在生物医药的广阔版图中,核酸药物尤其是小干扰RNA(siRNA)因其能够从基因层面沉默特定致病基因,被誉为“第三代药物”的代表。然而,siRNA分子本身在体内容易被核酸酶降解,且因其带负电、分子量较大而难以跨越细胞膜屏障,因此,高效、安全的递送系统是决定siRNA能否成功转化为临床疗法的关键。脂质纳米颗粒(Lipid Nanoparticles, LNP)是目前最成熟的递送平台之一,已上市的Patisiran(治疗遗传性转甲状腺素蛋白淀粉样变性)便是采用LNP递送siRNA的典范。然而,传统LNP存在靶向性不足、易富集于肝脏等缺点,用于关节炎这类非肝脏的局部疾病时效果有限。
本文将介绍羿美诚健(上海)生物医药有限公司的一项研究,为我们带来了一种全新的脂质组合物设计思路。该研究团队通过对LNP各组分的摩尔比例进行精细优化,特别是降低了可电离阳离子脂质的占比(从常见的50%降至37-49%),并显著增加了PEG脂质(DMG-PEG2000)的占比(从1.5%提升至2-6%)。在经典的胶原蛋白诱导的大鼠关节炎(CIA)模型中,无论是通过关节腔注射还是皮下注射给药,装载治疗性siRNA的优化LNP均展现出了优于商业化配比的治疗效果,显著降低了关节炎评分和足体积,且安全性良好。本文将从研究背景、脂质组合物设计、详细的制备与表征过程,以及多组动物实验数据出发,为您全面解析这项技术的突破之处。
一、 研究背景:自身免疫疾病的治疗困境与核酸递送挑战
类风湿性关节炎是一种常见的自身免疫性疾病,其发病机制涉及遗传与环境因素的复杂交互。传统治疗药物主要包括抗风湿类药物、非甾体抗炎药和皮质类固醇,这些药物虽然能在一定程度上缓解炎症,但多为对症治疗,难以从根本上阻断疾病进展,且长期使用副作用明显。近年来,以依那西普为代表的生物靶向药物(TNF-α抑制剂等)显著提高了疗效,但它们也伴随着一系列问题:长期使用可能增加恶性肿瘤风险、可能诱发“新的自身免疫性疾病”、给药方式不便(通常需要皮下或静脉注射,频率较高)、患者依从性有限以及治疗成本高昂。
正是在此背景下,siRNA疗法进入了研究者的视野。通过RNA干扰机制,siRNA能够特异性地沉默与关节炎发病相关的基因(如促炎细胞因子、信号转导分子等),实现真正的精准治疗,具有高效性、序列特异性和瞬时可控的特点。然而,将siRNA成功递送到关节腔内的靶细胞(如巨噬细胞、滑膜成纤维细胞)面临重重困难。裸siRNA在血液中半衰期极短,易被肾小球滤过和被核酸酶降解,且其阴离子特性使之难以通过同样带负电的细胞膜脂质双层。
LNP是目前解决这一难题的最有力工具。典型的LNP由可电离阳离子脂质、中性辅助脂质、胆固醇和PEG脂质四种成分自组装而成。其中,可电离阳离子脂质在酸性pH下带正电,与带负电的siRNA结合并促进包封;在生理pH下则接近中性,降低毒性并利于内涵体逃逸。然而,已上市LNP(如用于Patisiran的配方摩尔比为 DLin-MC3-DMA : DSPC : 胆固醇 : DMG-PEG2000 = 50:10:38.5:1.5)主要设计用于肝脏靶向,因为其表面吸附的载脂蛋白E(ApoE)会引导LNP通过低密度脂蛋白受体进入肝细胞。对于关节炎治疗,理想的给药方式是局部注射(关节腔或关节附近皮下),这就要求LNP具备不同的理化性质和生物学行为。
本研究正是针对这一未被满足的临床需求,通过系统筛选脂质比例,特别是提高PEG脂质的比例,来优化LNP的稳定性、组织渗透性和局部滞留效应,从而实现关节局部的卓越治疗效果。PEG脂质(即DMG-PEG2000,聚乙二醇化二肉豆蔻酰甘油,分子量约2000 Da)在LNP中起着关键的“隐形”作用:它可以减少LNP在非靶组织的非特异性吸附,防止颗粒聚集,并调节LNP与细胞膜的相互作用。提高PEG脂质比例,有助于在注射部位形成更稳定的纳米颗粒储库,延长siRNA的释放时间,并可能通过优化PEG链的表面密度来改善靶细胞的摄取。二、 创新脂质组合物的组成与摩尔比
核心是一种包含四种组分的脂质组合物:可电离阳离子脂质、中性辅助脂质(具体为DSPC,即1,2-二硬脂酰-sn-甘油-3-磷酸胆碱)、胆固醇以及PEG脂质(具体为DMG-PEG-2000)。与常规配方最大的不同在于,该组合物中各组分摩尔比被限定在一个非对称的、经大量实验优化的范围内:
