,,
ABSTRACT
摘要:目的:探究决明子-山楂-荷叶水提物改善高脂血症的作用机制。方法:通过总胆固醇与甘油三酯测试盒检测决明子-山楂-荷叶水提物对HepG2细胞内胆固醇和甘油三酯的影响。利用TCMSP、SwissADME、BAT-MAN等数据库及文献获取决明子、山楂、荷叶活性成分及靶点。通过GeneCards、OMIM和TTD数据库获取高脂血症的靶点,与决明子、山楂、荷叶靶点取交集。运用Cytoscape 3.9.0软件及STRING数据库构建决明子-山楂-荷叶、活性成分、靶点、疾病、通路网络及蛋白-蛋白相互作用网络。利用DAVID数据库进行基因本体(GO)功能及京都基因与基因组百科全书通路(KEGG)富集分析,采用AutoDockTools 1.5.6等软件对主要活性成分和核心靶点进行分子验证。结果:决明子-山楂-荷叶水提物能显著降低HepG2细胞内胆固醇和甘油三酯水平。筛选得到38个活性成分,78个交集靶点, 主要活性成分为大黄酸、决明内酯、豆甾醇、芦荟大黄素、菜油甾醇、红链霉素; 核心靶点为INS、IL-6、PPARG、IL-1β、PPARA、LEP。GO与KEGG富集分析得到440、87个条目。分子对接结果显示, 主要活性成分与核心靶点之间有良好的结合活性。结论:决明子-山楂-荷叶水提物可通过多成分、多靶点、多途径改善高脂血症, 为临床应用提供理论依据。
关键词:决明子-山楂-荷叶水提物;高脂血症;网络药理学;分子对接;作用机制
开放科学(资源服务)标识码(OSID):
高脂血症(Hyperlipidemia, HLP)临床表现为血脂异常(Dyslipidemia),为血浆中总胆固醇(TC)和(或)甘油三酯(TG)异常,包括低密度脂蛋白胆固醇(LDL-c)升高、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-c)降低和甘油三酯升高[1]。随着生活水平的提高和肉类食品摄入的增加,高脂血症患者急剧增加。根据《中国血脂管理指南(基层版2024年)》最新数据,我国18岁以上成人血脂异常总患病率已超过40%,血脂异常是导致心血管疾病(如冠心病、脑卒中等)的重要危险因素,长期血脂异常还可能导致脂肪肝、急性胰腺炎、糖尿病等并发症[2]。目前, 现代医学治疗HLP的药物以降低TC和LDL-c为主,包括他汀类和树脂类,降低TG为主的有贝特类和烟酸类[3-4]。这些药物具有明确效果,但靶点单一,长期使用常伴有副作用,例如胃肠道不良反应、慢性肝肾功能损害以及停用药后反弹等[5]。因此,寻找新型、安全、高效的高脂血症治疗手段迫在眉睫。
“药食同源”的理念在我国源远流长, “食补”“食疗”观念影响广泛。研究表明,许多药食同源物质不仅美味可口,还营养丰富,含有生物碱、黄酮、萜类、多糖、醌类、皂苷等对身体有益的成分,具有保健和治疗疾病的功能[6]。决明子、山楂、荷叶均为药食同源植物,均具有降血脂的作用。研究表明,决明子蒽醌类物质可减少外源性脂质的吸收,增加其排泄,减少内源性TC的合成,降低血清TC、TG及LDL-c水平,提高HDL-c水平[7-8]。《中国药典》(2020 年版)一部记载,山楂具有消食健胃、行气散瘀、化浊降脂功效[9]。山楂中黄酮类和三萜类化合物可降低LDL-c 水平,升高HDL-c 水平,增强降脂酶的活性,增加TG的被吞噬量,抑制LCAT活性,抑制TC的合成[8,10]。 江健等[11]发现从荷叶中分离得到的生物碱能降低HepG2高脂模型细胞内的脂质累积。目前,我国开发了大量以“决明子、山楂、荷叶”为主的降血脂产品。林平发等[12]研制以决明子、桔梗、山楂、菊花、荷叶为原料的降脂减肥袋泡茶,能显著降低高脂血症模型小鼠血清中TC、TG、LDL-c水平。于效力[13]采用由决明子、山楂、何首乌、益母草等制备的明楂首乌降脂汤治疗高脂血症,患者有效率高达93.7%。
