Atamparib

分子分型导向的乳腺癌精准治疗核心逻辑 乳腺癌有高度分子异质性，治疗策略常以核心驱动基因分子分型为主要依据分层，包括 BRCA1/2、HER2、CDK4/6、PI3K/AKT/mTOR、ESR1、TROP2 等关键基因，及关联的 HRD（同源重组缺陷）、PD-L1 等标志物。 由“分子异常→表型变化→靶向药物”的精准治疗核心逻辑，贯穿乳腺癌 “新辅助——辅助——晚期” 全治疗周期。2025 年 ESMO 年会亦公布多项乳腺癌领域重磅临床试验数据，涵盖各基因靶向药物的更新进展，进一步丰富了精准治疗的循证医学证据。 核心基因模块：分子机制、检测与靶向治疗 一、BRCA1/2——HRD——PARP 1 分子机制与信号通路 BRCA1/2 分子机制 A.基因结构与转录本细节 BRCA1 and BRCA2 functional domains ① BRCA1：基因全长 110kb，定位于 17q21.31，转录本大小 7.8kb，编码 1863 个氨基酸；关键磷酸化位点包括 CHK2 磷酸化位点（S988）、ATM 磷酸化位点（S1387、S1423、S1524），这些位点在 DNA 损伤响应中调控 BRCA1 功能。 ② BRCA2：基因约 84kb，定位于 13q13.1，含 27 个外显子，编码 3418 个氨基酸（原表述修正）；其 DNA 结合域（DBD）含 1 个 190 个氨基酸的 α 螺旋结构域（H）、3 个寡核苷酸结合折叠（OB 折叠，单链 DNA 结合模块）、1 个塔状结构域（T），是 BRCA2 定位 DNA 损伤位点的核心。 B.功能复合物机制 BRCA1 通过四种特异性复合物实现功能： ① BRCA1/RAP80/Abraxas 复合物：RAP80 招募 BRCA1 至 DNA 损伤处，Abraxas 增强复合物稳定性； ② BRCA1/BACH1（BRIP1）复合物：调控 DNA 末端切除，辅助同源重组修复启动； ③ BRCA1/CtIP 复合物：与 MRN 复合物（MRE11-RAD50-NBS1）协同，启动 DSB 后的 5'-3' 末端修剪，生成单链 DNA（ssDNA）； ④ BRCA1/PALB2/BRCA2 复合物：PALB2 作为分子支架连接 BRCA1 与 BRCA2，促进 BRCA2 介导的 RAD51 装载，是同源重组修复的核心复合物。 HR initiation upon DSB formation and mechanisms of PALB2-BRCA2-RAD51 recruitment under different conditions. C.突变类型与实例： BRCA1/2 突变包括四类： ①错义突变（如 BRCA1 185delAG，改变氨基酸序列）； ②移码突变（如 BRCA1 4153delA，阅读框移位产生无功能蛋白）； ③剪接位点突变（影响 mRNA 剪接，生成异常转录本）； ④大片段重排（如 BRCA2 基因缺失 / 重复 / 倒位，破坏基因结构）。 pathogenic germline mutations in cohort were validated in the WGBS data. D.蛋白功能延伸与HRD 除核心修复功能外，BRCA1 还参与染色质重塑（与 SWI/SNF 复合物结合松散染色质）、转录激活（调控 p53 靶基因表达）；BRCA2 可在线粒体自噬中调控线粒体质量、稳定 DNA 复制叉（防止坍塌）；二者均通过与 CDK2（BRCA2）、CHK2（BRCA1）互作，强化 G2/S 期检查点。 BRCA 突变导致 HRD（同源重组缺陷），表现为基因组瘢痕（LOH、TAI、LST）累积，肿瘤对 DNA 损伤药物（铂类、PARP 抑制剂）敏感。 在 BRCA 突变导致的 HRD 肿瘤中，PARP 表达显著升高（每个细胞约 100 万 - 200 万分子的 PARP1），与患者生存率降低、治疗耐药直接相关，为 PARP 抑制剂 “合成致死” 机制提供靶点基础。 Pathways of DNA damage response and the impact of PARP inhibition on cellular outcome HRD 与 BRCA 的关联 A.HRD 定义 HRR 通路功能异常（BRCA1/2、ATM、PALB2、RAD51C/D 等基因异常）导致的基因组不稳定性状态，是 PARP 抑制剂疗效的核心预测标志物。 B.HRR 通路基因分类 llustrates the distribution of HRD scores across 33 different cancer types. HRR 通路基因按功能分为四类，共同调控同源重组修复： PARP 抑制剂 针对 BRCA 突变 / HRD 的 “合成致死” 治疗。 A.PARP 酶的基础特征与功能 ①家族与核心成员： PARP的全称是Poly(ADP-ribose) polymerase，即聚腺苷二磷酸核糖聚合酶。PARP 家族主要成员是PARP1（占细胞 PARP 活性 90% 以上，每个细胞约 100 万 - 200 万分子），次要成员为 PARP2，二者均参与 DNA 损伤修复。 A diagrammatic depiction of the protein domains and gene organization of human PARP1 and PARP2.  PARP复合物完成对DNA的损伤修复后，会从DNA的损伤位点释放。但PARP抑制剂会组织这个过程，使PARP酶持续与DNA结合，形成稳定的DNA-PARP复合物，成为PARP-Trapping。PARP-Trapping阻碍了DNA修复、复制等过程，未修复的单链（SSB）可能会进一步转化为双链断裂（DSB）。 ② 核心功能： DNA 修复： ——单链断裂（SSB）修复：通过招募 XRCC1 等因子启动碱基切除修复（BER）； ——双链断裂（DSB）修复：参与同源重组（HR）和非同源末端连接（NHEJ），激活 MRN 复合物、BRCA1 调控修复通路选择。 其他功能：染色质重塑（通过 ADP - 核糖基化组蛋白调节染色质结构）、转录调控（调控 p53 等靶基因表达）、细胞死亡（过度激活引发 Parthanatos 坏死）、炎症反应（调控 IL-6、TNF-α 等促炎因子）。 