可电离阳离子脂质 : DSPC : 胆固醇 : DMG-PEG2000 = 37~49 : 8~22 : 38~39 : 2~6
通过进一步的体内外筛选,确定了两个更窄且药效最优的摩尔比子范围:
范围一(较高辅助脂质比例):37.5~40.5 : 17~20.5 : 38~39 : 3~5。该范围适用于多种可电离阳离子脂质,尤其是在皮下注射给药时表现出色。
范围二(较低辅助脂质比例):46.5~48.5 : 9.5~10.5 : 38~39 : 3~5。该范围更接近传统比例但降低了阳离子脂质并提高了PEG比例,在关节腔注射给药时效果突出。
可电离阳离子脂质具有广泛的选择性,包括但不限于:DLin-MC3-DMA((6Z,9Z,28Z,31Z)-三十七碳-6,9,28,31-四烯-19-基4-(二甲基氨基)丁酸酯)、DODMA(1,2-二油基氧基-N,N-二甲基氨基丙烷)、SM-102、ALC-0315、DLin-KC2-DMA、DLinDMA、DLenDMA、DODAP等。这种宽泛的适用性表明,该比例优化策略并非针对某一种特定脂质,而是具有普遍指导意义。三、 siRNA-LNP的制备与表征:详细步骤与关键参数
为了验证上述脂质组合物的递送潜力,研究团队首先采用微流控技术制备了装载特定治疗性siRNA的LNP。该siRNA的序列经过了化学修饰以增强其抗核酸酶降解能力:
正义链序列为 GCCUGUAGCCCAUGUGUATT(SEQ ID NO:1),
反义链序列为 UACAACAUGGGCUACAGCGTT(SEQ ID NO:2),
其中星号“”代表该核苷酸α位磷酸基团的一个非桥接氧原子存在硫代修饰,这种修饰可显著提高siRNA在生物体内的稳定性。
制备流程如下:
脂质相的配制:首先,根据预设的摩尔比准确称取可电离阳离子脂质、DSPC、胆固醇和DMG-PEG2000。将这四种脂质共同溶解于无水乙醇中,通过涡旋和超声使其完全溶解,形成澄清的脂质乙醇混合物。脂质的总浓度根据后续混合比例计算,确保最终颗粒粒径可控。
水相的配制:将上述经过硫代修饰的siRNA冻干粉溶解于醋酸钠缓冲液中。醋酸钠的浓度为25 mM,pH值用冰醋酸精确调节至4.0~6.0,在具体实施例中通常采用pH 5.0。该酸性环境是可电离阳离子脂质质子化、与siRNA发生静电结合的必要条件。siRNA的最终浓度根据投料比设定。
微流控混合:使用微流控设备(如NanoAssemblr或类似平台)进行纳米颗粒的自组装。设定总流速为12~40 mL/min,在具体的大多数实施例中采用16~24 mL/min。关键参数是脂质乙醇混合物与siRNA醋酸钠水溶液的流速比固定为1:3,这意味着水相是乙醇相体积的三倍,以确保脂质在快速混合过程中均匀析出并包封siRNA。同时,控制总脂质与siRNA的质量比(w/w)在8:1至20:1之间,优选为10:1~15:1,最优选为12:1。在这一步骤中,当乙醇溶液与水溶液混合时,脂质的溶解度急剧下降,形成纳米尺度的颗粒,同时质子化的阳离子脂质与阴离子siRNA紧密结合,实现高效包封。
纯化与浓缩(切向流过滤):混合后得到的siRNA-LNP粗品中含有乙醇、未包封的siRNA和部分游离脂质。为了去除这些杂质并将环境pH调节至生理水平,采用切向流过滤系统进行换液。使用的置换缓冲液为pH 7.4的Tris缓冲液或磷酸缓冲液。通过反复渗滤(通常为5-10倍体积置换),乙醇被彻底清除,同时缓冲液pH升高,使LNP表面电荷降低,提高稳定性。该步骤同时可以浓缩样品至所需浓度。
制剂与无菌过滤:收集纯化浓缩后的siRNA-LNP样品,加入蔗糖溶液作为冻干保护剂(最终蔗糖浓度通常为5%~10%),以提高在长期储存或冻干过程中的稳定性。最后,将制剂通过0.2 μm的无菌聚醚砜滤器进行过滤除菌,分装后于2-8°C或-20°C保存备用。
表征方法及结果:
粒径与多分散系数(PDI):使用Malvern Zetasizer Nano ZS动态光散射仪测定。取20 μL样品用去离子水稀释至1 mL,在25°C下平衡2分钟后测量。结果显示,所有制剂的平均粒径均控制在70~110 nm之间(表1),PDI值普遍小于0.2,多数在0.1左右,表明颗粒大小分布非常均一,适合注射给药。
