MRX-34

摘要：可用基因组数据的快速扩展继续对生物医学科学和医学产生巨大影响。实现基因发现的临床潜力需要开发能够特异性调节疾病相关基因表达的治疗方法。基于RNA的药物，包括短干扰RNA和反义寡核苷酸，是这类新型生物制剂特别有前途的例子。二十多年来，研究人员一直在努力克服在治疗环境中利用此类RNA的主要挑战，包括细胞内递送、稳定性和免疫反应激活。随着第一批RNA药物获得FDA批准并进一步进入临床试验的最后阶段，这项研究终于开始结出硕果。此外，最近出现的CRISPR（一种RNA引导的基因编辑技术）以及体外转录信使RNA递送的新进展，引发了RNA治疗学领域的重大扩张。在这篇综述中讨论了基于RNA的疗法临床转化的挑战，重点是递送技术的最新进展，并概述了基于RNA的药物在调节基因/蛋白质表达和基因组编辑中的应用，这些应用目前正在实验室和临床中研究。【NO.1】RNA的递送材料和化学修饰1.递送材料      广义上讲，RNA递送可以由病毒和非病毒载体介导。对于病毒RNA递送，人们对改造腺相关病毒来携带核酸货物非常感兴趣——然而，本节将主要关注非病毒材料的开发（表1）。在非病毒RNA递送载体中，纳米颗粒可能是研究最多的。RNA的纳米颗粒包封在物理上保护核酸不被降解，并且根据特定的化学性质，可以帮助细胞摄取和内体逃逸。鉴于聚合物具有高度的化学柔韧性，聚合物是纳米颗粒递送的常用材料。通常，阳离子聚合物用于将带负电荷的RNA静电冷凝成纳米颗粒（图1a）。这些带正电的基团通常由在生理pH值（pKa~7.4）下质子化的胺组成，被认为会导致离子不平衡，从而导致内体破裂，尽管这种所谓的“质子海绵”假说尚未在各种材料中得到严格证明。无论聚合物帮助RNA递送的确切机制如何，市售的含胺聚合物是最早用于核酸递送的非病毒材料之一。聚-L-赖氨酸、聚酰胺胺和聚乙烯亚胺等合成聚合物，以及壳聚糖等天然聚合物都已应用于RNA递送，并取得了不同程度的成功。此外，一些研究人员已经合成了专门用于核酸递送的聚合物。特别是聚（β-氨基酯），由于其易于合成和生物降解性而在DNA递送中得到了广泛的应用，但也已被证明能够影响短干扰RNA（siRNA）和mRNA的递送。表1临床相关RNA递送平台比较备注：ASO 反义寡核苷酸、siRNA 短干扰 RNA图1：RNA的常见递送方式。a描绘了包含RNA和阳离子聚合物的聚合物纳米颗粒的示意图。b示意图描述了含有RNA、阳离子/可电离脂质和纳米颗粒制剂中常用的其他疏水部分（如胆固醇）的脂质纳米颗粒。c目前正在临床试验中的N-乙酰半乳糖胺（GalNAc）和RNA之间的三级偶联物的化学结构。d用于递送核酸的碱基、糖和接头修饰示例（修饰的化学成分以蓝色突出显示）)      脂质和脂质样材料是第二大类基于纳米颗粒的RNA递送载体。与聚合物一样，阳离子脂质通常用于静电结合核酸。然而，许多实验室已经开始使用可电离脂质，这些脂质仅在酸性pH值下带正电荷。与在生理pH值下保持阳离子的颗粒相比，这种可电离行为被认为可以通过帮助内体逃逸和降低毒性来提高疗效。脂质还能够自组装成有序的纳米颗粒结构，称为脂质体（图1b），由与RNA的静电相互作用和疏水相互作用共同驱动。除了可电离/阳离子脂质外，还通过添加其他疏水部分（如胆固醇和PEG-脂质）来优化脂质纳米颗粒（LNP）的配方，可增强纳米颗粒的稳定性，并可以显着提高RNA递送的功效。然而，与聚合物类似，研究发现可电离脂质结构是影响纳米颗粒功效的主要因素。因此，一个实验室率先使用半自动高通量合成方法创建用于RNA递送的化学多样化脂质和脂质样材料文库，从而产生能够在体内全身递送后将多种RNA类型递送到肝脏和肺高效纳米颗粒。     作为纳米颗粒的替代方案，一种概念上更直接且化学上定义明确的递送方式是将生物活性配体直接与RNA偶联，使其能够进入目标细胞。