虽然大量研究报道决明子、山楂、荷叶的化学成分及药理作用,但对其配伍的作用机制研究较少。网络药理学是结合系统生物学和网络信息学的综合性学科,能从多组分、多靶点、多途径阐明中药治疗复杂疾病的分子机制[14]。分子对接是运用计算机模拟技术,在原子水平上模拟分子与蛋白质之间的相互作用,预测治疗分子和靶分子之间的亲和力和结合模式[15]。本研究利用中药系统药理学数据库和分析平台(TCMSP),以口服生物利用度(OB)和类药性(DL)等指标筛选决明子-山楂-荷叶水提物中的潜在活性成分;使用SwissADME预测决明子-山楂-荷叶水提物的吸收、分布、代谢和排泄特性, 如血脑屏障通透性、代谢稳定性等;借助 BATMAN-TCM预测决明子-山楂-荷叶活性成分靶点;使用 Cytoscape 构建药物-靶点-疾病网络,直观展示分子间的相互作用;AutoDockTools 1.5.6预测决明子-山楂-荷叶活性成分与靶点蛋白的结合模式,评估结合能力。基于网络药理学与分子对接,分析决明子-山楂-荷叶改善高脂血症的活性成分、作用靶点及机制,为后续深入研究及临床应用提供理论支撑。
1 材料
1.1 数据库与软件
1.1.1 数据库
1.1.2 软件
采用Cytoscape 3.9.0进行网络可视化分析;PyMOL 2.2.0可视化对接结果;AutoDockTools 1.5.6进行分子对接并计算结合能;Chem3D 17.1 获取活性成分最低能量构象。
1.2 细胞
肝癌HepG2细胞购自中国科学院细胞库(干细胞库)。
1.3 药品与试剂
决明子、山楂、荷叶(肇庆京东盛甲贸易有限公司);细胞增殖试剂盒(CCK-8)(上海百赛生物技术股份有限公司);辛伐他汀片(杭州默沙东制药有限公司,批号:U018663); 二甲基亚砜(西陇科学股份有限公司);PBS缓冲液(1×)、青链霉素混合液(100×)、胰蛋白酶消化液(北京索莱宝科技有限公司);gibcoDMEM(1×)(赛默飞世尔科技公司);优级胎牛血清(赛业(广州)生物科技有限公司);BCA蛋白定量试剂盒、BSA蛋白标准品(上海雅梅生物医药科技有限公司,批号:O37B2325,批号:O3762400);RIPA裂解液、PMSFSolution(上海碧云天生物技术股份有限公司);总胆固醇(T-CHO)测试盒、甘油三酯(TG)测试盒(南京建成生物工程研究所,批号:A111-1-1,批号:A110-1-1)。
1.4 仪器
XS205DU电子分析天平(梅特勒托利多国际有限公司);EYELAN-1300型旋转蒸发仪(日本东京理化公司);BPZ-6063真空干燥箱(上海一恒科学仪器有限公司);Spark多功能酶标仪(瑞士Tecan公司)。
2 方法
2.1 细胞实验
2.1.1 决明子-山楂-荷叶水提物制备
取决明子、山楂、荷叶(决明子54%,山楂28.5%,荷叶17.5%)于烧瓶中,以料液比1∶50用纯净水回流提取3次,每次提取时间为90min;合并3次滤液,旋转蒸发仪进行浓缩,冷冻干燥得到决明子-山楂-荷叶水提物(JSHS)。
2.1.2 JSHS对HepG2细胞存活率的影响
精密称取JSHS,用1×PBS缓冲液加热溶解(温度<60℃),配制为50mg/mL的母液。精密称取辛伐他汀,用二甲基亚砜(DMSO)配 制 成 10mmol/L的溶液。取对数生长期的肝癌HepG2细胞,用1mL胰酶消化制备成单细胞悬液, 以5×103个/孔接种于96孔板内,每孔含100μL完全培养基(DMEM培养基+10%胎牛血清+1%青链霉素混合液),置于37℃、5%CO2培养箱中培养24h。弃去上清液,分别设置完全培养基对照组(NC)及用完全培养基稀释的不同JSHS浓度(25、50、75、100μg/mL)处理组, 每孔100μL,每组设置5个复孔。培养箱继续培养24h,避光条件下每孔分别加入10μL CCK-8试剂,置于37℃培养箱孵育1h,使用酶标仪在450nm波长处检测每孔的吸光度(A), 按以下公式计算细胞存活率:细胞存活率(%)=A2/A1×100%式中,A1为对照组平均吸光度,A2为JSHS处理组吸光度。