包封率:使用Quant-iT™ RiboGreen® RNA试剂盒测定。RiboGreen是一种超灵敏的荧光核酸染料,只与游离的、未被包封的RNA结合。通过比较有/无Triton X-100(破坏LNP膜)处理的样品荧光强度,即可计算出包封率。具体操作:样品分为两份,一份直接加入RiboGreen试剂测定荧光(游离siRNA),另一份加入1% Triton X-100破坏LNP后测定总siRNA。包封率(%)= (总siRNA - 游离siRNA) / 总siRNA × 100%。如表1、表3、表8、表13所示,所有配方的包封率均高于92%,大部分达到95%以上,甚至98%,表明该制备工艺稳定且高效。
表1(综合多组数据):代表性LNP制剂的组分、摩尔比及理化性质
配方编号
可电离阳离子脂质
脂质摩尔比 (阳离子:DSPC:胆固醇:DMG-PEG2000)
LNP/siRNA (w/w)
平均粒径 (nm)
PDI
包封率 (%)
对照01
DLin-MC3-DMA
50:10:38.5:1.5
12:1
89.0
0.105
96.4
03
DLin-MC3-DMA
48:10:38.5:3.5
12:1
89.5
0.156
97.6
05
DLin-MC3-DMA
47:10:38.5:4.5
12:1
90.4
0.199
96.2
07
DLin-MC3-DMA
40.5:17.5:38.5:3.5
12:1
93.1
0.115
95.1
10
DLin-MC3-DMA
38:20:38.5:3.5
12:1
102.4
0.090
92.1
13
DODMA
48:10:38.5:3.5
12:1
82.9
0.119
98.3
15
DODMA
47:10:38.5:4.5
12:1
86.7
0.153
96.8
18
DODMA
40:17.5:38.5:4
12:1
90.9
0.186
95.4
21
SM-102
40:17.5:38.5:4
12:1
81.0
0.149
94.0
26
DLenDMA
48.5:10:38.5:3
12:1
76.6
0.100
97.4
30
DODAP
37.5:20:38.5:4
15:1
73.7
0.160
95.1四、 CIA大鼠模型的构建与药效评估方案
为了全面评估不同脂质配方和给药途径的药效,研究团队采用了国际公认的胶原诱导的关节炎模型。该模型能很好地模拟人类类风湿性关节炎的滑膜增生、炎性细胞浸润及关节破坏等病理特征。
模型构建具体步骤:
动物:选用SPF级雌性Wistar大鼠,体重范围严格控制在120~140克,以保证对胶原的免疫应答一致性。
首次免疫(第0天):将牛II型胶原蛋白(CII)溶于0.05 M乙酸,终浓度为2 mg/mL,再与等体积的不完全弗氏佐剂(IFA)在冰浴下用高速匀浆器充分乳化,形成稳定的油包水乳剂(胶原乳剂)。大鼠经1-4%异氟烷吸入麻醉后,于尾根部皮内单点注射0.2 mL该胶原乳剂。注射时确保乳剂沉积在皮内,形成一个小泡。
加强免疫(第7天):同样方法,在尾根部另一侧皮内再次注射0.2 mL新鲜的胶原乳剂,以增强免疫反应。通常在加强免疫后7-14天,大鼠后肢开始出现明显的红肿,关节炎评分逐渐升高。
动物分组与给药方案:
研究设计了多个独立实验,分别考察关节腔注射途径和皮下注射途径。在关节炎症状开始出现(通常在第10-14天)后,将大鼠按每组6只随机分组。给药剂量均以siRNA含量计,为9 mg/kg,给药体积为0.9 mL/kg(即每只约0.1-0.13 mL)。给药方案为在第0天(分组当天)、第3天和第6天共三次给药。阳性对照组采用临床药物依那西普(一种TNF-α受体-Fc融合蛋白),以10 mg/kg的剂量,于发病后每3天腹腔注射一次。模型对照组仅诱导CIA,不给予任何治疗。具体分组见原文表4、表9、表14,此处不赘述。
评价指标及详细测量方法:
关节炎评分:从第7天(首次免疫后)开始,每周两次对每只大鼠的所有四肢进行盲法评分,直至实验结束(通常第28-35天)。评分标准严格定义为:0分,无红肿现象;1分,中足(跖骨)或踝关节出现轻微红肿;2分,从踝关节到中足出现轻微至中等红胀;3分,从踝关节到跖骨关节出现中等至严重红胀;4分,从脚趾到踝关节(或前肢从手指到腕关节)出现严重红肿、关节变形。每只动物四肢得分相加,最高为16分。
足体积测量:使用足爪容积测量仪(如Ugo Basile Plethysmometer)。测量时,将大鼠后肢缓慢浸入充满水的测量筒中,直至踝关节处标记线,仪器会自动显示排开水的体积(mL)。在首次免疫前测量基线值,从第7天起每周两次测量双后足体积,取平均值。
体重变化:在首次免疫前称量体重作为基线,从第7天起每周两次称量体重,用以评估药物的全身毒性。若治疗组体重显著低于模型组(p<0.05),则提示可能存在毒性。
统计学分析:所有数据以均数±标准误(Mean ± SEM)表示。使用SPSS软件进行单因素方差分析(ANOVA),组间两两比较采用Tukey或Dunnett检验。p < 0.05被认为具有统计学显著性。五、 实验结果:关节腔注射(DLin-MC3-DMA配方)的显著疗效
在第一个关键实验中,研究团队选用应用最广泛的可电离阳离子脂质DLin-MC3-DMA,将其与DSPC、胆固醇、DMG-PEG2000以不同摩尔比组合(配方01至10,具体摩尔比见表3),制备siRNA-LNP后通过下肢双侧关节腔直接注射给药。
从图1(关节炎评分)中可以清晰地看到:模型对照组(组1)的关节炎评分在免疫后第16天开始迅速攀升,至第28天时平均评分高达8.50,表明CIA模型成功建立且疾病严重。阳性对照依那西普(组2)有效控制了疾病进展,评分维持在3-4分。在受试配方中,采用对照摩尔比50:10:38.5:1.5的配方01(组3)以及摩尔比49:10:38.5:2.5的配方02(组4),其关节炎评分与模型组相比并无显著差异(p>0.05),说明常规比例的LNP即使直接注射到关节腔也无法有效递送siRNA。然而,令人振奋的是,配方03(48:10:38.5:3.5,组5)、配方04(47.5:10:38.5:4,组6)、配方05(47:10:38.5:4.5,组7)、配方07(40.5:17.5:38.5:3.5,组9)、配方08(40:17.5:38.5:4,组10)、配方09(39.5:17.5:38.5:4.5,组11)以及配方10(38:20:38.5:3.5,组12)治疗组的大鼠关节炎评分均显著低于模型组(p<0.01),其下降幅度与依那西普组相当。尤其在治疗后期(第23天至第28天),这些优化配方的评分稳定在3.0-4.0之间,远低于模型组的8.0以上。
从图2(体重变化)来看,模型组及各治疗组大鼠体重在实验期间均呈上升趋势,表明动物总体耐受性良好。仅有配方02(组4)在给药初期(第7-12天)体重出现一过性下降,且与模型组相比具有显著性差异(p<0.05),提示该低PEG比例(2.5%)配方可能存在一定急性毒性。其余所有优化配方的体重与模型组无统计学差异(p>0.05),安全性得到验证。
图3(足体积)的数据进一步佐证了关节炎评分的结论。模型组大鼠双后足体积从第12天的1.53 mL激增至第28天的1.96 mL,肿胀明显。而配方03、04、05、07、08、09、10治疗组的大鼠足体积在第28天时分别为1.45 mL、1.47 mL、1.41 mL、1.38 mL、1.45 mL、1.35 mL和1.52 mL,均显著小于模型组(p<0.01),与依那西普组(1.40 mL)几乎完全重合。
小结:对于关节腔注射途径,当可电离阳离子脂质为DLin-MC3-DMA时,最优的脂质摩尔比必须满足两个条件:
①降低阳离子脂质比例至47-48%(而非50%);
②提高PEG脂质比例至3.5-4.5%(而非1.5-2.5%)。配方02(PEG比例2.5%)无效且有毒,而PEG比例提升至3.5%及以上时,疗效和安全均达到最佳。六、 实验结果:关节腔附近皮下注射(DODMA及其他阳离子脂质)的广谱有效性
