点击蓝字 关注我们
绞股蓝
一、绞股蓝皂苷概述
绞股蓝,又名七叶胆、小苦药,是葫芦科绞股蓝属的草质攀援植物,素有“清热、补虚、解毒”的功效。作为“南方人参”,它不仅易于种植、生长周期短,更因富含活性成分而备受关注——自1976年首次从中鉴定出人参二醇类成分以来,科学家已分离出300多种绞股蓝皂苷单体(Gyp),约25%的成分与人参皂苷(如Rb₁、Rd、Rg₃)同源[1]。
现代研究证实,绞股蓝皂苷具有抗肿瘤、保肝护肾、免疫调节、神经保护、调节代谢等广泛药理活性,尤其对非酒精性脂肪肝、动脉粥样硬化、糖尿病等慢性代谢性疾病表现出良好的调理作用,适配当下人们的健康需求。但令人遗憾的是,天然绞股蓝皂苷的3位、6位和20位常连接着不同长度的糖链,这些糖链虽能辅助皂苷与靶点结合,却严重降低了其透膜性和体内生物利用度,导致其活性被“封印”,难以充分发挥药效[2]。因此,解锁糖链对绞股蓝皂苷的结构优化,成为挖掘其药用潜力的关键。
二、糖链:绞股蓝皂苷的“活性开关”
绞股蓝皂苷的核心结构由“苷元”和“糖链”组成,糖链主要通过3位、20位羟基与苷元连接,常见的单糖包括葡萄糖、阿拉伯糖、木糖和鼠李糖4种。这些糖链绝非可有可无的附属品:一方面,它们是皂苷与体内靶点结合的重要桥梁,直接影响药理活性的发挥;另一方面,多余的糖链会增加分子体积、降低脂溶性,导致皂苷难以穿过细胞膜被人体吸收。因此,通过科学手段对糖链进行结构优化,不仅能丰富绞股蓝皂苷的种类,更能筛选出活性更强、成药性更优的先导化合物,为药物研发奠定基础(图1)。
图1 绞股蓝皂苷活性评价及构效关系研究思路
三、绞股蓝皂苷的“解锁方法”
目前,科学家主要通过“化学水解”和“生物转化”两大类方法为绞股蓝皂苷 “减糖解锁”,前者高效快捷,后者精准温和,各有优势。
(一)化学水解:简单直接的“暴力解锁”
通过化学手段打破糖苷键,快速获得次级苷或苷元,是丰富绞股蓝皂苷成分库的重要手段。主要包括酸水解、碱水解以及热处理水解三种手段。
酸水解:利用甲酸、稀盐酸等酸性物质处理皂苷。酸性环境会让糖苷键的缩醛/缩酮结构质子化,最终断裂脱糖。这种方法不仅能生成次级苷,还可能让苷元侧链重排、环化,产生新结构。如沈阳药科大学课题组就从酸水解产物中分离出27种新成分,兼具抗肿瘤、抗肝纤维化、抗糖尿病活性[3]。
碱水解:糖苷键在碱性环境中相对稳定,仅能水解少数特殊糖苷(如酚苷、酯苷),但能分离出新型苷元。研究发现,碱水解后的绞股蓝总苷对肺癌A549细胞的抑制作用更显著,部分产物经结构改造后,还能大幅提升AMPK激动活性[4]。
热处理水解:高温浸煮、加热回流等常规提取手段,能让糖苷键断裂。比如在125℃下蒸制后,绞股蓝中的原生皂苷(Gyp ⅩLⅥ、Gyp LⅥ)会脱掉20位糖基(图2),生成稀有皂苷,同时让微量的活性皂苷Rg₃含量增加,对肺癌细胞的毒性显著增强[5]。
图2热处理过程中绞股蓝皂苷LVI、XLVI的降解途径
(二)生物转化:精准高效的 “生物剪刀”
利用微生物或酶的特异性,针对性切除特定位置的糖基,条件温和、副反应少,是未来绞股蓝皂苷糖基修饰的主流方向。
微生物转化:借助乳酸菌、曲霉等微生物代谢产生的糖苷酶,催化糖苷键断裂(图3)。比如用保加利亚乳杆菌发酵绞股蓝主成分Gyp ⅩLⅥ,能得到4种抗肿瘤活性更强的产物;灰绿曲霉转化后的皂苷,抗氧化能力也大幅提升;肠明串珠菌DC102则能精准脱掉Gyp ⅩⅦ的3位和20位外侧葡萄糖,生成人参皂苷F₂和Compound K(人参在体内发挥药效的核心活性成分)[6-7]。
图3 原人参二醇型绞股蓝皂苷的微生物转化
酶水解:这是最精准的“定向解锁”技术!无论是商品化酶还是实验室自制工程酶,都能针对性切除特定类型、特定位置的糖基,优势突出:①催化效率高,水解速度快;②条件温和(常温常压),保护苷元结构不被破坏;③选择性强,能精准控制脱糖位点;④绿色环保,多在水溶液中反应。
商业化糖苷酶来源可靠、性质稳定、使用方便,适合于不同实验室和工业生产转化糖苷天然产物,商品化糖苷酶包括蜗牛酶、柚皮苷、β-半乳糖苷酶、β-葡萄糖苷酶等。目前商品化糖苷酶已广泛应用于包括绞股蓝皂苷在内的多种天然皂苷的糖基酶解研究。如柚皮苷酶能脱掉Gyp ⅩLⅥ的3位两分子葡萄糖,产物对肝癌细胞(SMMC7721、Bel7402)的抑制力显著提升(图4)[8]。
图4 蜗牛酶水解Gyp LVI C-3葡萄糖基
而随着人工智能设计、定向进化等技术发展,实验室自制工程酶的特异性更优——比如嗜热纤维素酶能高选择性水解Gyp ⅩLⅨ的20位葡萄糖(图5),产物抗EV71病毒活性更强[9];重组β-葡萄糖苷酶能精准脱掉Gyp ⅩⅦ的3位和20位糖基,生成高活性的Compound K,产率可达65%以上[10]。