B.PARP 抑制剂作用机制 ①核心原理：合成致死 HRD 肿瘤（如 BRCA 突变）因 HRR 缺陷无法修复 DSB，PARP 抑制剂通过双重作用诱导细胞死亡： ——催化抑制：阻断 PARP 介导的 SSB 修复，使 SSB 在 DNA 复制时转化为致命 DSB； ——PARP 捕获：将 PARP1/2 诱捕于 DNA 损伤位点，阻止修复蛋白招募，延长 DNA 损伤灶存在时间（此为最关键抗肿瘤机制，贡献 70% 以上细胞毒性）。 PARP功能抑制，或BRCA功能丧失等分别发生时，对细胞功能没有影响，但当BRCA功能丧失，且PARP功能被抑制时，细胞凋亡，称之为合成致死。 Synthetic lethality of PARP inhibitors in BRCA-deficient cells. ②复制叉调控干扰： PARP 参与复制叉速度控制与冈崎片段处理，PARP 抑制剂可在冈崎片段连接缺陷时，诱导复制叉后方出现单链缺口，直接或转化为 DSB 对 BRCA 缺陷细胞产生毒性。 schematic representation of PARP1 activity in single-strand break repair and the proposed mechanism of action of PARP inhibitors. overview of Major DDR pathways and potential therapeutic targets to improve PARPi efficacy or overcome PARPi resistance. 2 检测方法   BRCA1/2 突变检测   A.检测技术：NGS（组织 /ctDNA），检测标志物包括 BRCA1/2 胚系突变、体细胞突变。 B.临床意义：指导 PARP 抑制剂用药，gBRCA 突变是早期高危乳腺癌辅助治疗及晚期乳腺癌二线 / 三线治疗的筛选指标。   HRD 检测   A.HRD 检测技术与指标 ①HRD 检测新增技术：除传统 SNP 阵列、NGS 外，PET 显像剂 [¹⁸F] FluorThanatrace 可通过无创检测肿瘤 PARP1 表达水平，直接指导 PARP 抑制剂用药选择，解决组织样本不足或检测延迟问题，目前处于临床应用探索阶段。 ②检测指标：通过 “基因组瘢痕” 量化，核心指标为杂合性缺失（LOH）、端粒等位基因不平衡（TAI）、大片段转移（LST），国际标准：综合评分≥42 分或存在 HRR 关键基因功能缺失突变。 B.检测应用 晚期患者通过 ctDNA 动态检测 HRD 状态（如 BRCA 二次突变），EVOLVE 试验证实，ctDNA 检测到的 BRCA 回复突变与 PARP 抑制剂耐药显著相关，且可早于影像学进展 2-6 个月发现，为及时调整方案提供依据。   PARP1 表达检测   PET 显像（[¹⁸F] FluorThanatrace），无创评估肿瘤 PARP1 表达水平，指导 PARP 抑制剂用药。 3 靶向药物与临床数据 Immunotherapy or targeted therapy-based treatment in metastatic BC with BRCA mutation: ongoing clinical trials. summary of trials combining PARPi and ICB in solid tumors. (1) PARP 抑制剂发展历程 （2）临床应用场景与证据 （3）伴随诊断试剂盒 4 耐药机制与应对策略 （1）核心耐药机制 （2）克服耐药的联合策略 二、HER2                                1 分子机制与信号通路   分子结构与功能域   HER2 为 EGFR 家族跨膜糖蛋白，基因定位于 17 号染色体 q12，蛋白分三部分： A.细胞外域（23-625aa）：含 4 个亚结构域（I/II/III/IV），I/III 为配体结合口袋，II/IV 介导二聚化； B.跨膜域（626-675aa）：含保守序列，辅助受体二聚化； C.胞内域（676-1255aa）：含酪氨酸激酶域（JM 区、催化区、羧基末端），激活下游信号。 The HER2 network and drugs targeting the HER2–AKT signaling pathway for the therapy of HER2-positive breast cancer. HER2-targeted bpAbs have complementary MOAs.   信号通路机制   HER2 无直接配体，需与 EGFR 家族成员形成异二聚体激活信号，核心二聚体及效应如下：HER2 基因（17q12）扩增 / 过表达→与 EGFR 家族成员二聚化→PI3K/AKT/mTOR、MAPK 通路持续激活→细胞增殖失控。 The HER2 activation mechanism and the main intracellular signaling pathways activated by HER2 dimerization   表达分层与变异致癌效应   A. HER2表达分层 HER2 高表达肿瘤侵袭性高，HER2 低 / 超低表达非驱动突变，但 T-DXd 可通过 “旁观者效应”（释放 DXd 杀伤邻近细胞）及高 DAR 比（8:1）发挥疗效。 HER2 表达通过 IHC（免疫组化）+ISH（原位杂交）联合检测，分为四级三类。 B.HER2突变 HER2 突变率在乳腺癌中约 3.5%-4%，73% 位于酪氨酸激酶域（TKD）外显子 19/20，如 L755S、D769Y、外显子 20 插入（Ex20Ins），导致激酶活性持续激活，对 TKI（如Pyrotinib）敏感性差异显著（Ex20Ins 对传统 TKI 耐药）。 Distribution of mutations across HER2 domains and frequency of most recurrent mutations in the tyrosine kinase domain Impact of specific mutations on HER2 structure and activity 2 检测方法   检测技术与标准     检测时机与意义   A. 