考虑到关节腔注射在临床操作上相对复杂且可能引起不适,研究团队进一步探索了更为便捷的关节腔附近皮下注射给药途径。首先,他们选用了另一种常用的可电离阳离子脂质——DODMA,重复了类似的摩尔比优化实验(配方11至20,具体摩尔比见表8)。
从图4(关节炎评分)中可以发现,与关节腔注射结果惊人地相似:应用对照比例的配方11(50:10:38.5:1.5,组3)和配方12(49:10:38.5:2.5,组4)以及PEG比例仍然较低的配方16(41.5:17.5:38.5:2.5,组8),其关节炎评分与模型组相比无显著差异(p>0.05)。而配方13(48:10:38.5:3.5,组5)、配方14(47.5:10:38.5:4,组6)、配方15(47:10:38.5:4.5,组7)、配方17(40.5:17.5:38.5:3.5,组9)、配方18(40:17.5:38.5:4,组10)、配方19(39.5:17.5:38.5:4.5,组11)和配方20(38:20:38.5:3.5,组12)均表现出显著的疗效,评分降低至3-4分,与依那西普组相当。
值得注意的是,在图5(体重变化)中,配方14(组6)对应的47.5:10:38.5:4配比导致大鼠体重在实验后期显著低于模型组(p<0.05),提示该特定配比可能存在一定的全身或局部毒性,尽管其疗效很好。而其他优化配比,尤其是配方13、15、17-20,体重与模型组无差异。这表明,对于DODMA,更优的配比为PEG比例3.5%或4.5%而非正好4%,或者需要辅助脂质比例更高(范围一)。
图6(足体积)的数据再次确认了疗效:配方13、14、15、17、18、19、20均能显著抑制足爪肿胀,足体积从模型组的2.15 mL降至1.35-1.45 mL。
进一步验证:其他十种可电离阳离子脂质的普适性
为了证明该比例优化策略不局限于DLin-MC3-DMA和DODMA,研究团队还测试了SM-102、ALC-0315、DLin-KC2-DMA、DLin-KC3-DMA、DLinDMA、DLenDMA、DLin-MC2-DMA、DLinDAP、DMDAP以及DODAP,共十种不同的阳离子脂质。所有配方均采用优选摩尔比范围(如40:17.5:38.5:4或48.5:10:38.5:3等),并通过皮下注射给药。
图7、图8、图9展示了这些配方的治疗效果(原文图7-9)。结果显示,无论是基于SM-102的配方21,还是基于ALC-0315的配方22,亦或是基于DLenDMA的配方26、基于DODAP的配方30,所有测试的优化配方(组3至组12,对应配方21至30)均能极其显著地降低关节炎评分(图7)和足体积(图9),p值均小于0.01,且与依那西普组效果相当。同时,所有治疗组大鼠的体重与模型组相比均无显著差异(图8,p>0.05),安全性完美。
这组强有力的数据证明:核心——降低可电离阳离子脂质至37.5-48.5%、提高PEG脂质至3-5%,并将DSPC和胆固醇调整至相应比例——是一个具有广泛适用性的LNP优化策略。无论选择哪一种可电离阳离子脂质,只要摩尔比落在要求保护的范围内,就能将原本肝脏靶向的LNP转变为适用于关节炎局部治疗的、高效安全的递送载体。
七、 结论、作用机制探讨与未来展望
综合上述全部实验数据,可以得出以下明确结论:
提供了一种全新的脂质组合物,其摩尔比为可电离阳离子脂质:DSPC:胆固醇:DMG-PEG2000 = 37~49:8~22:38~39:2~6,优选37.5~40.5:17~20.5:38~39:3~5或46.5~48.5:9.5~10.5:38~39:3~5。
通过关节腔注射或皮下注射,该脂质组合物可将治疗性siRNA高效递送至关节炎病灶,在CIA大鼠模型中显著降低关节炎评分和足体积,效果媲美临床生物制剂依那西普,且安全性良好。
提高PEG脂质比例至3-5%是取得优异疗效的关键。与已上市LNP的1.5% PEG含量相比,更高的PEG比例可能带来如下好处:① 增强LNP在注射部位的胶体稳定性和储存稳定性,减少聚集;② 优化LNP在关节腔或皮下组织中的扩散与滞留,形成“药物储库效应”,缓慢释放siRNA;③ 适当高密度的PEG层可能调节LNP与细胞表面受体的相互作用,既避免被巨噬细胞过快清除,又能在到达靶细胞后通过“PEG脱壳”或形成微结构域促进内涵体逃逸。