也许这种技术在临床上最先进的例子是N-乙酰半乳糖胺（GalNAc；Fig.1C）靶向肝细胞上的唾液酸糖蛋白受体，靶向siRNA与许多静脉给药的纳米颗粒不同，GalNAc偶联物通常皮下给药，并且已显示出快速进入体循环并靶向肝脏的能力。过去已经探索了其他偶联物，如胆固醇、维生素E、抗体和细胞穿透肽，尽管除了专门的三天线GalNAc-siRNA偶联物外，没有其他偶联物获得任何临床关注（表2），这表明需要在偶联物的设计上做更多的工作，以高效递送核酸。表2目前涉及RNA递送的临床试验备注：ASO 反义寡核苷酸、mRNA 信使 RNA、siRNA 短干扰 RNA、ND 未披露2.RNA修饰     对RNA本身进行化学修饰对RNA本身进行化学修饰同样重要，这会赋予RNA降解抗性，并使免疫系统无法识别它们。偶联物递送系统（在注射后立即使RNA暴露）和纳米颗粒递送系统（必须在某个时候将RNA暴露给细胞内免疫受体）都是如此。RNA可以通过对核糖（特别重要的是2′位置）、磷酸盐键和单个碱基的化学改变来修饰（图.1d）。通过纳米颗粒递送的RNA（稍后讨论）通常也被修饰，以避免被内体表达的模式识别受体识别[。除了少数例外，修饰的RNA是临床试验的金标准（表2）。RNA可以被修饰并仍然保持其效力的程度在很大程度上取决于核酸的性质及其作用机制。例如，依赖于相对强大的RNA诱导沉默复合物（RISC）的siRNA等短RNA，通常可以被严重修饰。相比之下，必须由核糖体有效翻译的大mRNA对修饰更敏感，并利用天然存在的RNA修饰，如假尿嘧啶和5-甲基胞苷取代。事实上，最近的研究表明，在某些情况下，mRNA的碱基修饰实际上会降低效力，而siRNA中的化学修饰几乎无处不在地应用于体内使用【NO.2】基于RNA的基因/蛋白质调控的应用1.蛋白质下调—siRNA、ASO和microRNA     简单来说，疾病相关蛋白可以通过以下两种方式之一改变：上调或下调。在Fire及其同事发现siRNA后，使用RNA选择性下调蛋白质经历了范式转变。短干扰RNA的长度通常为21-23个碱基对，可以通过RISC选择性地结合和降解互补的mRNA（图2）。经过近二十年的研究，基于siRNA的疗法代表了临床上最先进的RNA药物平台之一。特别是Alnylam Pharmaceuticals，有几种siRNA药物正在进行临床试验。他们最先进的药物，也是最先进的siRNA疗法之一patisiran，是一种含有针对突变转甲状腺素蛋白的siRNA的LNP，用于治疗转甲状腺素蛋白淀粉样变性。Patisiran目前处于III期临床试验中在II期试验中显示出显著的剂量依赖性敲低，不良事件最小，其他公司也投资了基于脂质复合物的siRNA药物的使用（表2）。然而，Alnylam和其他人越来越多地报道了GalNAc偶联物技术的重大进展（表2）。尽管Alnylam最近决定停止开发revusiran，这是一种GalNAc-siRNA偶联药物，也可以治疗转甲状腺素蛋白淀粉样变性但该公司还有几种GalNAc偶联物正在其管道中，这些偶联物利用了一种更新的“增强稳定化学”，可以解决导致Revusiran从临床试验中删除的问题].令人惊讶的是，目前的一些临床试验使用裸露的、尽管是化学修饰的siRNA。几乎所有这些裸siRNA都是局部递送的（表2），与全身递送相关的RNA降解和全身免疫激活的风险相比，降低了RNA降解和全身免疫激活的风险。裸siRNA的一个有趣用途是Silenseed的siG12DLODER，它将靶向KRAS癌蛋白的siRNA封装在可植入和可降解的聚合物基质中，用于治疗胰腺癌。然而，人们担心，在某些情况下，这种治疗的积极作用可能是通过诱导非特异性和免疫机制介导的，例如siRNA与toll样受体的结合。图2：使用RNA调节基因和蛋白质表达。一旦递送到细胞中，RNA大分子可以利用不同的细胞内机制来控制基因和蛋白质表达。