2.1.3 JSHS对细胞内TC水平的影响
取对数生长期的肝癌HepG2细胞,用1mL胰酶消化制备成单细胞悬液,以2×106个/孔接种于6孔板内,每孔含2mL完全培养基,置于37℃、5%CO2培养箱中培养24h。弃去上清液,分别设置完全培养基对照组(NC)、阳性药辛伐他汀(10μmol/L)及不同JSHS浓度(20、40μg/mL)处理组,每孔2mL,培养箱继续培养24h。弃去上清液,冰浴上使用预冷的1mL 1×PBS清洗细胞2次,每孔加入100μL RIPA裂解液(RIPA∶PMSF-99∶1),用细胞刮将孔板中的细胞刮下,收集到1.5mL EP管中,置于冰浴中裂解30min,中途涡旋使其充分裂解。室温,2000r/min 离心5min,收集上清液。使用BCA蛋白定量试剂盒配制显色工作液(A∶B=50∶1),将样品与BSA标准品加20μL到96孔板中,用酶标仪在562nm测定样品及BSA标准品吸光度,绘制标准曲线,计算样品中的蛋白浓度。使用胆固醇测试盒,分别设置空白孔(蒸馏水)、标准孔及样品孔,每孔2.5μL,再每孔加入250μL工作液混匀,37℃孵育10min,酶标仪波长500nm测定各孔吸光度值,利用以下公式计算各组的细胞TC含量,平行3次实验。
胆固醇含量(mmol/gprot)=A样品-A对照A标准-A对照×c标准÷cpr式中,c标准为标准品浓度,mmol/L。cpr为样品蛋白浓度,gprot/L。
2.1.4 JSHS对细胞内TG水平的影响
取“2.1.3”收集的上清液,使用甘油三酯测试盒,分别设置空白孔(蒸馏水)、标准孔及样品孔,每孔2.5μL,再每孔加入250μL工作液混匀,37℃孵育10min,标仪波长500nm测定各孔吸光度值,利用以下公式计算各组的细胞TG含量,平行3次实验。甘油三酯含量mmol/gprot=A样品-A对照A标准-A对照×c标准÷cpr式中,c标准为标准品浓度,mmol/L。cpr为样品蛋白浓度,gprot/L。
2.1.5 统计学分析
使用GraphPad Prism 8.0.2软件对结果进行处理,以(x±s)表示,组间比较采用单因素方差分析。P<0.05表示差异具有统计学意义。
2.2 网络药理学分析
2.2.1 JSH活性成分筛选及潜在靶点预测
在TCMSP数据库中输入关键词“决明子”“荷叶,以口服利用度(OB)≥30% 和类药性(DL)≥0.18为检索条件筛选活性成分[16]。TCMSP中未收录“山楂果”信息,故选用中国知网进行文献检索获取其化学成分,将化学成分输入PubChem数据库中得到其SMILES,随后将SMILES导入SwissADME平台,以胃肠道吸收(GI absorption)为High,类药性(Drug likeness)五原则中有≥2个“Yes”的化合物纳入活性成分中。通过各化学成分的PubChem CID在BATMAN-TCM数据库(设置Score cut off为15,P-value为0.05)中收集其潜在靶点。
2.2.2 高脂血症靶点筛选
以“hyperlipidemia”为关键词,在GeneCards数据库、OMIM数据库和TTD数据库中收集疾病靶点, 其中GeneCards数据库: 物种限定为“Homo sapiens”,Relevancescore≥1。最后将所有疾病靶点去重,利用Venny 2.1.0在线工具得到交集靶点并绘制韦恩图。