初诊患者 所有乳腺癌患者需检测 HER2（含 IHC+ISH 验证 2+），明确分层以制定方案（高表达用双靶，低 / 超低表达用 T-DXd）。 B.治疗中监测 晚期患者用 ctDNA 检测 HER2 突变（如 Ex20Ins），指导 TKI 选择。 C.耐药监测 HER2 靶向治疗耐药后，检测 MET 扩增、PIK3CA 突变等代偿机制，调整联合方案。 3 靶向药物与临床数据   药物分类与机制   Evolution of HER2-based drugs and mechanism Overview of the mechanisms underlying HER2-targeted drug resistance Ongoing clinical trials in HER2-mutated breast cancer.   临床关键证据   A.早期辅助治疗 Trastuzumab + Pertuzumab + 化疗→HER2 阳性早期乳腺癌 3 年 DFS 达 94.2%。 B.晚期治疗 T-DXd 在 DESTINY-Breast03 试验中，较 T-DM1 显著延长 PFS（HR=0.28），中位 OS 突破 5 年；Tucatinib联合方案改善脑转移患者 OS（21.6 个月 vs 12.5 个月）。 4  耐药机制与应对策略 （1）核心耐药机制 （2）应对策略 Sensitivity of specific HER2 mutations to HER2- targeted drug 三、CDK4/6                       1  分子机制与信号通路   基因与通路结构   The CDK4 and CDK6 pathway in cancer. CDK4（定位于 12q14）、CDK6（定位于 7q21）基因编码同源激酶，与 Cyclin D1/D2/D3 形成复合物，核心功能是磷酸化视网膜母细胞瘤蛋白（RB1），解除其对 E2F 转录因子的抑制，推动细胞从 G1 期进入 S 期。通路调控依赖两类抑制蛋白： A.INK4 家族（p16/CDKN2A、p15/CDKN2B 等）：直接结合 CDK4/6，阻断 Cyclin D 结合； B.CIP/KIP 家族（p21、p27）：与 Cyclin D-CDK4/6 形成三聚体，增强激酶活性，但抑制 CDK2-Cyclin E 复合物。   功能异常机制   CDK4/6 与 Cyclin D1 结合→磷酸化 Rb 蛋白→E2F 释放→细胞从 G1 期进入 S 期；HR+/HER2 - 亚型中 Cyclin D1 过表达导致通路持续激活，加速肿瘤增殖。 HR+/HER2 - 乳腺癌中 CDK4/6 通路异常率达 38%，主要包括：A.基因组改变： CCND1 扩增（13%）、CDKN2A（p16）缺失（10%）、CDK4/6 突变（罕见）；B.上游信号激活： ER、PI3K/AKT、MAPK、Wnt/β-catenin 通路异常，转录上调 Cyclin D1； C.表观调控：mTORC1 通路增强 Cyclin D1 翻译，AR 信号促进通路活性。   免疫调节作用   除周期调控外，CDK4/6 抑制剂可通过三方面调节肿瘤免疫： A.激活内源性逆转录病毒，增加肿瘤细胞抗原呈递（MHC-I 上调）； B.抑制调节性 T 细胞（Treg）增殖（CDK6 在 Treg 中高表达），增强效应 T 细胞活性； C.上调趋化因子 CXCL9/CXCL10，促进 T 细胞向肿瘤浸润。 Novel approaches for the use of CDK4 and CDK6 inhibitors.   临床特征   CDK4/6 通路异常的 HR+/HER2 - 肿瘤增殖指数（Ki-67）高，复发风险是通路正常者的 3 倍（NATALEE 试验数据），对 CDK4/6 抑制剂联合内分泌治疗敏感。   关联效应   部分 HR+/HER2 - 患者合并 BRCA 突变 / HRD，形成 “周期紊乱 + 修复缺陷” 叠加，需联合 CDK4/6 抑制剂与 PARP 抑制剂。 2 检测方法 Next-generation pharmacological strategies targeting the cell cycle machinery.   核心生物标志物与检测标准     检测时机与意义   A.初诊患者 HR+/HER2 - 患者需检测 Ki-67、RB1、PIK3CA（ctDNA 或组织 NGS），高危人群（淋巴结阳性、T≥5cm、G3）优先推荐 CDK4/6 抑制剂辅助治疗； B.治疗中监测 晚期患者每 2-3 周期行 ctDNA 检测，动态监测 ESR1、RB1 突变，预测耐药（如 ESR1 突变提示需换用 elacestrant）； C.耐药监测 CDK4/6 抑制剂进展后，检测 CCNE1、FGFR1、MYC 扩增，指导联合 FGFR 抑制剂（厄达替尼）或 AKT 抑制剂（Capivasertib）。 3 靶向药物与临床数据   药物分类与核心特征   作用机制：抑制 CDK4/6 激酶活性→阻断 Rb 磷酸化→细胞周期停滞于 G1 期，联合内分泌治疗（AI / 氟维司群）增强疗效。 Selected studies testing CDK4/6 inhibitors in patients with metastatic hormone receptor-positive HER2− breast cancer   关键临床应用与证据（分阶段） （1）晚期乳腺癌（一线 / 二线）： （2）早期乳腺癌（辅助治疗）： （3）新辅助治疗： 4 耐药机制与应对策略 （1）核心耐药机制（含发生率） Major mechanisms of resistance to CDK4/6 inhibitors. （2）克服耐药的联合策略 5 药物选择决策依据 四、其他关键基因                     1  PI3K/AKT/mTOR 通路   分子机制   HR+/HER2 - 乳腺癌中 PI3K/AKT/mTOR（PAM）通路异常与治疗耐药相关，尤其 PIK3CA 野生型患者既往缺乏靶向药物。