该配方策略具有良好的脂质通用性,适用于DLin-MC3-DMA、DODMA、SM-102、ALC-0315、DLin-KC2-DMA、DLinDMA、DLenDMA、DODAP等十几种可电离阳离子脂质,为未来开发针对不同关节炎亚型或不同靶基因的siRNA药物提供了广阔的平台。
基于此项研究,我们可以期待以下方向的快速发展:首先,针对类风湿性关节炎的关键致病基因(如TNF-α、IL-6、NF-κB通路分子)设计特异性siRNA,封装于该优化LNP中,有望开发出新一代“治本”的关节炎药物。其次,由于皮下注射途径的便捷性和患者的依从性更高,该技术还可拓展至其他自身免疫疾病(如银屑病关节炎、强直性脊柱炎)的局部治疗。最后,该LNP平台的PEG比例优化思路也可为其他需要局部递送核酸药物的疾病(如肿瘤、皮肤疾病、眼部疾病)提供重要借鉴。随着临床前研究的深入和后续临床试验的推进,我们有理由相信,这种创新的脂质组合物将很快造福广大关节炎患者。
本文专利CN121987803A
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MAL-PEG-PA
5K,10K,20K
NH2-PEG-COOH
5K,10K,20K
MA-PEG-EO
5K,10K,20K
MA-PEG-NCO
5K,10K,20K
四臂PEG
4arm-PEG-SG
10K,20K
4arm-PEG-SS
10K,20K
4arm-PEG-SH
10K,20K
4arm-PEG-NH2
10K,20K
4arm-PEG-pALD
10K,20K
4arm-PEG-bALD
10K,20K
4arm-PEG-MAL
10K,20K
4arm-PEG-SC
10K,20K
4arm-PEG-SCM
10K,20K
4arm-PEG-SPA
10K,20K
4arm-PEG-SBA
10K,20K
4arm-PEG-SVA
10K,20K
4arm-PEG-SHA
10K,20K
4arm-PEG-SSE
10K,20K
4arm-PEG-SCM
10K,20K
4arm-PEG-CHA-NCO
10K,20K
4arm-PEG-HA-MAL
10K,20K
4arm-(3NH2+1AA)-PEG
10K,20K
4arm-PEG-SSA
10K,20K
八臂PEG
8arm-PEG(TP)-SG
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-SS
10k,15k;20k;40k
8-arm-PEG(TP)-SH
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-NH2
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-pALD
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-MAL
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SG
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SS
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SH
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-MAL
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-SC
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-GA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-GAA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-SAA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-SA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-CM
