L-Lysine hydrochloride

如今，在药物化学领域，降解具有配体的E3连接酶已不再困难。只需将该E3的配体与任意E3配体（包括自身）结合，形成PROTAC，即可实现该E3的降解。 ——研究1—— X连锁凋亡抑制蛋白（XIAP）是一种凋亡抑制因子和E3泛素连接酶。XIAP基因在大多数肿瘤细胞株中过表达，与肿瘤的进展、复发、预后以及化疗耐药密切相关。 2021年，Genentech的科学家在开发新型XIAP降解剂时提出一个设想：在XIAP配体上引入一个带末端氨基的尾巴，用以模拟赖氨酸。这个氨基可能被邻近的E2识别并泛素化，导致XIAP的降解（图1）1。 图1. 小分子配体末端氨基模拟赖氨酸 Genentech的科学家合成了一系列带末端氨基的XIAP抑制剂衍生物，并将XIAP抑制剂二聚体作为阳性对照（图2）。 图2. 化合物结构 结果显示，带末端氨基的XIAP抑制剂衍生物确实能降解XIAP，尤其是化合物10，其Dmax达到98%（图3）。 图3. XIAP抑制剂衍生物降解XIAP 随后，研究人员进行了一系列验证，表明化合物10通过泛素-蛋白酶体途径诱导XIAP降解。为验证设想，他们在体外构建了一套人工泛素系统，包含UBE1 (E1)、UbcH5a (E2)、XIAP (E3)、ATP、泛素或甲基化泛素（Me-Ub）。通过SDS-PAGE和LC-MS证明化合物10在体外可被泛素化（图4）。 图4. 左图：在XIAP存在下，带荧光基团的化合物10-TAMRA被多泛素化或单泛素化；右图：在XIAP存在下，生成10-Me-Ub 作者将他们的技术称为K-tag。 图5. K-Tag示意图 ——研究2—— 2023年，另一项类似研究在BioRxiv上出现，主要探讨NSD2抑制剂如何转变为降解剂，并于2024年正式发表2。 NSD蛋白家族（nuclear receptor binding SET domain proteins）包含NSD1、NSD2和NSD3，与肿瘤发生相关，是组蛋白甲基化转移酶，对染色质稳定和基因表达调控至关重要。作者前期研究发现UNC8153可引起NSD2蛋白降解（图6）。基于此，作者合成了一批类似物进行构效关系研究，发现UNC8732分子活性最佳，Dmax为97%。 图6 .化合物结构及活性 UNC8732不仅能诱导细胞内野生型NSD2蛋白降解，还可诱导致病型NSD2 E1099K降解（图7）。 图7 . UNC8732诱导NSD2降解 与前一研究不同，作者认为化合物Linker的一级胺尾巴并未模拟赖氨酸。他们发现UNC8732在培养基中被代谢为醛，并推测是FBS中的胺代谢酶介导了UNC8732的转化。加入广谱胺代谢酶抑制剂AG后，确实抑制了UNC8732介导的NSD2降解。在无血清的培养基中，NSD2也未被降解（图8）。 图 8. a. UNC8732的转换；b-f. 血清介导UNC8732的转化 作者试图合成醛，但未成功，最终合成了纯净的α羟基磺酸盐。该化合物UNC10088可以介导NSD2的降解，且活性强于UNC8732，并可在溶液中自发转化为醛（图9）。 图9.α羟基磺酸盐自发水解并结合靶标蛋白 通过BioID技术，作者发现FBXO22可能是介导NSD2降解的目标E3连接酶。使用BRET技术表征细胞内FBXO22和NSD2的互作，发现二者在UNC8732的存在下被诱导聚集。使用siRNA敲除相关泛素连接酶组分，抑制了NSD2的降解。最后，使用BLI表征了UNC10088介导的三元复合物（图10）。 图10. 寻找E3以及三元复合物验证 研究还发现，一级胺对降解活性至关重要，若将伯胺改为仲胺，化合物则会丧失降解能力。作者使用DSF技术表征了UNC10088与FBXO22的结合，通过氢氘交换质谱确定了小分子与FBXO22的结合位置，发现326位的半胱氨酸可用于共价反应。C326突变后，化合物无法诱导NSD2降解。 ——小结——   第一篇研究提出了一个大胆的假设：小分子上的末端氨基可以模拟赖氨酸。实验表明，这些小分子在体外人工条件下确实可以被泛素化，但后续缺乏更深入的机制验证。第二篇研究则更加扎实，成功确定了FBXO22是介导NSD2降解的靶蛋白，并明确了结合位点。