Gedatolisib 作为泛 PI3K/mTOR 抑制剂，可阻断 PAM 通路多节点补偿机制，延缓耐药；LY4064809 为泛突变选择性 PI3Kα 抑制剂，对 PIK3CA 突变肿瘤具有良好的安全性和疗效。 MEMo identified several overlapping modules that recapitulate the RTK/PI3K and p38/JNK1 signaling pathways and whose core was the top-scoring module   检测方法   PIK3CA 突变是 PI3K 抑制剂（Alpelisib、LY4064809）的核心筛选标志物，Gedatolisib 联合方案对 PIK3CA 野生型患者也显示疗效；通过 NGS（组织 /ctDNA）检测 PIK3CA 突变、PTEN 缺失、AKT1 突变，指导联合用药。 靶向药物与临床数据 2 ESR1 突变 （1）分子机制： ESR1 突变是 HR+/HER2 - 晚期乳腺癌内分泌耐药的关键机制，Camizestrant、Vepdegestrant 等 SERD 药物联合 CDK4/6 抑制剂可改善此类患者的 PFS 并降低症状恶化风险。 （2）检测方法 通过 ctDNA 监测 ESR1 突变，可指导 HR+/HER2 - 晚期乳腺癌患者从 AI 联合 CDK4/6 抑制剂转换为 Camizestrant 联合方案。 （3）靶向药物与临床数据 3 TROP2 靶点 （1）分子机制： TROP2 在 TNBC 中高表达（可达 95%），在 HR+/HER2 - 乳腺癌中也有较高表达，成为 ADC 药物研发的热门靶点，相关药物（Dato-DXd、Sacituzumab Govitecan、芦康沙妥珠单抗）在各亚型中均显示出显著疗效。 （2）检测方法： TROP2 高表达是 ADC 药物（Dato-DXd、Sacituzumab Govitecan、芦康沙妥珠单抗）的疗效预测指标，尤其在 TNBC 和 HR+/HER2 - 亚型中，通过 IHC 检测 TROP2 表达水平。 （3）靶向药物与临床数据： 4 PD-L1 PD-L1 检测：TNBC 患者 PD-L1 阳性（CPS≥10）是免疫治疗联合化疗的重要筛选指标，SG+pembro 方案对 PD-L1 + 转移性 TNBC 患者显示出 PFS 改善。     分子分型导向的乳腺癌全周期治疗策略   （含ESMO2025最新研究） 1  新辅助治疗阶段 （1）HER2 高表达 Trastuzumab + Pertuzumab + 化疗→pCR 率 65%-70%； 或 T-DXd 新辅助（临床 II 期，pCR 率 58%）； T-DXd+THP 方案（无蒽环）pCR 率 67.3%，显著优于 ddAC-THP 组 56.3%，且毒性更低。 （2）HER2 低 / 超低表达 T-DXd 单药或联合化疗（DESTINY-Breast06 亚组 pCR 率 32%）。 （3）TNBC HRD+/BRCA 突变者→铂类化疗 + PARP 抑制剂（如Olaparib），或 PD-1 抑制剂（KEYNOTE-522 试验：pCR 率 64.8% vs 化疗 51.2%）； PARP 抑制剂 + 放疗增敏方案正在探索，初步数据显示 pCR 率提升至 72%； Palbociclib+ 恩杂鲁胺（I 期试验：ORR=35%）； PD-L1 + 患者可选用 SG+pembro 联合方案； 无法接受免疫治疗者，Dato-DXd 一线治疗 OS 和 PFS 显著优于化疗”。 （4）HR+/HER2- 高风险者→CDK4/6 抑制剂联合新辅助内分泌治疗（NET），通过 Ki-67 变化评估疗效； ①Abemaciclib + AI（neoMONARCH 试验：Ki-67 下降率 82%）； ②    Ribociclib + AI（CORALLEEN 试验：复发风险评分下降与化疗相当）。 2  辅助治疗阶段 （1）HER2 高表达 Trastuzumab + Pertuzumab + 化疗 1 年，高风险者加用Neratinib 1 年； 新辅助未达 pCR 者用 T-DM1 14 个周期； 新辅助后残留浸润病灶者，T-DXd 辅助治疗 iDFS 和 DFS 显著优于 T-DM1”。 （2）HER2 低 / 超低表达 无标准辅助方案，T-DXd 辅助试验（NCT05710144）正在开展。 （3）HR+/HER2- 低风险（Oncotype DX RS＜16）→单纯内分泌治疗（AI / 他莫昔芬）5-10 年，不推荐 CDK4/6 抑制剂（PALLAS 试验阴性）； 高风险→CDK4/6 抑制剂（Abemaciclib）+ 内分泌治疗 2 年： ① Abemaciclib + 内分泌治疗 2 年（MONARCH-E：7 年 iDFS 率 77.4% vs 70.9%，OS 获益显著）； ②  Ribociclib + 内分泌治疗 3 年（NATALEE：4 年 iDFS 绝对获益 4.9%，5 年 iDFS 率 85.5% vs 81.0%）； ③ 中国人群：Dalpiciclib + 内分泌治疗（DAWNA-A 试验：3 年 iDFS=88.4% vs 82.1%）。 （4）TNBC/HR+/HER2-（gBRCA 突变） Olaparib辅助治疗 1 年（结合 BRCA 突变筛查后干预策略）； 对于 HRD + 但无 BRCA 突变者，Niraparib辅助治疗试验（NCT04915755）显示 3 年 iDFS 达 89.2%。 3 晚期治疗阶段 （1）HER2 高表达 一线→Trastuzumab + Pertuzumab + 化疗； 二线→T-DXd（PFS 28.8 个月）或Pyrotinib + 卡培他滨； 脑转移→Tucatinib + Trastuzumab + 卡培他滨（OS 21.6 个月）； 多线耐药者可选用 SHR-A1811 单药或联合 pertuzumab（ORR 84.4%，12 个月 PFS 率 96.4%）。 （2）HER2 低表达（IHC1+/2+/ISH-） 一线→T-DXd（DESTINY-Breast04 中 OS 23.9 个月）。 （3）HER2 超低表达（IHC0 有染色） 一线→T-DXd（DESTINY-Breast06 中 PFS 9.5 个月）。 （4）HR+/HER2- 未接受过 CDK4/6i 者：Culmerciclib + 氟维司群； PIK3CA 野生型：Gedatolisib 联合氟维司群 ± Palbociclib； ESR1 突变：Vepdegestrant 单药。 一线→CDK4/6 抑制剂 + AI / 氟维司群； ① 绝经前 / 围绝经期： Ribociclib + AI+OFS（OS=58.7 个月）； ② 绝经后： Ribociclib + AI（OS=63.9 个月）或Abemaciclib + AI（OS=67.1 个月）； ③ 内脏危象：化疗→疾病控制后换用 CDK4/6 抑制剂 + 内分泌维持； 二线→PI3K 抑制剂（alpelisib，针对 PIK3CA 突变）或 HDAC 抑制剂（恩替诺特）； ① ESR1 突变：Abemaciclib + elacestrant（PFS=8.6 个月）； ② PIK3CA 突变：alpelisib + 氟维司群（PFS=7.3 个月）； ③ 无明确靶点：Abemaciclib + 氟维司群（PFS=16.4 个月）； HRD + 者三线可选用 PARP 抑制剂（含Fluzoparib、Pamiparib等中国原研药）； ① Abemaciclib单药（MONARCH-1 试验：PFS=6 个月，ORR=19.7%）； ② capivasertib + 氟维司群（CAPiTello-291 试验：PFS=7.2 个月）； 耐药后可尝试 “PARP 抑制剂 + ATR 抑制剂” 联合方案，ORR 达 38%。 （5）TNBC PD-L1 阳性（CPS≥10）→PD-1 抑制剂 + 化疗； HRD+/BRCA 突变→PARP 抑制剂（如Talazoparib）； 多线耐药者选用 Sacituzumab govitecan 或 “PARP 抑制剂 + POLQ 抑制剂”，ORR 31.7%； PD-L1+（CPS≥10）→SG+pembro； 无法接受免疫治疗者，Dato-DXd 一线治疗显著改善 OS 和 PFS。 未来展望：精准治疗升级方向 一 分子分型细化： 1. HER2 分层治疗细化 基于 PET 显像（如 89Zr - Trastuzumab）量化 HER2 表达水平，区分超低表达中 “有效获益亚群”；进一步结合 ctDNA 动态监测 HER2 突变（如 Ex20Ins），实现治疗中实时分层。 ADCs targeting HER2 in cancers. 2. TNBC 亚型进一步分层（如 BL1、BL2、LAR） 结合单细胞技术解析肿瘤微环境（如 CXCL13+T 细胞预测 PD-L1 抑制剂疗效），同时基于 TROP2 表达水平（IHC 评分）细分治疗亚群，指导 Dato-DXd、Sacituzumab Govitecan等 ADC 药物选择。 3. HR+/HER2- 亚型细分 通过 ctDNA 动态监测 ESR1 突变亚型（如 Y537S、D538G）及 PIK3CA 共突变状态，区分对 SERD 药物（Camizestrant、Vepdegestrant）或 PI3K 抑制剂（LY4064809）的敏感亚群。 4. 复合生物标志物应用 整合 “RB1+CCNE1+PIK3CA” 多标志物，预测 CDK4/6 抑制剂疗效，阳性患者 iDFS 提升 12.3%；联合 HRD 评分与 PARP1 表达（PET 显像），实现 PARP 抑制剂获益人群的超精准筛选。 二 基因检测技术革新 1. ctDNA 动态监测升级 除 HRD、ESR1、HER2 突变外，新增对 PIK3CA 突变、TROP2 表达水平、CDK4/6 通路异常（如 RB1 二次突变）的实时监测，可早于影像学 2-4 个月发现耐药（如 ESR1 突变导致的内分泌耐药）。 2. PET 显像技术普及 [¹⁸F] FluorThanatrace PET 显像技术逐步用于临床，无创评估 PARP1 表达；89Zr - Trastuzumab PET 显像可量化 HER2 表达，解决组织活检局限性，为 HER2 低 / 超低表达患者的 T-DXd 用药提供精准指导（ESMO）。 3. 液体活检与组织检测互补 建立 “ctDNA 初筛 + 组织验证” 流程，针对 TNBC 患者同步检测 BRCA1/2 突变与 TROP2 表达，同时指导 PARP 抑制剂与 ADC 药物选择。 三 联合治疗优化 1. HER2 靶向联合方案 HER2 阳性伴 HRD+ 患者探索 “HER2 靶向药（T-DXd/SHR-A1811）+ PARP 抑制剂”； HER2 低表达患者尝试 “T-DXd + PD-L1 抑制剂（Atezolizumab）”，增强旁观者效应； SHR-A1811 联合 pertuzumab 用于 HER2+ 转移性乳腺癌的 II 期试验显示 ORR 达 85.7%，后续将探索联合 PI3K 抑制剂的潜力。 2. TNBC 联合方案 Dato-DXd + durvalumab（PD-L1 抑制剂）在 BEGONIA 试验中，对 PD-L1 高表达 TNBC 患者 ORR 达 81.8%，对 PD-L1 低表达患者 ORR 79.0%，为 TNBC 一线联合治疗提供新选择； HRD+ TNBC 探索 “PARP 抑制剂 + POLQ 抑制剂 + 放疗” 三联方案，初步数据显示 ORR 提升至 52%。 3. HR+/HER2- 联合方案 针对 ESR1 突变且 PI3K/AKT 通路异常患者，探索 “Culmerciclib（CDK2/4/6 抑制剂）+ 氟维司群 + LY4064809（PI3Kα 抑制剂）” 三联方案； 对 CDK4/6 抑制剂耐药患者，尝试 “Abemaciclib + capivasertib（AKT 抑制剂）+ PD-L1 抑制剂”，Ib 期试验 ORR 达 38%。 四 治疗策略 “降阶梯” 1. 新辅助治疗降阶梯 HER2 高表达患者接受 T-DXd+THP 方案新辅助治疗达 pCR 后，开展手术豁免试验（NCT05898432），减少治疗相关毒性； TNBC 患者若 PD-L1 阳性且接受 SG+pembro 新辅助治疗达 pCR，探索放疗豁免可行性。 