐药机制,包括DNA末端切除抑制蛋白(如TP53BP1及Shieldin复合物)缺失、PAR水解酶PARG缺失导致PARP1捕获减少、PARP1自身突变,以及P-糖蛋白上调引起药物外排增加等(图3b)。在某些情况下,这些代偿机制虽然导致PARPi耐药,但同时赋予肿瘤细胞新的脆弱性,形成一种“进化性双重困境”。例如,TP53BP1或Shieldin复合物缺失可使BRCA1突变肿瘤细胞产生PARPi耐药,但同时增强其对Pol θ抑制剂的敏感性。这提示,若这些耐药机制在临床中确实存在,则可通过预防其发生或在出现后加以靶向治疗。尽管较为少见,但在人类肿瘤中已发现与上述其他耐药机制相关的基因突变或表达缺失。例如,在晚期gBRCAm乳腺癌中,57%的患者在PARPi和/或铂类药物耐药时可检测到回复突变,同时约15%的患者存在TP53BP1等其他耐药基因突变;部分患者中回复与非回复耐药机制可同时存在,提示同一患者体内可能并行出现多条耐药途径。
尽管如此,PARPi耐药疾病中回复突变发生率较高,提示所有针对PARPi耐药的新策略均需评估其对回复型肿瘤的作用。例如,目前已发现并正在开展药物研发的多种其他BRCA1/2合成致死靶点(如CIP2A、POLQ、APEX2、USP1、RAD52、LIG1或FANCM抑制)中,BRCA1/2回复突变在临床前模型中均可逆转其敏感性,正如其可逆转已获批PARPi及正在临床开发中的PARP1选择性PARPi敏感性一样。这可能削弱这些策略在已发生此类PARPi耐药情况下的治疗价值。然而,这些靶点抑制剂在延缓回复突变形成(如POLQ,后文将进一步讨论)或克服其他类型耐药方面,仍可能具有潜在价值。
图3|癌症中PARPi耐药机制
a|同源重组基因回复导致的PARPi耐药。图中展示了文献62报道的一例携带BRCA2 p.E49X胚系突变乳腺癌患者的BRCA2基因突变状态。正常组织细胞(左框)为BRCA2 p.E49X杂合突变。野生型等位基因编码功能正常的野生型BRCA2蛋白,全长3,418个氨基酸(aa)。突变等位基因含有G>T突变,可将GAA密码子(下划线所示,编码谷氨酸[E])转变为提前终止密码子(TAA),从而编码仅49个氨基酸的截短失功能BRCA2蛋白,或产生经无义介导mRNA降解(NMD)清除的mRNA。由于仍保留野生型等位基因,因此BRCA2介导的同源重组功能得以维持,正常细胞对PARPi耐药。
该患者在PARPi治疗前转移灶肿瘤DNA测序(中框)显示,野生型BRCA2已发生缺失(即杂合性缺失)。随后接受PARPi治疗时,由于肿瘤细胞缺乏功能性BRCA2等位基因,因此产生合成致死效应。尽管PARPi治疗曾获得显著抗肿瘤反应,但患者最终仍出现PARPi耐药性复发(右框)。肿瘤活检DNA测序显示,突变型BRCA2等位基因发生了继发性突变,形成回复型等位基因。该继发突变为一段24 bp缺失,两侧由两个TA序列(下划线所示,即微同源序列侧翼缺失)包绕。该缺失去除了提前终止密码子,并使基因重新恢复阅读框,从而编码一种含8个氨基酸缺失、全长3,410个氨基酸的回复型蛋白。尽管该蛋白并非野生型BRCA2,但其仍可支持同源重组修复,因此导致PARPi耐药。
b|同源重组(HR)缺陷肿瘤中非回复型PARPi耐药机制。PARPi耐药还可通过多种非回复机制产生,包括药理学机制,例如ABCB1等小分子药物外排泵上调,导致细胞内PARPi浓度下降;或通过分子改变减少被捕获PARP1负荷;亦可通过代偿性DNA修复过程,在PARPi诱导DNA损伤情况下稳定复制叉;此外,还可能通过DNA修复系统其他改变,在缺乏BRCA1条件下部分恢复某种形式的同源重组功能。
五、PARPi之外的经验启示