2.2.3 “JSH-活性成分-靶点-HLP”网络构建
将JSH、活性成分、靶点、HLP信息进行整合, 制作Network和Type文件,随后导入Cytoscape 3.9.0软件构建网络图, 使用软件的Analyze Network功能分析网络,筛选出度值(Dgree)排名前6的主要活性成分。
2.2.4 PPI网络构建
将交集靶点导入STRING平台,设置参数: Organisms 为Homo sapiens; Minimum required interaction score为High confidence(0.4), 其余默认筛选标准,删除游离节点,获取PPI网络并导出结果。在 Cytoscape 3.9.0软件中导入STRING的tsv文件进行可视化,筛选出度值(Dgree)排名前6的核心靶点。
2.2.5 GO和KEGG富集分析
将交集靶点导入DAVID数据库, 设置参数:Select Identifier 为“OFFCIAL-GENE-SYMBOL”,Select species 为“Homo sapiens”,分别获得了生物过程(BP)、细胞成分(CC)、分子功能(MF)和KEGG信号通路数据,利用微生信平台分别筛选出P<0.05的前10个BP、CC、MF的GO富集分析和前20个KEGG信号通路富集分析,并作图分析。
2.2.6 “JSHS-活性成分-靶点-通路-HLP”网络构建
在“2.2.3”项下Network和Type文件中加入通路信息,利用Cytoscape 3.9.0 软件构建网络图。
2.2.7 分子对接
使用 AutoDockTools 1.5.6对PPI网络中Degree排名前6位的核心靶点与筛选出的6个主要活性成分进行对接,初步验证结合程度。
①配体准备
通过PubChem数据库获取主要活性成分的2D结构,利用Chem3D 17.1软件选择“Calculations”中“MM2”的“Minimize Energy”,将小分子配体的能量最小化,保存为mol2格式在AutoDockTools 1.5.6 软件中加氢处理后, 转化为pdbqt格式。
②受体准备
将靶点基因输入UniProt数据库中,筛选条件设置为“Reviewed, Human”,随后在RCSBPDB 数据库中输入靶点基因的“EntryID”,筛选出分辨率≤2.5、种类为“Homo Sapiens”的靶点蛋白,记录PDB编号并获取其靶点蛋白结构的pdb文件,在AutoDockTools 1.5.6软件中进行去水、加氢,保存为pdbqt格式。
③对接过程
采用 AutoDock Vina对接活性成分与核心靶点并计算其结合能,再使用PLIP与PyMOL可视化对接结果。
3 结果
3.1 细胞实验结果
3.1.1 JSHS对HepG2细胞存活率的影响
使用CCK-8试剂盒检测不同浓度JSHS对HepG2细胞的毒性作用。结果显示,不同浓度提取物处理组与空白对照组的细胞存活率均无显著差异,见图1a,所选择的浓度可用于后续实验。
3.1.2 JSHS对细胞内胆固醇水平的影响
与NC无处理组相比,JSHS处理组胆固醇水平发生不同程度的明显下降(P<0.05)。 JSHS降胆固醇能力与阳性药辛伐他汀相当,结果表明,JSHS可降低肝细胞内的胆固醇水平,见图1b。
3.1.3 JSHS对细胞内甘油三酯水平的影响
与NC无处理组相比,JSHS处理组的甘油三酯水平发生不同程度的明显下降(P<0.01)。辛伐他汀是他汀类的降脂药,主要用于治疗高胆固醇血症,降甘油三酯作用不明显。结果表明,JSHS可显著降低肝细 胞内的甘油三酯水平,见图1c。
3.2 网络药理学分析结果
3.2.1 JSH活性成分筛选及潜在靶点预测结果
