新型模块化肽纳米纤维:在细菌膜上自组装,攻克抗菌素耐药性
全球范围内,抗生素的滥用和过度使用已导致抗菌素耐药性问题日益严峻,耐多药细菌感染正成为威胁公众健康的主要杀手。传统抗生素通过作用于细菌内部的特定靶点来杀灭细菌,这种方式极易诱导细菌产生耐药性。尽管自然界中存在的抗菌肽(AMPs)通过裂解细菌膜发挥作用,理论上能降低耐药性发展的风险,但其临床应用面临三大障碍:分子量大导致制造成本高、体内稳定性差以及对哺乳动物细胞膜的非特异性结合毒性。系统性的化学修饰虽能提升稳定性,却可能带来比感染本身更严重的毒性问题。
针对上述挑战,西湖大学王怀民副教授、哈佛医学院陶伟教授合作,开发了一种模块化肽技术——Bip-FK9。该分子通过在细菌表面自组装成纳米纤维,实现对耐药病原菌的选择性破坏(图1a)。研究利用冷冻电子显微镜、分子动力学模拟、脂质纳米颗粒膜模拟物及结合热力学等手段揭示,该肽首先形成短纳米纤维锚定在细菌膜上的磷脂酰甘油(PG)上,随后延伸为长纤维穿透并使细菌膜不稳定,且不会诱导细菌产生耐药性。实验证明,从被杀死的细菌中回收的纳米纤维仍保留抗菌活性,并在体外致密细菌种群中表现优于万古霉素及多种经典抗菌肽。在耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)诱导的肺炎小鼠模型中,雾化吸入的肽纳米纤维能根除肺部感染并恢复肺结构,且未检测到明显毒性。该研究成果以“Modular peptide nanofibres that self-assemble on bacterial membranes overcome antimicrobial resistance”为题,于2026年5月20日发表于《Nature Biomedical Engineering》杂志。
模块化设计与筛选
研究团队提出了一种通用的分子结构设计理念:该分子由三部分组成——用于识别细菌膜磷脂双层的细菌膜靶向锚定基团、促进自组装的连接子(二苯丙氨酸FF)以及源自天然抗菌肽库的阳离子 minimalist 肽(图1a)。为了筛选出最优的 N 端锚定基团,研究人员测试了六种不同的疏水基团(图1a)。结果表明,经 Bip(联苯基)修饰后的肽(Bip-FK9)抗 MRSA 活性远高于未经修饰的肽及其他基团修饰的肽(图1b)。膜损伤实验进一步证实,Bip-FK9 能最大程度地破坏细菌膜完整性(图1c)。分子动力学模拟揭示了其作用机制:与其他肽相比,Bip-FK9 更倾向于嵌入细菌膜中(图1d),其质心与磷脂双层的距离最近(图1e),与细胞膜的接触面积更大、结合能更低(扩展数据图1b, c),并在膜上创造了最大的空腔体积,实现了最密集的插入(图1f, g)。这些结果表明 Bip 是引导 minimalist 肽与细菌膜相互作用并杀灭细菌的最佳封端基团。
图1 | Bip-FK9 用于对抗 MRSA 的模块化设计及 FK9 与不同膜锚修饰 FK9 的分子动力学模拟 a, Bip-FK9 设计原理示意图,该分子由肽 N 端的合适膜锚、自组装促进基序(FF)以及从肽库中截取的 minimalist 肽组成。minimalist 肽是从天然来源(宿主防御肽、临床试验中的肽以及 APD3 抗菌肽数据库中的肽)中筛选和截取的。右侧图示展示了纤维结构穿过细菌膜并沿膜表面生长的过程。一旦纳米纤维在 MRSA 上形成,被处理的 MRSA 即可杀死新一批 MRSA。 b, 不同锚修饰肽(8 μM)处理 MRSA 24 小时后的细菌活力。FK9,FFKIKKWKLK;Chl-FK9,Chl-FFKIKKWKLK;Ada-FK9,Ada-FFKIKKWKLK;Nap-FK9,Nap-FFKIKKWKLK;Oct-FK9,Oct-FFKIKKWKLK;Iso-FK9,Iso-FFKIKKWKLK。数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 c, 通过 NPN 摄取实验测量 MRSA 的膜完整性。数据以均值 ± 标准差 (n=6) 表示。 d, 分子动力学模拟的代表性结果,分别显示 Bip-FK9、FK9 和 Nap-FK9 与脂质双层的相互作用。不同时间点分别代表开始阶段、膜接近、膜穿透和平衡阶段。脂质双层由 PC:PG (7:3) 构建。 e, 分子动力学模拟中平衡阶段计算的肽质心与脂质双层之间的距离。 f, 分子动力学模拟中平衡阶段肽和双层的代表性构象。 g, 分子动力学模拟中平衡阶段由肽插入膜在脂质双层上产生的空腔体积。 b 图中的统计显著性使用非配对双尾 Student's t 检验确定。