自BRCA–PARPi合成致死现象发现后的20余年间,关于癌症合成致死的研究论文已超过4,000篇(图4和补充图1)。近期一项系统性评估显示,围绕多种癌症驱动基因相关合成致死效应,已启动1,207项临床试验,其中包括BRCA1/2(472项)、ATM(143项)、MYC(125项)、TP53(66项)和PTEN(58项)等。推动这一研究热潮的重要原因,在于癌症模型系统构建能力的技术进步,以及RNA干扰和CRISPR–Cas9基因失活等遗传扰动筛选技术的发展。鉴于人们希望进一步拓展合成致死概念的应用价值,目前尚缺乏更多可常规应用的合成致死治疗策略,这一点或许令人意外。其原因既包括新型抗肿瘤药物研发所需时间长、成本高,也包括部分蛋白难以实现药物学靶向等现实问题。然而,对PARPi临床反应差异及PARPi耐药机制的研究,还揭示出一些重要因素,从而推动人们重新审视合成致死概念,并将“合成致死外显率”“多基因性”和“复杂性”等因素纳入考虑范围(图5)。
图4|癌症中合成致死概念的拓展
a–d|具有治疗前景的合成致死效应:目前已鉴定出多个具有潜在转化价值的合成致死靶点(外圈),其与肿瘤抑制基因或其他癌症相关基因缺陷(内圈)相关(a)。这些靶点包括具有部分功能重叠的旁系同源基因之间的合成致死关系,例如VRK2(在胶质母细胞瘤中缺陷)与VRK1之间,以及ARID1A(在卵巢癌和乳腺癌中缺陷)与ARID1B之间;后两者为染色质重塑SWI/SNF复合物(亦称BAF复合物)的互斥组成成分(b)。此外,还包括参与相似分子过程蛋白之间的合成致死关系,例如APC(在结直肠癌中缺陷)、CTNNB1(亦称β-catenin)和TCF7L2在WNT信号通路中的作用;以及E-cadherin(亦称CDH1,在弥漫型胃癌和小叶型乳腺癌中缺陷)、ITGAV、ITGB5、FERMT2(亦称kindlin)和PTK2(亦称FAK)在肌动蛋白细胞骨架组装及Rho–ROCK信号通路中的作用(c)。
d|图中还展示了ATR与ATM之间的合成致死关系。ATR和ATM均为参与DNA损伤应答的激酶,二者功能部分重叠。ATM主要在DNA双链断裂(DSB)发生后激活,而ATR则在形成单链DNA(ssDNA)区域时被激活;这种情况通常出现在DSB末端切除(resection)后,或复制叉停滞时。ATR和ATM通过磷酸化CHK1和CHK2等底物,协调DNA修复、细胞周期进程等多种生物学过程,从而维持基因组稳定性(图中以p53激活为示例)。
在遗传学中,“外显率”用于描述具有某一特定基因型(例如BRCA1/2突变)的个体表现出特定表型(此处指PARPi合成致死效应)的程度。同样,“外显率”这一概念也适用于单个患者体内携带合成致死生物标志物的肿瘤细胞中,有多少比例可被合成致死治疗清除。从这一角度来看,BRCA–PARPi合成致死效应具有较高外显率,但并非完全外显;在患者群体层面,并非所有携带BRCA1或BRCA2突变的患者均可对PARPi产生持续应答;而在单个患者层面,同一患者体内并非所有BRCA1/2突变肿瘤细胞均可被PARPi彻底清除。后续针对其他癌症合成致死效应的研究表明,尽管不同效应的外显率存在差异,但目前几乎所有已发现的合成致死效应均存在外显不完全现象。
研究BRCA1突变细胞中PARPi耐药机制时,揭示了导致外显不完全的一个重要原因;在这一情况下,通常视为“双基因”合成致死(即仅涉及BRCA1和PARP1两个基因)的效应,其实受到多个其他修饰基因的共同影响,即具有“多基因性”,同时还是一种由基因与环境共同决定的复杂表型。具体而言,遗传扰动筛选研究显示,BRCA1–PARP1合成致死效应具有多基因性,其外显率受到多个修饰基因(如TP53BP1、REV7和SHLD1/2/3)的调控;这些基因失活后可导致PARPi耐药,从而改变其外显率(图5b,c)。此外,小鼠研究进一步表明,BRCA1–PARP1合成致死效应同样具有复杂性,其外显率不仅受到上述基因影响,还受肿瘤免疫微环境组成的调控。