通过TCMSP数据库、文献检索及SwissADEM平台筛选出38个活性成分,其中决明子个,山楂果9个[17-24],荷叶15个,剔除重复项最终获得37个活性成分,见表2。利用BATMAN-TCM数据库得到1353个活性成分靶点,删除重叠部分得到718个活性成分靶点。
3.2.2 高脂血症靶点筛选结果
以“hyperlipidemia”为关键词,GeneCards数据库检索得到1595个靶点,OMIM数据库中得到297个靶点,TTD数据库中得到2个靶点。将3个数据库所得靶点去重整合得到824个HLP靶点。将718个活性成分靶点与824个疾病靶点导入Venny 2.1.0在线工具,取交集绘制韦恩图,收集到78个交集靶点,见图2。
3.2.3 “JSH-活性成分-靶点-HLP”网络
见图3,图中有112个节点,313条边,Analyze Network功能分析网络,筛选出度值(Dgree)排名前6 的主要活性成分分别为:Rhein(大黄酸,Dgree=50)、Toralactone(决明内酯,Dgree=13)、Stigmasterol(豆甾醇,Dgree=13)、Aloe-emodin(芦荟大黄素,Dgree=5)、Campest-5-en-3beta-ol(菜油甾醇,Dgree=5)、Rubrofusarin(红链霉素,Dgree=5)。
3.2.4 蛋白-蛋白相互作用(PPI)
网络PPI 文件导入Cytoscape 3.9.0软件进行分析,见图4,图中共得到75 个节点,617条边。Analyze Network功能分析网络,根据度值(Dgree) 排名前6的核心靶点分别为INS(2WS6)、IL-6(1ALU)、PPARG(5Z5S)、IL-1β(8RYS)、PPARA(6KBA)、LEP(1AX8)。
3.2.5 GO和KEGG富集分析结果
GO功能富集分析共获得440个条目,其中BP为319条,主要包括胆固醇代谢过程、胆固醇平衡、MAPK级联的正向调节、胆固醇储存的负向调节、低密度脂蛋白颗粒重塑等;CC为38条,主要与细胞外区域、细胞外空间、内质网腔、受体复合体、高尔基管腔、细胞质核周区、质膜、溶酶体等有关;MF为83条,主要涉及核受体活性、酶结合、信号受体结合、胆固醇结合、类固醇结合、雌激素反应元件结合、胆固醇O-酰基转移酶活性、激素活性等, 见图5。KEGG富集分析结果显示,共有87个条目,根据P值筛选出前20个,通过微生信平台绘制气泡图,见图6。图中圆圈面积代表富集在该通路上基因的数目,颜色代表富集程度。涉及通路主要包括脂质与动脉粥样硬化通路、胆固醇代谢通路、脂肪细胞的脂肪分解调节通路、胆汁分泌通路、卵巢类固醇生成通路、PPAR信号通路等,见表3。
3.2.6 “JSHS-活性成分-靶点-通路-HLP”网络
在“3.2.3”项下的Network和Type文件中加入前20条KEGG富集分析通路信息,构建网络,见图7,图中共有134个节点、269条相互作用的连线。
3.2.7 分子对接结果
将排名前6位的主要活性成分(大黄酸、决明内酯、豆甾醇、芦荟大黄素、菜油甾醇、红链霉素)与核心靶点(INS、IL-6、PPARG、IL-1β、PPARA、LEP)进行分子对接,见表4。当受体和配体间结合能≤-5.0kcal/mol(1ca=4.2J)时,二者间有较好的结合活性;结合能≤-7.0kcal/mol时,二者间有较强的结合活性[25]。对接结果显示,JSHS的主要活性成分与核心靶点结合能均<-5.0kcal/mol,其中24组结合能≤-7.0kcal/mol,PPARG与JSHS主要活性成分的结合能最高。使用PLIP与PyMoL可视化,见图8。
4 讨论
随着生活方式的改变,高脂血症已经成为威胁人类健康的危险因素,可导致动脉粥样硬化、冠心病等心血管疾病。近年来,高脂血症呈现出年轻化的趋势[26]。因此, 降血脂功能食品或药物是大健康产业的研究热点之一。