体外抗菌特性与性能
研究人员对 Bip-FK9 的特性进行了深入表征。圆二色光谱显示 Bip-FK9 形成 β-折叠样结构(图2a),冷冻电镜图像则直接观察到其自组装形成的纳米纤维(图2b)。时间-浓度依赖性杀菌实验表明,在 32 μM 浓度下,Bip-FK9 能持续抑制细菌生长(图2c),在 8 小时内使 MRSA 浓度降低 5 个数量级(扩展数据图2c)。更重要的是,Bip-FK9 能有效破坏已形成的 MRSA 生物膜(图2d)。场发射扫描电镜观察到 Bip-FK9 结构附着并包裹 MRSA 表面(图2e),共聚焦显微镜的活死染色也证实了其对生物膜的良好穿透与杀灭效果(图2f)。在连续 30 代的亚抑菌浓度暴露中,MRSA 未对 Bip-FK9 产生耐药性,而对环丙沙星的耐药性在 5 代后即出现(图2g)。
高效的杀菌能力与可回收性
面对高浓度的 MRSA(1×10⁸ CFU/ml),Bip-FK9 能在 4 小时内将其彻底杀灭(图2i)。更令人惊奇的是,被 Bip-FK9 杀死的 MRSA 沉淀物(Bip-FK9-MRSA)仍能杀死 98.32% 的新鲜 MRSA(图2j)。通过 pH 4 的酸性水从死菌表面洗脱回收的 Bip-FK9,重新中和后再次与新一批 MRSA 共孵育,仍能杀死 99.9998% 的细菌(图2k),且该回收杀灭过程可高效循环多达六次(扩展数据图2f)。与传统抗生素万古霉素相比,Bip-FK9 仅需 128 μM 即可将 MRSA 浓度降至检测极限,而万古霉素则需要 512 μM(图2l)。在与多种经典抗菌肽(如蜂毒肽、Pexiganan acetate、Ovispirin 等)的对比中,Bip-FK9 在保持良好生物相容性的同时(A549 细胞存活率 >90%),其杀菌速度也表现出显著优势(扩展数据图2g)。
图2 | Bip-FK9 的表征及其体外杀菌活性 a, Bip-FF、K7 和 Bip-FK9 的圆二色光谱。 b, Bip-FK9(128 μM 于 PBS 缓冲液中)的冷冻电镜图像。比例尺,100 nm。 c, 不同肽(32 μM)处理后 MRSA 的时间依赖性生长曲线。数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 d, 肽处理 4 小时后 MRSA 生物膜的活力。 e, Bip-FF、K7 和 Bip-FK9 处理下 MRSA 生物膜的场发射扫描电镜图像。比例尺,1 μm。 f, Bip-FF、K7 和 Bip-FK9 处理下 MRSA 生物膜的激光共聚焦荧光显微镜图像。活细菌被 SYTO9(绿色)染色,死细菌被 PI(红色)染色。比例尺,160 μm。 g, MRSA 在亚抑菌浓度(1/2×)Bip-FK9 和环丙沙星处理下的耐药性获得研究。 h, 示意图说明 Bip-FK9 能杀死 MRSA,且处理后的 MRSA 随后发挥抗菌活性,进而强烈触发大量细菌死亡。Bip-FK9 可被回收以杀死新一批 MRSA。步骤 1,在 1.5 ml EP 管中将 MRSA 与 Bip-FK9 溶液(pH=7.4)混合;步骤 2,离心 EP 管并去除上清液;步骤 3,向 EP 管中加入新一批 MRSA 溶液;步骤 4,用水(pH=4)重悬 MRSA 沉淀,以溶解 MRSA 表面的 Bip-FK9;步骤 5,离心 EP 管并收集上清液;步骤 6,将上清液 pH 调至 7.4,然后用该上清液重悬活的 MRSA。 i, 与 128 μM Bip-FK9 共孵育的浮游 MRSA(1×10⁸ CFU ml⁻¹)的活力。