在考虑哪些合成致死效应适合进入药物发现或药物开发阶段时,“合成致死外显率”“多基因性”和“复杂性”等概念可能具有重要意义。显然,若要在临床上取得疗效,合成致死抗肿瘤治疗必须具有较高外显率,并依赖能够预测持续抗肿瘤应答的生物标志物;相反,若仅关注那些虽具有统计学意义但外显率较低的合成致死效应,则难以真正改善患者临床结局。
图5|合成致死的外显率与多基因性
a|合成致死外显率。示意图通过肿瘤细胞系存活实验展示合成致死效应外显率的差异。基因或蛋白A与基因或蛋白B之间的合成致死效应具有完全外显率,即在所有携带基因A突变的肿瘤细胞系中均可观察到。相比之下,基因或蛋白C与基因或蛋白D之间的合成致死效应虽然真实存在,但其外显率不完全,仅在部分而非全部携带基因C突变的肿瘤细胞系中出现。
b|BRCA1与PARP1之间的合成致死并非简单的双基因(digenic)相互作用,而是一种多基因表型,涉及多个额外基因或蛋白的共同作用。图中显示,TP53BP1、SHLD1、SHLD2或SHLD3失活均可改变该合成致死效应,从而导致PARPi耐药。
c|BRCA1与PARP1失活是产生合成致死效应的必要条件,但仅凭二者本身尚不足以完全解释这一表型(即“必要但不充分”);TP53BP1、SHLD1、SHLD2和SHLD3则作为该合成致死效应的修饰因子发挥作用。
六、这一领域的未来将走向何方?
(1)PARPi联合治疗策略
对于部分肿瘤而言,若不良反应可控,联合化疗方案通常较单药治疗具有更高疗效。这可能部分归因于多种药物通过不同作用机制共同作用于肿瘤细胞,从而降低耐药发生概率。PARPi最初研发的目的之一,即是与细胞毒性化疗联合以增强疗效。然而,这一策略在PARPi领域推进过程中面临较大挑战,尤其是骨髓毒性过重。维利帕利作为一种强效PARP1催化活性抑制剂,但PARP捕获能力较弱,因此能够与化疗联合应用。然而,维利帕利联合治疗对疾病控制的改善幅度有限,未能推动药物获批上市。对于HRD肿瘤中常用的铂类或紫杉类化疗,与兼具强PARP捕获作用的PARPi联合应用,目前仍面临较大困难。不过,Partner试验近期证据显示,在铂类输注与奥拉帕利给药之间设置时间间隔,可提高治疗耐受性,并且相较单用铂类可能进一步增强疗效。
另一种策略是以奥拉帕利替代铂类,与紫杉类药物联合应用。该方案降低了骨髓毒性及相关不良反应,但未能提高肿瘤缓解率。PARPi与细胞毒化疗联合的另一潜在途径,是采用抗体偶联药物(ADC)。ADC通过识别肿瘤细胞表面蛋白的抗体,将化疗药物选择性递送至肿瘤细胞。fam-trastuzumab deruxtecan-nxki(Enhertu,德曲妥珠单抗)和Sacituzumab govitecan(Trodelvy,戈沙妥珠单抗)等ADC,近期已在乳腺癌及其他肿瘤治疗中取得显著成功。这类药物递送的有效载荷为拓扑异构酶Ⅰ抑制剂,而该类药物已证实可与PARPi产生协同作用。目前正探索其与PARPi联合应用,以评估抗体介导的大量DNA损伤定向递送至肿瘤细胞后,是否能够增强整体治疗效能,并有望克服同源重组功能恢复导致的PARPi耐药。然而,尽管ADC较非ADC形式的拓扑异构酶Ⅰ抑制剂具有更强肿瘤选择性,其临床应用价值仍取决于对正常细胞是否具有足够保护作用。此外,还需明确目前ADC作为晚期肿瘤单药治疗(以及未来在早期乳腺癌中的应用)是否最终会筛选出PARPi耐药肿瘤克隆;对此的理解可能有助于确定ADC与PARPi的最佳使用顺序。