（I）反义寡核苷酸（ASO）与靶mRNA杂交可通过诱导RNaseH核酸内切酶活性导致基因表达的特异性抑制，从而裂解mRNA-ASO异源双链体。（II）短干扰RNA（siRNA）被RNA诱导的沉默复合物（RISC）识别，该复合物在siRNA的反义链的引导下特异性结合和切割靶标mRNA。（III）体外转录的mRNA利用宿主细胞的蛋白质合成机制将编码的遗传信息翻译成蛋白质。核糖体亚基与帽和poly（A）结合蛋白一起被募集到mRNA中，形成翻译起始复合物。（IV）在CRISPR-Cas9系统中，单向导RNA（sgRNA）与编码Cas9DNA核酸内切酶的mRNA共同递送允许双链DNA的位点特异性切割，导致靶基因及其产物的敲除。CRISPR，成簇的规则间隔短回文重复序列。     尽管siRNA在临床试验中占有重要地位，但它并不是唯一，甚至不是第一个在临床阶段研究蛋白质敲低的RNA药物。临床试验中最早广泛使用的RNA药物是反义寡核苷酸（ASO）。与siRNA一样，ASO旨在通过与靶mRNA的Watson-Crick碱基配对来阻断蛋白质翻译，并且可以对其进行修饰以提高稳定性。然而，ASO通过多种机制抑制蛋白质的产生，例如空间阻断核糖体附着或引发RNase-H激活。它们还可以促进外显子跳跃（一种省略有缺陷外显子的RNA剪接形式），从而可以删除蛋白质内的错误序列，在某些情况下，甚至会导致蛋白质上调，这可用于治疗某些基因受到抑制的疾病。ASO的另一个用途是它们能够在不使用转染试剂的情况下进入细胞，尽管这种摄取并不总是导致治疗作用。四种ASO已获得临床批准，所有这些ASO都经过化学修饰，无需递送载体即可使用，是迄今为止唯一获得FDA批准的用于蛋白质调节的RNA药物。最近的一种是Spinraza（nusinersen），鞘内注射用于治疗脊髓性肌萎缩症。它与静脉输注的ASO药物Exondys51（eteplirsen）一起治疗杜氏肌营养不良症，玻璃体内注射的ASO用于治疗眼巨细胞病毒的Vitravene（fomivirsen），以及皮下注射的Kynamro（mipomersen），以编码载脂蛋白B的mRNA为靶点，用于治疗高胆固醇血症。临床试验中仍有几种ASO，其中大多数是在没有载体的情况下交付的（表2）。特别令人感兴趣的是IonisPharmaceuticals利用类似于Alnylam开发的GalNAc-ASO偶联物来递送siRNA的研究。此类批准和临床研究的乐观情绪也促使研究人员继续研究ASO治疗肌萎缩侧索硬化症（ALS）和脊髓小脑性共济失调等疾病。      一种新兴的、尽管临床上不太先进的基于RNA的蛋白质敲低平台是microRNA（miRNA）。内源性microRNA是非编码RNA，是多种细胞通路的关键调节因子，在疾病中经常下调。因此，以治疗方式递送的外源性microRNA或microRNA模拟物可用于同时敲低多种蛋白质，这在癌症等疾病中特别有用，因为这些疾病很少具有单一疾病相关靶点。还值得注意的是，一种罕见的microRNA亚群被认为可以增强蛋白质的产生，并且使用ASO靶向基因抑制的microRNA也可用于增加蛋白质的产生。目前大多数涉及microRNA的临床试验都是筛选以研究microRNA与某些疾病的关系，尽管有几项正在进行的利用microRNA递送的动物研究。例如，使用LNP治疗结直肠癌小鼠模型，以及使用聚合物纳米颗粒将microRNA输送到心脏以治疗纤维化。第一个进入临床试验的microRNA模拟疗法是MRX-34，这是一种来自MirnaTherapeutics的脂质体封装的microRNA模拟物，旨在治疗多种癌症。然而，在报告了几起免疫相关严重不良事件后，该公司于2017年初终止了这项研究。