不知道读者更喜欢哪个故事呢？ 参考文献： [1] den Besten, W.; Verma, K.; Yamazoe, S.; Blaquiere, N.; Phung, W.; Izrael-Tomasevic, A.; Mulvihill, M. M.; Helgason, E.; Prakash, S.; Goncharov, T.; et al. Primary amine tethered small molecules promote the degradation of X-linked inhibitor of apoptosis protein. J. Am. Chem. Soc. 2021, 143 (28), 10571-10575. DOI: 10.1021/jacs.1c05269. [2] Nie, D. Y.; Tabor, J. R.; Li, J.; Kutera, M.; St-Germain, J.; Hanley, R. P.; Wolf, E.; Paulakonis, E.; Kenney, T. M. G.; Duan, S.; et al. Recruitment of FBXO22 for targeted degradation of NSD2. Nat. Chem. Biol. 2024. DOI: 10.1038/s41589-024-01660-y. 作者：任宇浩 审稿：程北溟   编辑：郭   政 GoDesign ID：Molecular_Design_Lab （ 扫描下方二维码可以订阅哦！） 点击阅读原文即可查看文献链接 Andy M. Lau et al.

编辑丨王多鱼 排版丨水成文 近年来，生物大分子的液-液相分离（LLPS）现象及其所形成的无膜亚细胞结构——生物分子凝集体（Biomolecular condensates），已成为科研领域的热点。这些凝集体能够在不依赖膜结构的情况下，对生物大分子进行空间分隔，从而实现对细胞生理过程的精准时空调控。其中，蛋白质-蛋白质相互作用（PPI）是这一调控机制的重要基础。因此，深入解析特定生物分子凝集体中的蛋白质互作，对于揭示其形成机制与功能具有重要意义。 然而，由于生物分子凝集体的动态形成过程及缺乏清晰膜结构边界的特性，传统物理分离、免疫共沉淀等方法难以有效保留其互作信息。同时，其内部结构的复杂性和拥挤性，使得基于可扩散探针的邻近标记方法易产生较多假阳性结果。带有光交联基团的非天然氨基酸能在蛋白质翻译过程中被整合进感兴趣的蛋白质（POI）中，并在光激发后产生固定在蛋白质上的活性中间体，从而实现高度时空特异性的交联，广泛应用于捕获活细胞中的直接和瞬时PPI。其中，可代谢插入的光交联氨基酸作为天然氨基酸的类似物，能够通过细胞代谢通路全局性引入整个蛋白质组中相应氨基酸位点，实现多点插入，在捕获LLPS体系中的多价相互作用时具有优势。 2024年11月5日，北京大学陈鹏教授课题组在 Nature Chemistry 期刊发表了题为：Spatiotemporal protein interactome profiling through condensation-enhanced photocrosslinking 的研究论文。 该研究报道了一种时空特异的蛋白质光交联技术——DenseMAP（Condensation-enhanced Spatial-directed Metabolic Incorporation-Assisted Photo-crosslinking），通过将空间特异的蛋白质标记与凝聚增强的光交联相结合，对活细胞中特定生物分子凝集体的蛋白质相互作用进行了高效捕捉和鉴定。 首先，研究团队利用生物信息学手段分析了20种氨基酸在生物分子凝集体蛋白质组中的分布，发现赖氨酸丰度较高，且由于残基带正电，较多地分布于蛋白质互作界面，基于此他们开发出δ位带有光交联基团双吖丙啶（diazirine）的新型光交联赖氨酸（δ-photo-lysine，δK*）。与此前报道的γ位带有光交联基团的光交联赖氨酸相比，新型探针更易合成，光交联的效率更高。