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康磊
北京大学第一医院核医学科室主任、党支部书记、教授、主任医师、博士生导师、博士后合作导师,北京市杰青,北京市科技新星。任中华医学会、中国核学会、中国医师协会、北京医学会核医学分会等学会学组委员,中国感光学会等学会常务委员、委员、理事,AJNMMI 杂志高级编委,VIEW 和《中国肿瘤临床》青年编委。
放射性核素药物在靶向紧密连接蛋白 Claudin18.2显像中的研究进展 PPS
黄文鹏 1,刘永顺 2,孙昕瑶 1,邱永康 1,康磊 1*
(1. 北京大学第一医院核医学科,北京 100034;2. 北京大学第一医院医学影像学科,北京 100034)
[摘要]紧密连接蛋白 18.2 亚型(Claudin-18 isoform 2, Claudin18.2)是 Claudin18 家族中特异表达的亚型,在正常生理条件下主要低水平分布于胃黏膜分化上皮细胞中。然而,在多种恶性肿瘤中,Claudin18.2 呈异常高表达,并在肿瘤细胞的分化、增殖及迁移过程中发挥关键作用。免疫正电子发射体层仪(immuno-positron emission tomography, immunoPET)与免疫单光子发射计算机断层成像(immuno-single photon emission computed tomography, immunoSPECT)为恶性肿瘤中 Claudin18.2 表达的无创评估提供了有力手段,有望提高诊断准确性并指导个体化治疗方案的制定。通过对放射性核素药物在 Claudin18.2 靶向诊疗中的研究进展进行介绍,分析其临床转化所面临的挑战,展望未来研究方向,旨在为相关靶向药物的临床应用与推广提供参考依据。
紧密连接蛋白(Claudin)家族是一类定位于上皮和内皮细胞紧密连接部位的跨膜蛋白,在维持细胞间黏附、调控上皮极性及调节组织屏障的旁细胞通透性等方面发挥关键作用 [1]。Claudin18.2 是肺部和胃部上皮细胞紧密连接的重要组成部分,该基因通过可变剪接产生 2 种蛋白亚型:Claudin18.1 主要在肺组织中表达;而 Claudin18.2 则特异性表达于胃黏膜分化上皮细胞中 [2]。研究表明,Claudin18.2 在多种恶性肿瘤中呈异常高表达,包括胰腺癌、结直肠癌、乳腺癌和肝细胞癌等 [3]。在上述肿瘤类型中,Claudin18.2 通过调控细胞分化、增殖和迁移,促进肿瘤进展,并与患者的预后及治疗反应密切相关 [4]。因此,准确量化 Claudin18.2 的表达对于筛选可能受益于靶向治疗的患者具有重要意义。尽管免疫组织化学染色仍是临床评估 Claudin18.2 表达的金标准,但其存在诸多局限性,包括操作侵入性、样本难以反映肿瘤内部异质性等问题 [5]。
免疫正电子发射体层仪(immuno-positron emis-sion tomography,immunoPET)与免疫单光子发射计 算 机 断 层 成 像(immuno-single photon emissioncomputed tomography,immunoSPECT)结合了核医学成像的高灵敏度与抗体靶向的高特异性,为Claudin18.2 在体内的可视化与定量分析提供了强有力的无创替代方案,能够实现靶点分布的实时评估,并动态监测治疗过程中表达水平的变化。本文回顾了放射性核素标记的 Claudin18.2 靶向药物的研究进展,系统分析其在消化系统恶性肿瘤诊疗一体化中的应用潜力与局限性,旨在为该靶点的临床转化与精准医学发展提供理论支持与实践参考(见图 1)。
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Claudin18.2 表达调控机制
Claudin18.2 的表达主要受到转录水平的调控,其启动子及外显子区域富含胞嘧啶-鸟嘌呤二核苷酸序列(cytosine-phosphate-guanine dinucleotide,CpG)[6]。当这些 CpG 位点发生启动子区甲基化修饰时,会抑制转录因子的结合,从而下调 Claudin18.2 的表达。此外,多个信号通路亦参与其转录调控,包括蛋白激酶 C(protein kinase C,PKC)通路、丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK) 通 路 及 人 表 皮 生 长 因 子 受 体(human epidermal growth factor receptor,HER)通路。