共孵育后,使用 10 μl 混合物通过涂布平板法进行 CFU 定量。 j, 与 Bip-FK9-MRSA 共孵育 8 小时的浮游 MRSA 的活力。Bip-FK9 杀死 MRSA 后,带有 Bip-FK9 纳米纤维的 MRSA 被命名为 Bip-FK9-MRSA。相应的 LB 琼脂平板显示在右侧。MRSA 上的 Bip-FK9 纳米纤维可以杀死新一批 MRSA。 k, 可回收 Bip-FK9 的抗菌研究。将 Bip-FK9-MRSA 溶于水(pH=4)中并离心以去除 MRSA。将上清液 pH 调至 7.4。然后将含有 Bip-FK9 的上清液与 MRSA 共孵育 8 小时,产生高效抗菌效果。相应的 LB 琼脂平板显示在右侧。 l, 分别用不同浓度的万古霉素或 Bip-FK9 处理的 MRSA 的菌落形成单位(CFU ml⁻¹)。数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 d 和 i-k 中的统计显著性使用非配对双尾 Student's t 检验确定,单个数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。
抗菌机制解析
冷冻电镜观察显示,Bip-FK9 首先在 MRSA 表面形成微小的短纳米纤维,随后逐渐增多并延长(图3a, b)。随着纳米纤维的形成,细菌膜完整性受损(PI 荧光增强),ATP 水平下降(图3c),膜电位被完全去极化(图3d)。研究表明,细菌细胞壁组分(脂磷壁酸和肽聚糖)的加入并未削弱 Bip-FK9 的活性(图3h),而细菌膜中的磷脂酰甘油(PG)则是其关键靶点——游离 PG 的加入显著挽救了细菌存活率(图3i, j)。等温滴定量热法测得 Bip-FK9 与 PG 的解离常数(KD)低至 8.49×10⁻² μM(图3k),显示出极高的结合亲和力。核磁共振实验进一步证实了 Bip-FK9 中联苯基与 PG 中二油酰基之间的相互作用(图3l, m, n)。
图3 | Bip-FK9 的抗菌机制 a, Bip-FK9 与 MRSA 膜相互作用的示意图。共孵育 4 小时后,Bip-FK9 的组装体插入细菌细胞膜。小的纳米纤维可与细菌膜的 PG 相互作用。比例尺,200 nm。 b, 暴露于不同肽 4 小时和 8 小时的 MRSA 的冷冻电镜图像。比例尺,200 nm。放大图像中的比例尺,400 nm。 c, 肽处理后 MRSA 的细胞内 ATP 水平。单个数据以均值 ± 标准差 (n=5) 表示。 d, 肽对 MRSA 的细菌膜去极化效应。单个数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 e, 由 PC:PG = 7:3 组成的脂质纳米颗粒的冷冻电镜图像。比例尺,200 nm。 f, LNPs、Bip-FK9 以及 LNPs 和 Bip-FK9 混合物的 Zeta 电位。 g, LNPs、Bip-FK9 以及 LNPs 和 Bip-FK9 混合物的圆二色光谱。 h,i, 在不同细菌细胞壁组分 (h) 和细菌膜组分 (i) 存在下,Bip-FK9 处理后细菌浓度的变化。单个数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 j, 在不同浓度 PG 存在下,Bip-FK9 处理后细菌浓度的变化。单个数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 k, Bip-FK9 与 PG 相互作用的等温滴定量热法分析。Bip-FK9 与 PG 的解离常数 KD 值为 8.49×10⁻⁸ M。 l, BipF-FK9 和 BipF-FK9-PG 的 ¹⁹F 谱。 m, BipF-FK9 的 NOESY 谱。 n, BipF-FK9-PG 的 NOESY 谱。 c、d 和 h-j 中的统计分析使用非配对双尾 Student's t 检验确定。NS,不显著。
动态插入与自组装过程