他们还验证了插入δK*后对细胞正常生理状态和蛋白质功能的影响很小，之后又通过1,6己二醇处理以及相分离功能失活突变体的交联实验证明，基于纳米级的交联半径以及多位点插入的特性，δK*在拥挤的相分离体系中具有更高的交联效率，实现了一种“凝聚增强”的效应。 DenseMAP策略及其生物学应用示意图 由于生物分子凝集体有着复杂的组织结构，其中的蛋白质也可大致分为两类，分别是“客户”蛋白（client protein）和“骨架”蛋白（scaffold protein），前者一般同时分布在多个亚细胞区域，仅在特定条件下进入动态形成的生物分子凝集体中；而后者则介导了特定生物分子凝集体的形成，往往具有单一的空间定位，其多价相互作用普遍覆盖了其中的“客户”蛋白。因此，对于不同类型的蛋白质，研究团队设计了两种DenseMAP的应用路线。 对于同时具有多个定位的“客户”蛋白（client），研究团队通过偶联生物素连接酶（BirA）的特定生物分子凝集体的“骨架”蛋白对其进行标记，与DenseMAP的凝聚增强交联相互配合，能够特异地捕捉位于感兴趣的生物分子凝集体内的POI的互作蛋白质组。根据这一思路，利用G3BP1-BirA结合δK*，捕捉和鉴定了应激颗粒（SG）中SARS-CoV-2的核衣壳（N）蛋白的互作蛋白质组，并解析了宿主激酶介导的磷酸化对N蛋白在SG中与许多功能性RNA结合蛋白互作的促进作用，进一步阐释了病毒与宿主相互拮抗过程的机制。他们也鉴定和比较了m6A修饰的“阅读器”YTHDF1、YTHDF2在SG中的互作蛋白质组，验证了此前对于二者在SG形成过程中具有不同性质的结论。 另一方面，由于许多生物分子凝集体展现出复杂的“亚区域”（Subcompartment）结构，往往每一个亚区域通过特定的“骨架”蛋白来维持结构并招募“客户”蛋白，进而实现物质的动态交换。然而，由于结构上的紧密交织，这些亚区域的蛋白质组很难通过传统的物理分离或邻近标记手段精确地区分与鉴定。值得注意的是，对于单一定位的“骨架”蛋白，无需额外引入标记手段即可获得其在特定亚区域的直接互作蛋白，这类蛋白质因其对区域内“客户”蛋白的广泛直接相互作用，使得其互作组实际上可以看作是该亚区域蛋白质组的一个缩影。基于此，利用DenseMAP策略来获取“骨架”蛋白的互作组，为深入研究生物分子凝集体中特定亚区域的性质提供了新的视角。 此前研究表明，核仁最外侧的颗粒组分（granular component，GC）层在压力条件下能够储存细胞核内的错误折叠蛋白质，从而保护细胞维持正常功能，在蛋白质质量控制（PQC）中扮演着关键角色。为了进一步探索这一机制，研究团队运用DenseMAP策略，捕捉并鉴定了在正常生理条件以及热刺激条件下，GC层中“骨架”蛋白NPM1的互作组，发现热刺激后，GC亚层蛋白质组中SUMO化修饰的蛋白质含量显著增加。经过一系列生物学验证，研究团队揭示了SUMO化修饰，尤其是SUMO2/3，能够通过其序列上的R-motif与NPM1相结合，进而招募那些本身不含有R-motif的错误折叠蛋白进入核仁进行暂时储存。这一发现不仅为核仁在PQC中的机制提供了重要的补充，同时也为理解渐冻症（ALS）等神经退行性疾病的发病机理，以及探索潜在的治疗策略提供了新的线索和依据。 综上所述，该研究巧妙地融合了空间特异的蛋白质标记技术与凝聚增强的代谢光交联探针，开发了一种高效且普适的时空特异光交联技术——DenseMAP。这一策略能够精准地捕捉和鉴定活细胞中特定生物分子凝集体内蛋白质的相互作用，为深入阐释无膜细胞器的功能机制、动态变化过程和疾病相关机理提供了强有力的工具。 北京大学化学与分子工程学院陈鹏教授为本文的通讯作者，博士毕业生李可心、谢肖、高瑞为论文共同第一作者。此外，北京大学基础医学院李婷婷教授及博士毕业生陈钊铭在生物信息学方面做出了重要贡献。 论文链接： https://www.nature.com/articles/s41557-024-01663-1 设置星标，不错过精彩推文 开放转载 欢迎转发到朋友圈和微信群  微信加群  为促进前沿研究的传播和交流，我们组建了多个专业交流群，长按下方二维码，即可添加小编微信进群，由于申请人数较多，添加微信时请备注：学校/专业/姓名，如果是PI/教授，还请注明。 点在看，传递你的品味