PKC 作为细胞内重要信号通路,广泛参与转录活性、分泌、细胞增殖及免疫应答等生物学过程[7]。PKC 的激活可显著上调 Claudin18.2 的表达,提示PKC 可能为 Claudin18.2 转录的正向调控因子 [6]。细胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)/MAPK 通路可通过磷酸化激活活化蛋白-1 转 录 因 子 复 合 物(activator protein-1,AP-1),增强其与Claudin18.2 启动子的结合,从而促进基因转录[8]。HER 家族包括表皮生长因子受 体(epidermal growth factor receptor,EGFR)、HER2、HER3 和 HER4 4 种跨膜酪氨酸激酶受体。EGFR/ERK 信号通路可上调 Claudin18 表 达,而Claudin18 表达的增强又可进一步促进 ERK1/2 活性,形成正反馈环路,加速肿瘤细胞的增殖与侵袭,该机制在胆管癌中尤为显著 [9]。此外,HER2/HER3 信号轴也被证实参与 Claudin18 表达及其调控细胞屏障功能。尽管 Claudin18.2 在多种肿瘤中展现出显著的治疗潜力,其在肿瘤发生发展中的双重功能机制仍有待进一步阐明,以更有效地指导靶向治疗策略的优化与临床转化。
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Claudin18.2 靶点的治疗策略
近年来,Claudin18.2 作为消化系统恶性肿瘤的重要治疗靶点,受到精准肿瘤学领域的广泛关注。目前,针对 Claudin18.2 的治疗策略主要包括单克隆抗体、双特异性抗体(bispecific antibody,BsAb)、抗体-药物偶联物(antibody-drug conjugate,ADC)以及 CAR-T 疗法等多种免疫治疗手段。
2.1 单克隆抗体
单克隆抗体是单一 B 细胞克隆产生的免疫球蛋白,能特异性识别特定抗原表位。目前,针对Claudin18.2 的多种单克隆抗体正处于临床开发阶段,代表性药物包括 IMAB362(zolbetuximab)、TST001(osemitamab)和ASKB589 等。
Zolbetuximab 是首个 Claudin18.2 靶向嵌合IgG1抗体,其通过介导抗体依赖性细胞毒性(antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity,ADCC)、 补 体依赖性细胞毒性(complement-dependent cytotoxicity,CDC)以及诱导细胞凋亡等机制抑制肿瘤生长 [10]。在Ⅰ/Ⅱ期临床试验中,zolbetuximab 展现出良好的安全性与初步疗效 [11]。Ⅲ期 SPOTLIGHT试 验(NCT03504397) 结 果 显 示,zolbetuximab联 合 mFOLFOX6 治疗可显著延长 Claudin18.2 阳性、HER2 阴性的胃癌或胃食管交界癌患者的无进展生存期(10.6 个月 vs 8.7 个月)和总生存期(18.2 个月 vs 15.5 个月)[12]。另一项Ⅲ期临床试验(NCT03653507)进一步验证了其联合卡培他滨、奥沙利铂方案的临床疗效 [13]。基于上述研究结果,zolbetuximab 已获美国食品药品监督管理局(Food and Drug Administration,FDA)批准,作为一线治疗方案用于 Claudin18.2 阳性的局部晚期或转移性胃癌及胃食管交界处腺癌患者[14]。
Osemitamab 是第 2 个进入临床阶段的人源化Claudin18.2 靶向 IgG1 抗体,并在患者源性肿瘤异种移植(patient-derived xenograft,PDX)模型中表现出更优的抗肿瘤效果[15]。Ⅰ期临床研究(NCT04396821、NCT04495296)验证了osemitamab 单药或联合化疗的安全性。2024 年发布的Ⅰ/Ⅱa 期研究结果显示,其联合 nivolumab和 CAPOX 用于晚期胃癌的治疗展现出良好的疗效和可接受的安全性。