对于决明子、山楂和荷叶为主成分的降血脂产品活性成分不清、作用机制不明的问题,本研究深入挖掘决明子-山楂-荷叶水提物改善HLP的潜在活性成分和作用靶点,探究可能作用机制,并运用分子对接技术进行初步验证。首先,细胞实验结果显示,JSHS能显著降低HepG2细胞内TC、TG水平, 表明决明子-山楂-荷叶水提物能有效降脂。但20μg/mL与40μg/mL降低TC、TG的水平基本相同,可能与细胞内的TC、TG水平有关,20μg/mL的JSHS能充分降低 TC、TG。其次,通过检索文献和搜索数据类化合物具有降血压、降血脂、保肝、抗氧化等作用[27]。决明子提取物能显著降低高脂血症模型大鼠血清中的TG,调节血脂水平,改善肝功能[28]。橙黄决明素可下调高脂血症模型斑马鱼中TNF、IL-1βmRNA水平,有明显的降脂效果[29]。豆甾醇是不饱库,并以生物利用度、类药性、吸收、分布 代谢和排泄等参数进行筛选,得到38个JSHS的潜在活性成分;通过数据库检索,分析JSHS潜在活性成分的作用靶点与高血脂治疗靶点,发现大黄酸、决明内酯、豆甾醇、芦荟大黄素、菜油甾醇、红链霉素为改善HLP的主要活性成分,从而明确JSHS降脂的作用机制。决明子中芦荟大黄素、决明素、大黄酸等蒽醌通过PPI网络分析发现INS、IL-6、PPARG、IL-1β、PPARA、LEP为改善HLP的核心靶点。研究发现,IL-6 为重要的促炎因子,能够促进脂肪细胞凋和植物甾醇,具有抗炎、抗真菌、抗氧化和神经保护等药理作用[30],还可改善脂质和胆汁酸代谢, 从而预防血脂异常[31]。本研究揭示的JSHS降脂活性成分准确、可信。
通过PPI网络分析发现INS、IL-6、PPARG、IL-1β、PPARA、LEP为改善HLP的核心靶点。研究发现,IL-6为重要的促炎因子,能够促进脂肪细胞凋亡,抑制脂肪细胞分化与合成,刺激脂肪细胞脂质加速分解,导致胰岛素抵抗,促进动脉粥样硬化,增加患HLP的可能[32]。PPARG不仅能调节脂肪细胞分化,还可以调节成熟脂肪细胞的脂肪代谢以及胰岛素敏感性,在糖脂代谢过程中有重要作用[33-34]。上调PPARG可影响参与脂肪酸代谢和三酰甘油储存的基因,维持脂肪细胞表型,进而影响血脂[35]。IL-1β可加重血脂异常,是参与动脉粥样硬化、代谢综合征和胰岛素抵抗的主要促炎细胞因子之一[36]。携带IL-1β基因多态性的个体,其TG和TC升高,促炎细胞因子增加,与动脉粥样硬化、 冠状动脉疾病或代谢综合征等慢性病变直接相关[37]。GO和KEGG富集分析显示,JSHS通过作用于多种生物过程,如胆固醇代谢、胆固醇平衡、胆固醇储存的负向调节以及低密度脂蛋白颗粒重塑,来调控脂质代谢和动脉粥样硬化通路、脂肪细胞脂肪分解调节通路、胆汁分泌通路和PPAR信号通路,从而改善HLP。通过分子对接发现,JSHS活性成分与核心靶点之间亲和力强,能相互作用,初步验证其作用机制。
综上所述,本研究揭示大黄酸、决明内酯、豆甾醇、芦荟大黄素、菜油甾醇、红链霉素为JSHS降脂的主要活性成分,INS、IL-6、PPARG、IL-1β和LEP为JSHS降脂的核心作用靶点,体现中药“多成分、多靶点、多通路”的特点,初步阐明决明子、山楂、荷叶降脂的作用机制。但网络药理学与分子对接存在模型及物理构象的局限性,难以全面反映其整体作用机制。后续可以通过分子生物学技术深入研究,优化配伍比例,使用不同种类的动物模型,开展临床试验,进一步验证决明子、山楂、荷叶治疗高脂血症的有效性和安全性。
参考文献
[1] 唐瑜,张依娜,邹远荣,等.沙棘叶治疗高脂血症的药效物质基础[J].中国实验方剂学杂志,2022,28(22):116-122.