目前也在探索其他DNA修复抑制剂(如ATR抑制剂)与PARPi联合治疗。初步结果显示,在既往PARPi治疗后产生耐药的患者中,该联合方案可获得一定抗肿瘤活性,但ATR与PARP同步抑制所致正常组织毒性可能成为限制因素。在BRCA1/2突变前列腺癌患者中,PARPi联合雄激素受体阻断剂(恩杂鲁胺)或雄激素生成抑制剂(阿比特龙)显示出显著协同效应,目前相关联合方案已获FDA批准,尽管其协同机制尚未完全明确。
此外,在卵巢癌领域,已证实单药有效的PARPi奥拉帕利与VEGF抑制剂贝伐珠单抗联合方案也已获批。该联合方案的疗效究竟源于两种药物间的协同作用,还是由于两者通过不同作用机制发挥效应,从而避免重叠毒性加重并减少针对任一药物的耐药机制出现,目前尚不清楚。
综合上述情况,并考虑到晚期肿瘤中PARPi单药治疗耐药普遍存在且其病因仅部分明确,未来PARPi联合治疗的重要突破,可能并不完全来自单纯追求协同抗肿瘤作用的组合,而是来自有意识设计用于预防或延缓耐药出现的联合策略,例如联合DNA Pol θ抑制剂。此外,与PARPi联合的药物未必一定需要属于DNA损伤类药物;正如雄激素受体阻断或VEGF抑制所示,采用与PARPi作用机制正交的药物,或许能够获得更佳疗效并降低毒性。
(2)PARPi与肿瘤微环境
与野生型肿瘤相比,BRCA1/2突变肿瘤具有独特的肿瘤微环境特征。这部分源于基因组不稳定性导致胞质DNA大量积累,继而激活环状GMP–AMP合成酶(cGAS)模式识别受体,进一步启动干扰素基因刺激因子(STING)信号通路及Ⅰ型干扰素趋化因子生成。在BRCAm肿瘤小鼠模型中,PARPi治疗可增强cGAS–STING反应,并激活CD4+和CD8+ T细胞应答;联合小分子STING激动剂后,这一效应可进一步增强。BRCA1或BRCA2回复突变可逆转PARPi诱导的cGAS–STING信号强度;而在小鼠中耗竭CD8+ T细胞则可降低PARPi疗效,提示适应性免疫应答可能参与PARPi抗肿瘤作用。
这些发现为PARPi联合免疫检查点抑制剂(如抗PD1抗体)临床试验提供了理论依据。然而,尽管部分研究仍在进行,目前结果尚未证实这一假设。后续研究还发现,巨噬细胞可能是PARPi诱导cGAS–STING反应的重要组成部分,采用CSF1R靶向巨噬细胞可克服PARPi耐药。此外,调节性T细胞同样参与PARPi治疗反应,在卵巢癌小鼠模型中,采用CCR8抗体靶向调节性T细胞可增强PARPi疗效。
(3)PARPi在肿瘤预防与早期干预中的应用
如前所述,PARPi已从最初用于重度经治转移性肿瘤,逐步发展为铂类治疗高度应答患者的维持治疗,进一步扩展至HRD早期乳腺癌辅助治疗,即用于尚无远处播散证据的患者。基于这一发展历程,人们开始思考是否可在肿瘤发生更早阶段使用PARPi,包括作为健康BRCA1/2胚系突变携带者的预防性药物,或用于尚无临床癌症表现但已可检测到早期肿瘤性病变的人群。
OlympiA辅助治疗研究为这一策略提供了线索:在gBRCAm女性患者中,与安慰剂相比,接受奥拉帕利治疗以降低既有原发乳腺癌远处转移复发风险者,其新发原发性乳腺癌、卵巢癌或输卵管癌发生率明显降低。显然,健康gBRCAm携带者的肿瘤发生风险较高,但这一潜在获益仍需与PARPi可能带来的短期及长期不良影响相权衡,同时还需考虑目前通过预防性手术(乳房切除和/或卵巢切除)已证实可改善生存获益。
(4)更广泛地应用合成致死理论
利用合成致死策略靶向经典癌症驱动基因,以及开发针对既往“不可成药”靶点的新型药物,仍具有巨大潜力。长期以来,DNA修复蛋白一直是丰富的合成致死靶点来源,但针对其进行药物学抑制较为困难。然而,在过去10年中,ATR、ATM、DNA-PK、PYMT1、WEE1、CHK1/2、USP1、FEN1、PARG、POLQ和WRN等抑制剂相继问世,其中大多数已进入临床试验阶段,用作合成致死治疗策略。