ASKB589 为第 2 代人源化 Claudin18.2 抗体,设计初衷在于增强免疫介导的肿瘤细胞清除能力 [16]。该抗体可通过促进 T 细胞浸润和抗原递呈,提升免疫检查点抑制剂的治疗效果。在Ⅰb/Ⅱ期研究(NCT05632939)中,ASKB589 联合化疗和免疫治疗在高 Claudin18.2 表达患者中达到 80% 的客观缓解率(objective response rate,ORR)和 100% 的疾病控制率(disease control rate,DCR),目前已进入全球多中心Ⅲ期临床试验阶段。
因此,基于单克隆抗体的治疗策略已成为Claudin18.2 精准治疗的重要组成部分,未来在患者筛选、联合用药及临床转化等方面具有广阔的发展前景。
2.2 BsAb
BsAb 通过人工工程设计,能够同时识别 2 种不同的抗原或抗原表位,从而实现多靶点协同抗肿瘤作用。近年来,针对 Claudin18.2 的 BsAb 在临床前研究中表现出显著的抗肿瘤活性。例如,Claudin18.2-分化簇 3(cluster of differentiation 3,CD3)BsAb 可在胃癌和胰腺癌的 PDX 模型中有效抑制肿瘤生长 [17];而 Claudin18.2-分化簇 28(cluster of differentiation 28,CD28)BsAb 则可增强 CD8+ T细胞的激活,抑制免疫抑制性细胞群,促进干扰素-γ和肿瘤坏死因子-α 的释放,从而改善肿瘤免疫微环境 [18]。Claudin18.2-程序性死亡配体 1(programmeddeath-ligand 1,PD-L1)BsAb(Q-1802)结合了免疫检查点阻断与 ADCC机制,体内外研究均显示其具有较强的抗肿瘤活性[19]。目前,该药物正处于Ⅰ期临床试验阶段(NCT04856150),剂量递增已达20 mg · kg-1,未见剂量限制性毒性,主要不良事件包括恶心、呕吐和腹痛。
其他 Claudin18.2 靶向 BsAb 也正在积极研发中。 例 如,Gresonitamab(AMG-910)是一种引导 CD3+ T 细胞攻击 Claudin18.2 阳性肿瘤细胞的双特异性 T 细胞接合器,目前正进行Ⅰ期临床试验(NCT04260191);此外,AZD5863(NCT06005493)和ASP2138(NCT05365581)等候选药物也处于早期临床开发阶段。
尽管 BsAb 具有较高的治疗潜力,但其开发过程较单克隆抗体更为复杂,涉及抗体结构设计、表达系统优化及纯化工艺等多个关键技术环节。此外,细胞因子释放综合征(cytokine release syndrome,CRS)等免疫相关毒性反应仍是当前临床研究需重点关注的安全性问题 [20]。
2.3 ADC
ADC 通过将靶向 Claudin18.2 的单克隆抗体与细胞毒性药物偶联,实现对 Claudin18.2 高表达肿瘤的选择性杀伤。近年来,靶向 Claudin18.2 的多种ADC 已进入临床早期阶段,显示出其在精准肿瘤治疗中的广阔前景。例如,基于可裂解型 auristatin 的Claudin18.2-ADC 在胃癌和胰腺癌模型中表现出显著的抗肿瘤活性,且对正常胃组织无明显毒性 [17]。SYSA1801(EO3021)是一种 Claudin18.2 靶 向的单甲基澳瑞他汀 E(monomethyl auristatin E,MMAE) 偶 联 物,采 用 valine-citrulline 可裂解连接子 [21]。在Ⅰ期临床试验(NCT05009966)中,共纳入 33 例晚期、经治的 Claudin18.2 阳性患者,其中 21 例可评估患者的 ORR 为 38.1%,DCR 为57.1%; 在 胃 癌 亚 组 中,ORR 为 47.1%,DCR 为64.7%。常见不良反应包括恶心、呕吐及干眼症,整体耐受性良好。
CMG901(AZD0901)是首个开发成功的Claudin18.2-ADC,由靶向抗体、可裂解连接子和MMAE 组成,其在体外展现出优于 zolbetuximab 的细胞毒性,并在毒理学评估中具有良好的安全性 [22]。在 Ⅰ 期 临 床 试 验(NCT04805307)中,CMG901在 113 例重度经治的胃癌或胃食管交界癌患者中实现了 42% 的 ORR,主要不良事件为贫血和中性粒细胞减少 [23]。目前,该药物已进入Ⅲ期临床研究(NCT06346392)。