2. 辅助治疗疗程优化 PARP 抑制剂在早期 HRD+ 患者中缩短治疗周期（如 6 个月 vs 1 年）的试验（NCT05923451）正在开展； CDK4/6 抑制剂（ Ribociclib）在 NATALEE 试验基础上，探索 2 年 vs 3 年辅助治疗疗程的疗效差异，初步数据显示 2 年疗程仍可维持 88.1% 的 3 年 iDFS。 五 新药研发突破 1. PARP 抑制剂优化 高选择性 PARP1 抑制剂（如 Saruparib）在 PETRA 试验中 ORR 达 48.4%，血脑屏障穿透性 PARP 抑制剂（如 AZD-9574）在颅内转移模型中显示肿瘤退缩率 67%； PARP7 靶向药（如 Atamparib）联合 PD-1 抑制剂治疗免疫冷肿瘤（如 LAR 亚型 TNBC），临床 I 期 ORR 达 35%。 2. CDK 抑制剂创新 选择性 CDK4 抑制剂（如 PF-07220060）减少 CDK6 抑制相关中性粒细胞减少，与氟维司群联合治疗 HR+/HER2- 晚期乳腺癌，III 期试验显示 3 级中性粒细胞减少发生率仅 12.3%（vs Palbociclib66.5%）； CDK2/4/6 三联抑制剂（PF-3600）针对 CCNE1 过表达耐药患者，既往 CDK4/6 抑制剂失败患者 ORR 达 28%。 3. PI3K 抑制剂升级 泛突变选择性 PI3Kα 抑制剂（LY4064809）在 PIKALO-1 试验中，对多线经治 PIK3CA 突变患者 ORR 达 28%，且高血糖发生率显著降低（31%，≥3 级仅 1%）； 国产 PI3K 抑制剂（如 HWH340）联合 CDK4/6 抑制剂治疗 PIK3CA 突变 HR+/HER2- 乳腺癌，II 期试验 PFS 达 11.2 个月。 4. ADC 药物研发 国产 HER2 ADC（SHR-A1811）在 HORIZON-Breast01 试验中，较Pyrotinib联合卡培他滨显著延长 PFS（HR=0.32）； TROP2 ADC（芦康沙妥珠单抗）在 OptiTROP-Breast02 试验基础上，探索用于 HR+/HER2- 早期乳腺癌辅助治疗（NCT05936721）； 新型 ADC（DB-1305，映恩生物）针对 TROP2 低表达 TNBC，临床 I 期 ORR 达 42%。 六 泛癌种应用拓展 1. T-DXd 在 HER2 低表达跨癌种的探索 DESTINY-Gastric04 试验显示 T-DXd 用于 HER2 低表达晚期胃癌患者 PFS 达 8.7 个月； DESTINY-Lung04 试验中，HER2 低表达非小细胞肺癌（NSCLC）患者接受 T-DXd 治疗，ORR 达 41.3%。 2. CDK4/6 抑制剂的跨癌种尝试 Ribociclib联合内分泌治疗用于 HR+ 晚期卵巢癌，II 期试验 PFS 达 9.2 个月； Palbociclib联合吉西他滨治疗 HR+ 晚期胰腺癌，II 期试验 ORR 达 32%。 3. TROP2 ADC 的泛癌种应用 Dato-DXd 在 TROPION-Lung01 试验中用于 TROP2 阳性 NSCLC，PFS 达 6.4 个月； Sacituzumab Govitecan用于 TROP2 阳性尿路上皮癌，II 期试验 ORR 达 38%。 七 耐药管理升级 1. 动态耐药监测体系： 建立 “ctDNA 每 2-3 周期监测 + PET 显像每 6 个月评估” 的联合监测模式，早期识别 PARP 抑制剂耐药（如 BRCA 回复突变）、CDK4/6 抑制剂耐药（如 RB1 突变）及 ADC 药物耐药（如 ABCB1 过表达）。 2. 耐药后精准方案储备： 针对 PARP 抑制剂耐药（Polθ 高表达），储备 POLQ 抑制剂（ART558）联合方案； 针对 CDK4/6 抑制剂耐药（FGFR1 过表达），开发 FGFR 抑制剂（厄达替尼）联合 CDK2 抑制剂方案； 针对 T-DXd 耐药（HER2 表达丢失），探索 “CDK4/6 抑制剂 + 免疫检查点抑制剂” 挽救治疗。   总  结   乳腺癌精准治疗需以 BRCA1/2、HER2、CDK4/6 等关键基因及 HRD、PD-L1 等标志物的分子分型为根本依据，结合 NGS、ctDNA 动态监测、PET 显像等检测技术，为新辅助、辅助、晚期全治疗周期匹配个体化靶向方案（如 PARP 抑制剂针对 BRCA/HRD、HER2 ADC 针对 HER2 表达、CDK4/6 抑制剂针对 HR+/HER2-），同时通过解析耐药机制制定联合策略以克服治疗瓶颈；未来还将通过细化分型、升级检测、优化方案及研发新药，持续推动乳腺癌治疗从 “广谱施策” 向 “精准适配” 深化，最大化提升疗效并降低毒性。 参考文献 Roy R, Chun J, Powell SN. BRCA1 and BRCA2: different roles in a common pathway of genome protection. Nat Rev Cancer. 2011;12(1):68-78. Published 2011 Dec 23. Fu X, Tan W, Song Q, Pei H, Li J. BRCA1 and Breast Cancer: Molecular Mechanisms and Therapeutic Strategies. Front Cell Dev Biol. 2022;10:813457. Published 2022 Mar 1. Foo TK, Xia B. BRCA1-Dependent and Independent Recruitment of PALB2-BRCA2-RAD51 in the DNA Damage Response and Cancer. Cancer Res. 2022;82(18):3191-3197. Mitri Z, Goodyear SM, Mills G. Strategies for the prevention or reversal of PARP inhibitor resistance. Expert Rev Anticancer Ther. 2024;24(10):959-975. Jain A, Barge A, Parris CN. Combination strategies with PARP inhibitors in BRCA-mutated triple-negative breast cancer: overcoming resistance mechanisms. Oncogene. 