不良事件具有免疫学特征这一事实进一步凸显了RNA修饰对临床应用的重要性，因为这种修饰仍然是逃避RNA药物免疫检测的最重要手段之一。然而，由于miRNA诱导的基因调控的复杂性，特别是miRNA模拟物的化学修饰可能具有挑战性。2.蛋白过表达—mRNA     疾病相关蛋白的表达可以通过质粒DNA（pDNA）或信使RNA（mRNA）的细胞内递送来实现。应用DNA或mRNA作为蛋白质中间体，可在宿主细胞和组织内表达几乎任何所需的蛋白质。这种方法可以解决基于蛋白质的药物面临的配方和递送挑战，尤其是那些针对细胞内靶点的药物。特别是，与pDNA相比，基于mRNA的疗法具有多项优势，包括快速和瞬时蛋白质生产、无插入诱变风险以及凭借mRNA细胞质活性实现更高的非病毒递送功效（图2）。自1990年代首次临床前研究以来，mRNA技术已经取得了长足的发展，现在有可能彻底改变疫苗接种、蛋白质替代疗法和遗传病的治疗，因此在科学界和生物技术行业中获得了相当大的兴趣。     在最大化mRNA的翻译和稳定性、防止其免疫刺激活性和体内递送技术的发展方面取得重大进展，促进了mRNA疗法的递送，其中一些将在下面讨论。5'帽和3'poly（A）尾是成熟真核mRNA有效翻译和延长半衰期的主要贡献者。将ARCA（抗反向帽类似物）和120-150bp的poly（A）尾等帽类似物掺入体外转录（IVT）mRNA中，显著提高了编码蛋白质的表达和mRNA稳定性。新型帽类似物，如1,2-二硫代二磷酸修饰的帽，对RNA脱帽复合物具有抵抗力，可以进一步提高RNA翻译的效率。用同义的频繁出现的密码子替换mRNA蛋白编码序列中的稀有密码子，即所谓的密码子优化，也有助于提高蛋白质合成的功效，并限制稀有密码子对mRNA的不稳定，从而防止转录本的加速降解。同样，设计3'和5'非翻译区（UTR），其中包含负责募集RNA结合蛋白（RBP）和miRNA的序列，可以提高蛋白质产物的水平。有趣的是，UTR可以被有意修饰以编码调节元件（例如，K转基因基序和miRNA结合位点），从而提供了一种以细胞特异性方式控制RNA表达的方法。前面讨论的一些RNA碱基修饰，如N1-甲基假尿苷，不仅有助于掩盖mRNA免疫刺激活性，而且还被证明可以通过增强翻译起始来增加mRNA翻译。除了观察到的对蛋白质翻译的影响外，碱基修饰和密码子优化还会影响mRNA的二级结构，进而影响其翻译。了解mRNA折叠结构的重要性和预测能力可能有助于mRNA疗法的工程设计——然而，目前可用预测工具的准确性有限。尽管针对其他类型的RNA药物研究了大量载体，但mRNA分子明显大于前面讨论的siRNA（~14kDa）和ASO（4-10kDa），这给mRNA治疗的递送带来了额外的挑战。将大的带电mRNA容纳到纳米颗粒中及其有效的细胞内释放已被证明需要对现有配方进行微调，并开发具有更高效力的新一代生物材料。      目前正在探索的mRNA治疗应用包括针对癌症和传染病的疫苗接种、蛋白质替代疗法和基因编辑。表2中提供了正在进行的涉及mRNA的临床试验的完整列表。mRNA疫苗正处于临床开发的最高级阶段，紧随竞争性DNA和基于蛋白质的技术的脚步。合成mRNA疫苗可以同时递送多种抗原，与其他系统相比，生产更快、更容易且成本低，从而能够更快速地应对新出现的病原体。此外，裸mRNA产生的免疫反应可能有利于疫苗接种。目前正在临床试验中使用离体mRNA转染的树突状细胞（DC）对传染病进行免疫，并已证明具有良好的安全性和诱导抗原特异性T细胞反应的能力。      另一种RNA疫苗接种方法是使用自扩增mRNA复制子，这些复制子已被开发用于延长抗原表达的持续时间和幅度以及增强免疫反应。在最近的一项研究中，将复制子疫苗配制成由反复支化的树状大分子（树状）分子组成的纳米颗粒，已经产生了针对广谱致命病原体的保护性免疫，包括寨卡病毒、埃博拉病毒和流感病毒。传统的修饰mRNA也被探索用于疫苗接种。