分子动力学模拟揭示了 Bip-FK9 的自组装及膜插入动态过程。模拟显示,在 10 ns 内,Bip-FK9 分子通过疏水作用、氢键相互作用和 π-π 堆积快速自组装形成稳定的纳米纤维(图4a, b, c, d, e, f)。随后,该纳米纤维逐渐插入细菌膜的一侧,与磷脂双层形成紧密附着(图4g, h)。在 50 ns 时,纳米纤维与 PG 分子之间形成了稳定的氢键和疏水相互作用(图4i)。随着纳米纤维的插入,其与膜之间的距离最终接近 0.1 nm(图4j),且整个系统达到稳定状态,纳米纤维无法从膜上解离(图4k, l, m)。这一系列模拟结果完美解释了 Bip-FK9 如何在膜上稳定存在并发挥杀伤作用。
图4 | Bip-FK9 纳米纤维动态插入细菌膜 a, Bip-FK9 自组装模型在分子动力学模拟过程(100 ns)中的均方根偏差,以评估其稳定性。在此过程中,平衡时间点由 RMSD 确定,其在 10 ns 后在 4 nm 附近稳定,波动在 1 mm 内,表明达到了稳态。 b, 分子动力学模拟中 Bip-FK9 自组装过程在 0 ns、25 ns、50 ns、75 ns 和 100 ns 时的代表性构象。 c, Bip-FK9 自组装模型残基随时间变化的 RMSF,以表征物质结构的变化程度。 d,e, 系统氢键的变化。图中显示了 Bip-FK9 纳米纤维中的分子间氢键 (d) 以及肽分子与水之间的氢键数量 (e)。 f, 自组装过程中 Bip-FK9 的溶剂可及表面积。 g, Bip-FK9-BM 模型在分子动力学模拟过程(50 ns)中的 RMSD,以评估其稳定性。 h, 分子动力学模拟结果,显示 Bip-FK9 纳米纤维在细菌膜表面于 0 ns、10 ns、20 ns、30 ns、40 ns 和 50 ns 时的动态构象变化。 i, 50 ns 时 Bip-FK9-BM 系统中 Bip-FK9 纳米纤维与磷脂双层相互作用的构象放大视图。疏水相互作用(黄点);氢键相互作用(紫点);PG 分子(灰色)。 j, 分子动力学模拟中 Bip-FK9 纳米纤维与脂质双层之间的距离。 k, Bip-FK9-BM 系统残基的 RMSF。 l, Bip-FK9 纳米纤维与脂质双层之间的氢键。 m, 分子动力学模拟中 Bip-FK9-BM 系统的 SASA。
生物相容性与体内分布
在进入动物实验前,研究团队评估了 Bip-FK9 的生物安全性。结果显示,Bip-FK9 对 A549 细胞和 RAW264.7 细胞无明显细胞毒性(扩展数据图5a),在高达 320 μM(40 倍于 MIC)浓度下,溶血率仍低于 5%(扩展数据图5b)。共聚焦显微镜观察证实,Bip-FK9 处理后的 A549 细胞膜保持完整(扩展数据图5c)。尽管 Bip-FK9 对磷脂酰丝氨酸(PS)也有一定亲和力(KD=415 nM),但由于 PS 主要存在于哺乳动物细胞膜内叶,正常生理条件下 Bip-FK9 无法接触并攻击哺乳动物细胞(扩展数据图5d, e, f, g)。在连续 7 天每天两次雾化给药的小鼠中,未观察到体重下降(图5a)、细胞因子异常(图5b)、细胞分类计数异常(图5c)、过敏标志物升高及主要器官病理损伤(图5d, 扩展数据图6a, e, f, g)。药代动力学研究表明,Bip-FK9 在肺组织中稳定性良好,给药 8 小时后仍保留 15.01%(图5e),且能特异性地在肺组织积累并停留至少 4 小时(图5f, g, 扩展数据图6i)。