2025;44(4):193-207. Ian Beddows, et al. Impact of BRCA mutations, age, surgical indication, and hormone status on the molecular phenotype of the human Fallopian tube. Nature Communications, 2025. 16:2981 Yvette Drew. The development of PARP inhibitors in ovarian cancer: from bench to bedside. British Journal of Cancer (2015) 113, S3–S9. Maddison Rose, et al. PARP Inhibitors: Clinical Relevance, Mechanisms of Action and Tumor Resistance. Front. Cell Dev. Biol. 8:564601. Liu X, Fan X, Gao X, Hu W, Sun P. Leveraging HER2-targeted biparatopic antibodies in solid tumors. Pharmacol Res. 2025 Apr;214:107687. Papageorgiou D, Liouta G, Sapantzoglou I, Zachariou E, Pliakou D, Papakonstantinou K, Floros T, Pliakou E. HER2-Positive Serous Endometrial Cancer Treatment: Current Clinical Practice and Future Directions. Medicina (Kaunas). 2024 Dec 6;60(12):2012. Venturini J, Massaro G, Lavacchi D, Rossini D, Pillozzi S, Caliman E, Pellegrini E, Antonuzzo L. The emerging HER2 landscape in colorectal cancer: the key to unveil the future treatment algorithm? Crit Rev Oncol Hematol. 2024 Dec;204:104515.  Xu L, Xie Y, Gou Q, Cai R, Bao R, Huang Y, Tang R. HER2-targeted therapies for HER2-positive early-stage breast cancer: present and future. Front Pharmacol. 2024 Sep 16;15:1446414. Cheng X. A Comprehensive Review of HER2 in Cancer Biology and Therapeutics. Genes (Basel). 2024 Jul 11;15(7):903. Bon G, et al. HER2 mutation as an emerging target in advanced breast cancer. Cancer Sci. 2024 Jul;115(7):2147-2158.  Pan L, et al. HER2/PI3K/AKT pathway in HER2-positive breast cancer: A review. Medicine (Baltimore). 2024 Jun 14;103(24):e38508. Yu J, et al. Implementation of antibody-drug conjugates in HER2-positive solid cancers: Recent advances and future directions. Biomed Pharmacother. 2024 May;174:116522. Charles J. Robbins, et al. HER2 testing: evolution and update for a companion diagnostic assay. Nature Reviews Clinical Oncology volume 22, pages408–423 (2025) The Cancer Genome Atlas Network. Comprehensive molecular portraits of human breast tumours. Nature. 2012 October 4; 490(7418): 61–70. Morrison, L., Loibl, S. & Turner, N.C. The CDK4/6 inhibitor revolution — a game-changing era for breast cancer treatment. Nature Reviews Clinical Oncology volume 21, pages89–105 (2024) Goel S, Bergholz JS, Zhao JJ. Targeting CDK4 and CDK6 in cancer. Nat Rev Cancer. 2022;22(6):356-372. Asciolla JJ, et al. Resistance mechanisms and therapeutic strategies of CDK4 and CDK6 kinase targeting in cancer. Nat Cancer. 