最近有报道，编码寨卡病毒前膜糖蛋白和包膜糖蛋白的脂质纳米颗粒包膜mRNA在皮内给药后可在小鼠和非人灵长类动物中引发针对病毒的强大且持久的中和抗体反应。此外，在全身施用mRNA-LNPs后，编码广泛中和抗体的修饰mRNA在肝脏中的表达保护了人源化小鼠免受HIV-1攻击。在癌症免疫疗法成功的推动下，癌症mRNA疫苗经历了加速开发和临床转化。临床试验中测试的大多数方法采用过继转移转染编码肿瘤特异性抗原（tumor-specificantigen，TSA）的mRNA，以及用表达嵌合抗原受体（chimericantigenreceptor，CAR）或TSA的mRNA对T细胞进行免疫调节。此外，目前正在临床上研究直接皮内和全身施用编码肿瘤特异性抗原的LNP配制的mRNA以诱导T细胞免疫反应。      相比之下，大多数基于mRNA的蛋白质替代疗法仍处于临床前开发阶段，涉及补充缺陷或异常蛋白质以及通过表达外源性蛋白质来调节细胞行为。RNA-蛋白质疗法的体内疗效已得到证实，可用于多种疾病。由于将RNA递送到肝组织的成熟且有效的方法，大多数研究优先靶向肝脏。在血友病B小鼠中，单次静脉注射载有hFIXmRNA的LNP后，达到治疗相关的人FIX（hFIX）蛋白量，并维持生理活性4-9天。同样，用编码促红细胞生成素（Epo）的mRNA配制的LNP已被证明可在大型动物（包括猪和非人灵长类动物）中引发全身生理反应。mRNA的治疗作用也已在其他组织中得到证实。表面活性剂蛋白B（SP-B）mRNA的肺递送可保护小鼠免受呼吸衰竭，而心肌注射编码人血管内皮生长因子A（VEGF-A）的RNAiMAX配制的mRNA可改善小鼠心肌梗死后的心脏再生。基于这一概念，阿斯利康与Moderna合作，从2017年1月开始启动了VEGFmRNA本地递送的I期临床试验。临床前研究表明，基于mRNA的蛋白质疗法对分泌蛋白靶标和细胞内蛋白靶标均具有转化潜力。然而，慢性病的治疗可能会带来更高的毒性风险，这与维持蛋白质治疗水平所需的重复mRNA-LNP给药有关。使用mRNA递送基因编辑工具可以解决这一挑战。3.基因编辑      上面讨论的基于RNA的技术构成了瞬时抑制或过表达基因表达的强大手段。相比之下，治疗性基因编辑需要通过在细胞基因组中引入位点特异性修饰来替换或改变基因表达，包括纠正有害突变或引入保护性突变。虽然目前大多数基因编辑工作都集中在治疗由单个基因的有害变化引起的单基因疾病上，但基因编辑和递送工具的扩展使得复杂多基因疾病的治疗，如心血管疾病和抗病毒疗法，以及编辑表观基因组更加可行。RNA引导的DNA核酸内切酶的发现，如与CRISPR（成簇的规则间隔短回文重复序列）相关的Cas9，这些元件构成了原核适应性免疫系统，为科学家们提供了一个易于使用和高效的平台来改变基因组信息。所谓的CRISPR-Cas系统依赖于单个向导RNA（sgRNA）和相应的DNA靶位点之间的Watson-Crick碱基配对，后跟一个独特的前间隔区相邻基序（PAM），这是一个结合Cas9和切割靶序列所需的3-5个核苷酸的DNA序列，以便将双链断裂（DSB）引入DNA分子。DSB可由细胞使用非同源末端连接（NHEJ）和同源定向修复（HDR）进行修复。NHEJ导致随机插入和缺失（“插入缺失”），导致永久性基因敲除，而HDR发生在存在与DSB位点两侧区域同源的DNA模板的情况下，导致修复模板中编码的所需变化掺入基因组。DSB的组合也可用于通过使用不同的sgRNA来编辑多个基因座。      迄今为止，使用最广泛和表征最明确的基因编辑技术是CRISPR-Cas9系统，其效应结构域源自化脓性链球菌（SpCas9）。最近，在杜氏肌营养不良症（mdx）、遗传性I型酪氨酸血症（fah）和致死性代谢性肝病（OCT）的动物模型中，将spCas9直接递送到患病细胞中，用于纠正基因突变，并通过敲除PCSK9来降低具有人源化肝脏的嵌合小鼠的血液胆固醇。