图5 | Bip-FK9 在体内的生物安全性及其对 MRSA 诱导的致死性肺炎的治疗效果 a, 连续 7 天雾化给药 0.9% 生理盐水或 Bip-FK9 的小鼠体重。数据以均值 ± 标准差 (n=6) 表示。 b, 通过细胞计数珠阵列法测定支气管肺泡灌洗液中的炎症细胞因子水平。数据以均值 ± 标准差 (n=6) 表示。 c, 吉姆萨染色后通过标准形态学对 BALF 中的细胞进行计数。数据以均值 ± 标准差 (n=6) 表示。 d, 连续 7 天雾化给药后主要器官(心脏、肝脏、脾脏、肺、肾脏)的组织学图像(苏木精-伊红染色)。比例尺,100 μm。 e, Bip-FK9 在小鼠肺组织中的稳定性。单个数据以均值 ± 标准差 (n=5) 表示。 f, 雾化给予 Cy5.5 标记的 Bip-FK9 后 1 小时和 4 小时小鼠离体器官的荧光图像。 g, 雾化给予 Cy5.5 标记的 Bip-FK9 后 1 小时肺切片的共聚焦显微镜图像。蓝色(DAPI)表示细胞核,红色(Cy5.5)表示 Bip-FK9-Cy5.5。比例尺,100 μm。放大图像中的比例尺,20 μm。 h, 通过气管内注射建立 MRSA 诱导的肺炎小鼠模型的示意图。 i, 建立肺炎模型和治疗过程的示意图和时间线。 j, 治疗后第 2、4、6 天从各组小鼠肺部回收的 MRSA 的菌落形成单位。生理盐水组(n=6)、Bip-FF 组(n=6)、K7 组(n=6)、万古霉素组(n=6)和 Bip-FK9 组(n=6)。数据以均值 ± 标准差 (n=5) 表示。 k, 接受 Bip-FK9 或其他药物治疗的肺炎小鼠的生存曲线。0.9% 生理盐水组(n=10)、Bip-FF 组(n=11)、K7 组(n=12)、万古霉素组(n=13)和 Bip-FK9 组(n=12)。 l, 小鼠肺部的 H&E 图像,显示肺组织随时间的修复和恶化情况(n=9,显示代表性图像)。显示了健康组、第 2 天和第 4 天的 0.9% 生理盐水组、第 10 天的万古霉素组和第 10 天的 Bip-FK9 组。比例尺,100 μm。放大视图中的比例尺,40 μm。 m, 健康组、第 10 天万古霉素组和第 10 天 Bip-FK9 组小鼠肺部 H&E 图像的平均线性截距量化。每个点代表来自一个 10× 视野的数据。单个数据以均值 ± 标准差 (n=15) 表示。 n, 肺切片中 CD68 阳性巨噬细胞的量化。使用 QuPath v0.2.0 软件从每个切片的 9 个随机选择区域(10× 视野)量化肺泡部位的阳性细胞数量。每个肺至少一个切片。单个数据以均值 ± 标准差 (n=3) 表示。 b、c、m 和 n 中的统计分析使用双尾 Student's t 检验进行。j 中的统计分析使用 Mann-Whitney 检验进行。
体内抗感染疗效
在 MRSA 诱导的致死性肺炎小鼠模型中(图5h, i),雾化吸入 Bip-FK9 治疗展现了卓越的疗效。治疗后第 2 天,Bip-FK9 组小鼠肺部的 MRSA 数量比生理盐水组低约 1600 倍,比万古霉素组低约 50 倍;到第 4 天,Bip-FK9 组已降至检测极限,而万古霉素组仍有约 10⁴ CFU/ml(图5j)。在为期 10 天的观察期内,Bip-FK9 治疗组小鼠的存活率高达 84%,而生理盐水组和 K7 组在第 10 天前已全部死亡,万古霉素治疗组的存活率仅为 46%(图5k)。组织病理学观察显示,生理盐水组小鼠肺泡融合、气管壁增厚、免疫细胞大量浸润(图5l, 扩展数据图7c);而 Bip-FK9 治疗组小鼠在第 4 天即开始恢复,第 10 天时肺部炎症细胞水平已恢复至与健康组相当(图5l, n),肺泡平均内衬间隔也恢复正常(图5m)。这些结果表明 Bip-FK9 不仅能有效清除肺部细菌,还能快速修复感染造成的肺损伤。
总结与展望
通过合理设计包含膜锚定基序、自组装连接子和阳离子 minimalist 肽的抗菌分子,研究团队证明了该设计原理的普适性,并验证了其对多种广谱细菌的活性(表1)。Bip-FK9 作为一种新型抗菌剂,能在不诱导获得性耐药的情况下对抗耐多药细菌。其巨大的治疗窗口、优异的抗菌效率以及在 MRSA 诱导的肺炎小鼠模型中显著提高的存活率,使其成为治疗化脓性关节炎、急性肺炎和椎间盘感染等疾病的理想候选药物。尽管 MRSA 的细胞壁屏障会部分阻碍 Bip-FK9 与膜上 PG 的结合,在一定程度上降低了抗菌活性,但综合体内外抗菌实验及生物安全性评估,Bip-FK9 仍然是一种极具前景的有效抗菌剂。
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