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(TP)-SCM
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SGA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SCM
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SC
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-pALD
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-GA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-GAA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SAA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-SA
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HG)-CM
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(SUC)-MAL
10k,15k;20k;40k
8arm-PEG(HY)-SG
10k,15k;20k;40k
Linkers
NH2-PEGn-PA(n=2-24)
AZIDE-PEGn-NH2(n=2-24)
AZIDE-PEGn-PA(n=2-24)
M-PEGn-PA(n=2-24)
M-PEGn-NH2(n=2-24)
MAL-PEGn-PA(n=2-24)
MAL-PEGn-SPA(n=2-24)
DBCO-PEGn-PA(n=2-24)
MAL-PEGn-VC-PAB(n=2-24)
MAL-PEGn-VA-PAB(n=2-24)
DBCO-PEGn-VC-PAB(n=2-24)
DBCO-PEGn-VA-PAB(n=2-24)
LNPs
M-DMG-2000
ALC-0159
ALC-0315
SM-102
DOTAP
PLGA
产品型号
特性黏度(dL/g)
PLGA5050
PLGA5050-20H
0.16-0.24
PLGA5050-30H
0.25-0.35
PLGA5050-40H
0.36-0.44
PLGA5050-20S
0.16-0.24
PLGA5050-30S
0.25-0.35
PLGA5050-40S
0.36-0.44
PLGA6535
PLGA6535-20H
0.16-0.24
PLGA6535-30H
0.25-0.35
PLGA6535-40H
0.36-0.44
PLGA6535-20S
0.16-0.24
PLGA6535-30S
0.25-0.35
PLGA6535-40S
0.36-0.44
PLGA7525
PLGA7525-20H
0.16-0.24
PLGA7525-30H
0.25-0.35
PLGA7525-40H
0.36-0.44
PLGA7525-20S
0.16-0.24
PLGA7525-30S
0.25-0.35
PLGA7525-40S
0.36-0.44
PLGA8515
PLGA8515-20H
0.16-0.24
PLGA8515-30H
0.25-0.35
PLGA8515-40H
0.36-0.44
PLGA8515-20S
0.16-0.24
PLGA8515-30S
0.25-0.35
PLGA8515-40S
0.36-0.44
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