使用spCas9进行离体编辑已应用于人类造血干细胞，以纠正由编码β-珠蛋白的基因突变引起的镰状细胞贫血，以及耗尽CCR5表达的T细胞以触发抗HIV保护或耗尽PD-1以促进抗癌治疗。尽管取得了积极的结果，但这些研究揭示了CRISPR-Cas9系统与临床翻译相关的局限性，包括（1）DNA靶向特异性不完善导致脱靶效应，（2）使用HDR进行基因组编辑的效率低，以及（3）使用病毒和非病毒方法难以递送CRISPR-Cas9成分。       通过将优化设计和向导RNA的合成相结合，可以提高CRISPR-Cas9的DNA靶向特异性。特别是，短于20个核苷酸且包含5'错配的sgRNA显示出较少的脱靶效应，而化学合成的在5'和3'末端带有碱基修饰的sgRNA显示出更高的靶向功效。此外，根据spCas9-gRNA复合物与DNA之间的相互作用，将特异性突变引入spCas9中，从而改造了改进的spCas9类型，例如高保真spCas9-HF1或增强特异性的eSpCas9。最近发现了新的RNA引导的核酸酶，如来自酸氨基球菌属的Cpf1（AsCpf1），具有编辑哺乳动物细胞基因组的能力。Cpf1核酸酶mRNA（~1.3kb）明显小于Cas9，具有不同的PAM要求和比spCas9更高的DNA特异性，这使得它对临床使用具有吸引力。也可以通过在有利于瞬时表达而不是持久表达的条件下减少spCas9的细胞存在来限制脱靶效应，这可以通过优化递送方法来实现。      通过HDR获得更好的基因组编辑效率对于解决需要高水平治疗产品的遗传疾病是必要的，特别是当编辑后的细胞在适应性方面没有表现出积极的变化，并且随着时间的推移而超过患病的细胞时。通过设计一种不对称的单链DNA模板，该模板与非靶DNA链退火，可以显著提高HDR校正的效率，这是第一个从Cas9-DNA复合物中释放的DNA链。此外，许多研究报道了将CRISPR-Cas9与NHEJ的小分子抑制剂（如DNA连接酶IV或DNA依赖性蛋白激酶抑制剂）联合使用具有更好的HDR疗效。或者，可以通过参与同源重组的关键蛋白质激动剂（如Rad51）来增强HDR。最近，已经开发了其他使用CRISPR-Cas9进行基因编辑的方法，称为同源非依赖性靶向整合（HITI），它利用NHEJ修复机制进行基因敲入。HITI供体模板旨在确保仅在以正确方向插入时才能确保稳健的基因整合，否则目标DNA会经历Cas9的额外切割。与HDR依赖性编辑相比，该方法已证明转基因插入的体外功效更高，但到目前为止，当在体内进行时，它仅达到敲入效率的3-10%。     由于基本成分的数量，基于CRISPR的药物的细胞内递送是治疗性基因组编辑面临的最重大挑战之一。CRISPR-Cas9组分可以DNA、RNA、RNA-蛋白复合物（RNP）或这些大分子的组合形式递送。这些大分子无法自发地进入细胞，依赖于使用递送载体（如病毒载体、纳米颗粒）或物理和机械递送方法（如核转染、细胞挤压或脂质），这些方法利用电场、机械力或阳离子脂质暂时破坏细胞膜。后者主要适用于治疗性的离体基因编辑，而病毒载体和纳米颗粒主要用于体内基因治疗。      已经使用慢病毒、腺病毒和腺相关病毒（AAV）探索了CRISPR-Cas9的病毒递送。AAV最广泛地用于基因治疗临床试验，因为它们能够转导不同的细胞类型和组织，并且基因组整合的风险低，免疫原性低。然而，AAV的包装容量有限（~4.5kb）使得无法将CRISPR-spCas9的所有组分（包括sgRNA和供体DNA模板）容纳到单个AAV中。值得注意的是，在小鼠中观察到宿主对AAV-CRISPR-Cas9的免疫反应，Cas9免疫原性引起，并可能因其长时间的表达而加剧。      与病毒系统互补，正在开发大量包含各种生物相容性材料的纳米颗粒，用于递送CRISPR-Cas9。