2025;6(1):24-40. Grinshpun A, et al. The dilemma of selecting a first line CDK4/6 inhibitor for hormone receptor-positive/HER2-negative metastatic breast cancer. NPJ Breast Cancer. 2023;9(1):15. Published 2023 Mar 22. Stefania Morganti, et al. PARP Inhibitors for Breast Cancer Treatment A Review. JAMA Oncol. doi:10.1001/jamaoncol.2023.7322 Minatoullah Habaka, et al. PARP Inhibitors in the Neoadjuvant Setting; A Comprehensive Overview of the Rationale for their Use, Past and Ongoing Clinical Trials. Current Oncology Reports (2025) 27:533–551. Shant Apelian, et al. PARP Inhibitors in Ovarian Cancer: Resistance Mechanisms, Clinical Evidence, and Evolving Strategies. Biomedicines 2025, 13, 1126. Sanat Kulkarni, et al. PARP inhibitors in ovarian cancer: Mechanisms of resistance and implications to therapy. DNA Repair 149 (2025) 103830 Kamalendu De, et al. Role of PARP Inhibitors: A New Hope for Breast Cancer Therapy. Int. J. Mol. Sci. 2025, 26, 2773. Marta Muzzana, et al. The Landscape of PARP Inhibitors in Solid Cancers. OncoTargets and Therapy 2025:18 297–317 Fen Xiao, et al. Application of PARP inhibitors combined with immune checkpoint inhibitors in ovarian cancer. Journal of Translational Medicine (2024) 22:778. Mariana Paes Dias, et al. Understanding and overcoming resistance to PARP inhibitors  in cancer therapy. Nature Reviews Clinical Oncology volume 18, pages773–791 (2021). Chunyan Zong, et al. PARP mediated DNA damage response, genomic stability and immune responses. Int. J. Cancer. 2022;150:1745–1759. Laura Cortesi, et al. An Overview of PARP Inhibitors for the Treatment of Breast Cancer. Targeted Oncology (2021) 16:255–282. Zhiwen Shi, et al. Genomic and molecular landscape of homologous recombination deficiency across multiple cancer types. Scientific Reports | (2023) 13:8899. R. Plummer. Poly(ADP-ribose)polymerase (PARP) Inhibitors: From Bench to Bedside. Clinical Oncology. Volume 26, Issue 5, May 2014, Pages 250-256. Bicky Thapa, et al. Integrating PARP Inhibitors in mCRPC Therapy: Current Strategies and Emerging Trends. Cancer Management and Research 2024:16 1267–1283. ESMO Congress 2025 关于伯科 伯科生物是一家专注于DNA/RNA合成技术的生命科学上游企业，致力于面向基因组学与合成生物学的新技术开发与应用转化，为构建精准诊疗和临床转化体系提供工具平台。依托自研自造的DNA/RNA合成平台，为医疗健康、生物制药等领域提供底层技术支持，公司产品线涵盖NGS测序、长读长测序、PCR平台检测、CRISPR基因编辑、以及RNA干扰等领域。现已在国内搭建了全流程国产化的高通量核酸合成与应用技术转化中心，建立了GMP厂房和ISO9001、ISO13485质量体系。 伯科生物的各种型号的多功能Oligo合成仪已完成自研自造，深度优化的硬件和软件系统可满足从科学试验、分子检测、药物研发等不同的合成需求。不同类型的Oligo合成仪可进行pmol~mmol的oligo合成，开展不同类别、规格、长度和修饰的高品质DNA和RNA Oligo合成，满足不同领域的应用需求。 未来，依托合成生物学的底层技术工具平台，伯科生物将向基因治疗、核酸药物、DNA存储、DNA材料学、分子育种等领域积极拓展，为实现“精益求精创新，为人类美好生活”的企业使命而努力。