图5 嗜热纤维素酶水解Gyp XLIX C-20葡萄糖基
四、局限性与未来研究方向
目前的研究仍有局限:现有糖基水解策略多以“减糖”为主,难以全面探索构效关系;商品化酶的种类有限,无法满足所有定点修饰需求。未来,研究将聚焦三大方向:①利用化学方法或糖基转移酶,实现糖基的“替换”和“修饰”,调整糖基类型、取代位置及糖链长度;②通过蛋白质工程优化酶结构,提升其特异性和转化率;③深入研究糖基种类、构型、连接位置与药理活性的关系,为精准设计高活性化合物提供理论支撑。
五、总结
绞股蓝作为中医药的瑰宝,其核心价值藏在皂苷的糖链与苷元之中。糖基修饰技术就像一把“精准钥匙”,通过化学手段快速丰富成分库,或借助生物转化精准解锁活性,让绞股蓝皂苷的药效得到质的飞跃。从传统草本到现代科技加持的高活性成分,绞股蓝的“解锁之路”不仅是中药现代化的生动缩影,更为慢性代谢性疾病、肿瘤等领域的药物研发提供了新方向。
参考文献
[1] Nguyen NH, Ha TKQ, Yang JL, et al. Triterpenoids from the genus Gynostemma: Chemistry and pharmacological activities [J]. J Ethnopharmacol. 2021, 268: 113574.
[2] 王航航, 韩慧发, 王吓长, 等. 绞股蓝皂苷糖基水解研究进展[J]. 中药材, 2023, 46(11): 2882-2889.
[3] Zhang XS, Cao JQ, Zhao C, et al. Novel dammarane-type triterpenes isolated from hydrolyzate of total Gynostemma pentaphyllum saponins [J]. Bioorg Med Chem Lett, 2015, 25(16): 3095-3099.
[4] 朴香兰, 陈道金, 刘慧敏, 等. 壮药“国虾薄”(绞股蓝)碱水解产物对A549细胞的抑制活性 [J]. 中央民族大学学报, 2014, 23(01): 60-64.
[5] Wu Q, Jang M, Piao XL. Determination by UPLC-MS of four dammarane-type saponins from heat-processed Gynostemma pentaphyllum [J]. Biosci Biotechnol Biochem, 2014, 78(2): 311-316.
[6] 刘慧敏, 高雅军, 曾鸣, 等. 保加利亚乳杆菌对绞股蓝皂苷XLⅥ的微生物转化 [J]. 食品科学, 2014, 35(17): 133-136.
[7] 陈良华, 翁梦婷, 秦江, 等. 灰绿曲霉对绞股蓝皂苷的微生物转化及其生物活性[J]. 厦门大学学报, 2016, 55(05): 775-780.
[8] Zheng Y, Zheng Z, Ming Y, et al. Gynosaponin TN-1 producing from the enzymatic conversion of gypenoside XLVI by naringinase and its cytotoxicity on hepatoma cell lines [J]. Food Chem Toxicol, 2018, 119: 161-168.
[9] Zhao HX, Jiao WB, Xiu Y, et al. Enzymatic biotransformation of gypenoside XLIX into gylongiposide I and their antiviral roles against enterovirus 71 in vitro [J]. Molecules, 2022, 27(13): 4094-4105.
[10] Yu HS, Liu H, Zhang CZ, et al. Purification and characterization of gypenoside-α-L-rhamnosidase hydrolyzing gypenoside-5 into ginsenoside Rd [J]. Process Biochem, 2004, 39(7): 861-867.