与它们在蛋白质调节中的应用一样，用于基因编辑的纳米颗粒已经显示出对核酸货物的高负载能力，能够通过主动靶向和配方来改变有效载荷的生物分布和药代动力学，以及制造简单，对其物理化学参数（如大小/形状和有效载荷释放的动力学）的高度控制。由于mRNA表达的瞬时性质，基于纳米颗粒的CRISPR-Cas成分mRNA递送在治疗上具有吸引力，没有基因组整合和mRNA细胞质活性的风险，与pDNA相比，减轻了克服核屏障的需要（图2）。迄今为止，纳米颗粒介导的spCas9mRNA递送已与编码sgRNA和修复模板的AAV联合使用，以诱导成年动物遗传性酪氨酸血症中Fah基因的修复。单次施用后，肝细胞的校正效率为>6%，远高于先前报道的相同疾病的流体动力学注射pDNA（0.4%）。同样，编码锌指核酸酶的mRNA复合成壳聚糖包被的纳米颗粒，与表达AAV6的供体模板联合使用，导致SP-B缺陷小鼠编码表面活性剂蛋白B的基因得到纠正，并延长了它们的生存期。有趣的是，mRNA纳米颗粒与病毒的组合优于单独的AAV，在肺细胞中达到~9%的HDR率。最近，一项研究描述了两性离子氨基脂质的合成和开发，该脂质由磺基甜菜碱头部基团和具有疏水尾部的多胺接头组成，用于配制能够在体内同时递送Cas9mRNA和sgLoxP的纳米颗粒，以诱导LSL-TdTomato小鼠肝脏、肾脏和肺中氟化tdTomato的表达。这项研究表明，纳米颗粒-RNA平台有可能将CRISPR-Cas9的多个组分容纳到单个载体中，并且可能扩展到还包括供体模板。脂质和多肽纳米颗粒也被用于递送Cas9和sgRNA的RNA-蛋白质复合物，这是确保Cas9瞬时细胞存在的另一种有前途的策略，可以显著降低脱靶效应。然而，体内RNP递送的治疗潜力尚未得到证明。【NO.3】结论      经过二十多年的发展，RNA疗法已成为临床现实。用于合成siRNA、ASO和mRNA的设计和化学试剂已经发展到能够实现足够稳定性和免疫逃逸，同时允许维持疗效和特异性的程度。由于在高通量筛选技术的帮助下发现了有效且具有生物相容性的材料，递送技术也取得了长足的进步。尽管最近在撤回Alnylams的siRNA-GalNac偶联物和Curevac的首个mRNA疫苗方面遇到了挫折，但基于核酸的疗法仍在继续取得进展，FDA批准了四种ASO，并且更多具有改进化学修饰的RNA候选药物进入人体试验的晚期阶段（表2)。此外，围绕CRISPR-Cas基因组编辑及其对生物医学科学的变革性影响的巨大兴奋推动了基于RNA的递送方法的发展，以促进CRISPR-Cas技术的临床转化。宾夕法尼亚大学在美国进行的第一项人体试验将使用CRISPR-Cas9离体敲除从癌症患者身上分离的T细胞中编码PD1和T细胞受体α/β的基因，用于癌症治疗。领先的CRISPR生物技术公司，如CRISPR Therapeutics、Editas Medicine和Intellia Therapeutics，在其产品组合中都有处于临床前开发阶段的项目，并且可能很快就会遵循临床路线。这些公司主要关注影响肝脏、肺和造血功能的疾病，同时利用AAV、LNP和RNP开发离体和体内递送方法。这凸显了安全性和递送仍然是基于RNA的药物的主要挑战，尤其是RNA-蛋白质和CRISPR-Cas疗法，并将塑造即将到来的临床试验的范围。毫无疑问，RNA疗法领域目前正在经历重大扩张，将RNA药物用于个性化医疗和免疫疗法以及解决遗传、感染和慢性疾病的潜力将确保RNA疗法在未来几年的持续发展。识别微信二维码，添加抗体圈小编，符合条件者即可加入抗体圈微信群！请注明：姓名+研究方向！本公众号所有转载文章系出于传递更多信息之目的，且明确注明来源和作者，不希望被转载的媒体或个人可与我们联系(cbplib@163.com)，我们将立即进行删除处理。所有文章仅代表作者观点，不代表本站立场。