[2] 王增武,郭远林,等.中国血脂管理指南(基层版2024)[J].中国循环杂志,2024,39(4):313-321.
[3] 罗雪霞,王思敏,陈紫航,等.基于网络药理学探讨五苓散防治高脂血症的作用机制[J].包头医学院学报,2022,38(7):51-58.
[4] 刘学贵,李知明,刘长风,等.基于网络药理学探讨山楂叶抗高脂血症的作用机制及初步验证[J].食品工业科技,2022,43(12):36-45.
[5] ZHAO L Y, HUANG W, YUAN Q X, et al. Hypolipidaemic effects and mechanisms of the main component of Opuntiadillenii Haw. polysaccharides in high-fat emulsion-induced hyperlipidaemic rats[J]. Food Chemistry,2012,134(2):964-971.
[6] 张凯,张昭,范永芳,等.药食同源药材黄精玉竹营养及生物活性成分分析[J].中国现代中药,2022,24(8):1463-1472.
[7] 董玉洁,蒋沅岐,刘毅,等.决明子的化学成分、药理作用及质量标志物预测分析[J]. 中草药,2021,52(9):2719-2732.
[8] 李丹,董开心,刘燕华,等.降脂类中药降脂成分及降脂机制的研究进展[J].江西医药,2020,55(11):1736-1740.
[9] 国家药典委员会.中华人民共和国药典:一部[M].北京:中国医药科技出版社,2020:33.
[10] 史国玉,武卫红,商庆节,等.药食两用山楂的药理作用及保健应用研究进展[J].现代食品,2020,6(15):126-128.
[11] 江健,许倩楠,车莉,等.荷叶中生物碱类化合物及其降血脂活性研究[J].中国中药杂志,2024,49(19):5238-5243.
[12] 林平发,方文清,江冬英.降脂减肥袋泡茶对高脂血症小鼠血脂的调节作用研究[J]. 湖北医药学院学报,2017,36(1):74-77.
[13] 于效力.明楂首乌降脂汤治疗高脂血症64 例报道[J].甘肃中医,2005,18(8):18-19.
[14] 牛明,张斯琴,张博,等.《网络药理学评价方法指南》解读[J].中草药,2021,52(14):4119-4129.
[15] MENG X Y, ZHANG H X, MEZEI M, et al. Molecular docking: a powerful approach for structure-based drug discovery[J].Current Computer-Aided Drug Design,2011,7(2):146-157.
[16] 姚运秀,贺桢翔,刘晓凤,等.基于网络药理学和分子对接技术的抗病毒颗粒治疗新型冠状病毒肺炎(COVID-19) 的潜在物质基础研究[J].中草药,2020,51(6):1386-1396.
[17] 孙敬勇,杨书斌,谢鸿霞,等.山楂化学成分研究[J].中草药,2002,33(6):6-9.
[18] 晏仁义,魏洁麟,杨滨.山楂化学成分研究[J].时珍国医国药,2013,24(5):1066-1068.
[19] 斯建勇,高光跃,陈迪华.云南山楂果化学成分的研究[J].天然产物研究与开发,1994,6(2):49-51.
[20] 董嘉琪,陈金鹏,龚苏晓,等.山楂的化学成分、药理作用及质量标志物(Q-Marker) 预测[J]. 中草药,2021,52(9):2801-2818.
[21] 崔洁,刘心悦,杨相,等.不同采收期对不同产地山楂综合品质的影响[J].西北药学杂志,2020,35(5):633-638.
[22] 张培成,徐绥绪,郭虹.山楂果化学成分的研究[J].沈阳化工学院学报,1999,13(2):6-8.