扩展合成致死原理的另一种方式,是将合成致死相互作用视为“多基因表型”,而非简单的“双基因相互作用”。这一思路允许将共同发生的癌症驱动基因突变视为与某一靶点形成合成致死关系,也支持采用联合治疗策略,同时靶向合成致死蛋白及其预测性耐药机制。进一步而言,这甚至可能利用“定向进化”和“双重困境”等策略:首先抑制一个合成致死靶点,经达尔文选择后诱导产生某一特定表型,再由第二个合成致死靶点加以靶向;前文PARP与Pol θ抑制剂联合即为典型例子。
最后,新型预测工具的发展,可能进一步促进可药物化合成致死相互作用的发现。例如,目前已部分明确决定合成致死外显率的生物学规律,因此这些规律可能用于预测尚未通过实验验证的相互作用外显率。同样,在部分合成致死关系中已观察到,肿瘤抑制基因缺失或突变与其对应合成致死基因表达升高之间存在相互关系(可能反映一种维持肿瘤适应性的功能缓冲机制),例如BRCA1/2与POLQ。人类肿瘤转录组分析显示,这种缓冲关系在绝大多数肿瘤抑制基因中均可观察到,提示其可能是癌症的重要特征。因此,这类缓冲关系也可用于筛选更可能在患者体内发挥作用的合成致死靶点。随着调控癌症合成致死效应的启发式规律逐渐明晰,未来大型语言模型及其他人工智能方法,或许不仅能够识别新的合成致死关系,还可预测其是否具有真实临床应用价值。
七、个人观点
回顾PARP抑制剂与BRCA合成致死这二十年的发展历程,我深刻感受到,这一领域成功的关键,不在于发现了又一个靶点,而在于它首次将“合成致死”从一个遗传学概念,完整地转化为可操作、可检测、可耐药的临床治疗范式。这不仅是精准医学的胜利,更是基础研究与临床转化之间相互驱动、彼此修正的经典范例。作为一名长期从事乳腺癌研究的医生,我认为其中最具启示意义的并非PARPi本身,而是它所揭示出的肿瘤生物学中的一个悖论:BRCA1/2缺失驱动了肿瘤的发生,但当肿瘤已经形成并进展至晚期后,恢复这些基因的功能(通过回复突变)却并不逆转肿瘤的恶性表型,而仅仅是逃逸了治疗压力。这说明,所谓的“肿瘤抑制基因”在肿瘤发生和肿瘤维持中扮演着完全不同的角色——这一认识深刻挑战了我们传统上对“驱动基因”的线性理解,也提示在未来的靶向策略设计中,必须将时间轴与进化压力纳入考量。
此外,外显率、多基因性和复杂性这三个概念的引入,标志着合成致死研究正从“二元对立”走向“系统调控”的更高维度。BRCA1-PARP1的相互作用并非孤立存在,而是受到TP53BP1、REV7、Shieldin复合物等多个修饰基因的调控,其表型还受到免疫微环境的影响。这意味着,任何试图复制“PARPi成功”的合成致死策略,都必须从一开始就评估其外显率和可耐药路径,否则极易陷入“统计显著、临床无效”的困境。我尤为关注POLQ抑制剂与PARPi的联合策略,因为它正是利用了耐药路径本身所暴露出的新脆弱性,这种“进化双重困境”的思路,或许是应对肿瘤异质性与适应性最理性的策略。
站在今天展望未来,我认为合成致死领域最令人兴奋的方向,并非不断寻找新的靶点对,而是学会如何设计“抗进化”的治疗方案。肿瘤不是静止的基因型,而是一个不断试错的生态系统。若我们能像PARPi研究所揭示的那样,预测出肿瘤最可能的逃逸路径,并提前或在逃逸早期以第二靶点阻断之,我们或许才能真正实现从“延缓进展”到“遏制耐药”的跨越。同时,PARPi在辅助治疗乃至预防性应用中的探索,提示我们合成致死的窗口可能并不局限于晚期肿瘤。对于BRCA突变携带者而言,能否在不依赖手术的前提下,以短期、间歇性的PARPi干预来降低癌变风险,这是一个值得认真审视的科学与伦理命题。无论如何,这二十年只是一个开始,合成致死的真正潜力,或许才刚刚露出冰山一角。