[23] 时岩鹏,丁杏苞. 山楂化学成分的研究[J].中草药,2000,31(3):15-16.
[24] 王春雷,芦柏震,侯桂兰.山楂的化学成分、药理作用及临床应用[J].海峡药学,2010,22(3):75-78.
[25] HSIN K Y, GHOSS, KITANO H. Combining machine learning systems and multiple docking simulation packages to improve docking prediction reliability for network pharmacology[J]. Public Library of Science One,2013,8(12):e83922.
[26] 刘少鹤.带你了解高脂血症[J].人人健康,2024,43(19):26-27.
27] 许鹏飞,孙学斌,黄尹琦,等.决明子降脂有效成分的研究进展[J].中华中医药学刊,2018,36(1):150-153.
[28] 朱周靓,张世鑫,郑云燕,等.决明子提取物对高脂血症大鼠血脂和肝肾功能的影响[J].预防医学,2021,33(12):1290-1294.
[29] 周嫦,彭珑萍,董艺丹,等.决明子治疗高脂血症的网络药理学研究及斑马鱼实验验证[J].上海中医药大学学报,2024,38(4):71-80.
[30] BAKRIS, BENKHAIRA N, BOUYAHYAI, et al. Health benefits and pharmacological properties of stigmasterol[J]. Antioxidants (Basel) ,2022,11(10) :1912.
[31] ZHAN Y, GU Y, JIAN J, et al. Stigmasterol attenuates hepaticsteatosis in rats by strengthening the intestinal barrier and improving bile acid metabolism[J]. NPJ Science of Food,2022,6(1):38.
[32] 梁天坚,李黎明,李本杰,等.基于网络药理学分析大柴胡汤治疗高脂血症的作用机制[J].中成药,2021,43(6):1645-1652.
[33] FARMER S R. Transcriptional control of adipocyte formation[J]. Cell Metabolism,2006,4(4):263-273.
[34] LEHRKE M, LAZA M A. The many faces of PPAR gamma[J]. Cell,2005,123(6):993-999.
[35] LEEJ E, GE K. Transcriptional and epigenetic regulation of PPARγ expression during adipogenesis[J]. Celland Bioscience,2014,4(1) :29.
[36] NETE M G, DINARELL C A. More than inflammation: interleukin-1beta polymorphisms and the lipid metabolism[J].Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism,2011,96 (5) :1279-1281.
[37] DELGADO LISTJ, GARCI RIO A, PEREZ MARTINE P, et al. Interleukin1B variant-1473G/C (rs1143623) influences triglyceride and interleukin 6 metabolism[J]. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 2011,96(5):E816-E820.
基金项目:广西科技重大专项(桂科 AA22096020);中国科学院西部青年学者(人字〔2023〕16 号); 广西植物功能物质与资源持续利用重点实验室项目(ZRJJ2023-7)
作者简介:薛佳丽(1999—),女,桂林医学院硕士研究生,研究方向为药物研发与转化。
通讯作者:潘争红(1979—), 男,博 士,广西植物研究所研究员,硕士生导师,研究方向为天然药物化学。 E-mail:pan7260@126.com
本文引用格式:薛佳丽,谭兰芳,李连春,宁德生,符毓夏,刘婷,潘争红.基于网络药理学探究决明子-山楂-荷叶水提物改善高脂血症作用机制[J].亚太传统医药,2025,21(11):18-27.
请点击“阅读原文”查看全文内容!
延伸阅读:
《亚太传统医药》诚聘审稿专家
征稿启事 | “中医药与经济社会发展” 专题
喜讯!《亚太传统医药》影响因子突破1.0
热烈祝贺本刊主编陈士林教授当选中国工程院院士
《亚太传统医药》被日本科学技术振兴机构数据库(JST)收录
《亚太传统医药》第二届编委会成立暨第一次会议成功召开
《亚太传统医药》在中华中医药学会期刊年度社会效益评价考核中喜获“优秀”等级
喜报!《亚太传统医药》成功入选《中国学术期刊影响因子年报》统计源期刊