2.4 CAR-T 疗法
CAR-T 疗法通过对自体 T 细胞进行基因工程改造,使其表达可识别肿瘤特异性抗原的嵌合抗原受体,从而实现高度特异性的靶向杀伤 [24]。尽管该策略在血液系统恶性肿瘤中取得了显著成果,其在实体瘤中的应用仍面临诸多挑战,包括靶点选择困难、抗原异质性、CRS 及免疫效应细胞相关神经毒性综合征等。
Claudin18.2 因在正常组织中表达有限而在胃肠道恶性肿瘤中呈选择性高表达,成为实体瘤 CAR-T治疗的理想靶点。基于 hu8E5 和 hu8E5-2I 抗体构建的第 2 代 CAR-T 细胞(如 hu8E5-28Z)可特异识别Claudin18.2,且几乎不与 Claudin18.1 交叉反应,从而有效降低脱靶毒性[25]。在体外实验及PDX模型中,该 CAR-T 细胞可选择性裂解 Claudin18.2 阳性肿瘤细胞,诱导细胞因子释放,并在部分模型中实现完全缓解,且对正常胃黏膜组织无明显毒性。
CT041 是目前临床进展最快的 Claudin18.2 靶向 CAR-T 产品。在Ⅰ期临床试验(NCT03159819)中,该疗法在 Claudin18.2 阳性的转移性胃癌和胰腺癌患者中实现了 33.3% 的ORR。后续研究(NCT03874897) 中,ORR 提升至 48.6%,其中胃癌亚组 ORR 达 到 57.1%,DCR 高 达 75%[26]。目 前, 多 个 Claudin18.2-CAR-T 产品正处于临床开发阶段,包括含 4-1BB共刺激结构域的 LB1908(NCT05539430)、 第3代CAR-T 产品LY011(NCT04966143/77193),以及具备细胞因子释放功能的第 4 代可转向的通用细胞因子介导杀伤的T细胞,如 CT048 与 RD07[27]。
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放射性核素显像无创评估 Claudin18.2 表
放射性核素显像作为一种精准且无创的检测手段,可利用不同半衰期的核素标记分子探针,实现对 Claudin18.2 表达及其体内分布的实时可视化。该技术具备高灵敏性与高特异性,为 Claudin18.2 靶向治疗提供了重要的辅助诊断依据 [28–40](见表 1)。
3.1 免疫 PET 显像
3.1.1 单克隆抗体探针 由于单克隆抗体相对分子质量较大,体内清除速度较慢,往往需较长时间才能获得理想的肿瘤与背景组织之间的对比度。因此,此类分子探针通常需与长半衰期的放射性核素配对使用,如 89Zr(半衰期为 3.3 d)和 124I(半衰期为 4.2 d),以满足延长成像窗口的需求。Chen等 [28] 开发了 89Zr-DFO-TST001 探针,用于非侵入性检测胃癌肿瘤中 Claudin18.2 的表达,从而实现对 Claudin18.2 靶向治疗患者的筛选与疗效评估。在Claudin18.2 阳性肿瘤模型(BGC823Claudin18.2)中,该探针的肿瘤摄取显著高于阴性模型(BGC823)平均标准化摄取值(mean standardized uptake value,SUVmean)(1.11±0.02 vs 0.49±0.03,P=0.0016)。此外,该探针在肿瘤摄取量及靶本比方面均优于18F-FDG,显示出其在 Claudin18.2 阳性病灶中具有更高的成像特异性。然而,该探针在肝和脾中仍存在一定程度的非特异性摄取,可能与脱靶结合或肝胆代谢途径相关。
相较于 89Zr,124I 在获取便利性、合成工艺简化及标记效率等方面具备一定优势。Zhao 等 [29] 成功研制出高亲和力、高特异性的 Claudin18.2 单抗5C9,并将其应用于构建 124I-5C9 免疫 PET 和 Cy5.5/FD1080 荧光探针,实现了对 Claudin18.2 阳性肿瘤的精准识别与术中引导,为肿瘤患者的分层诊疗和个体化手术策略提供了重要工具。Wang 等 [30] 首次评估了 124I-18B10(10L) 这一靶向 Claudin18.2 的人源化放射性探针在消化系统恶性肿瘤(包括胃癌、胰腺癌和胆管癌)患者中的安全性、生物分布、剂量学特征及成像能力,验证了其用于 Claudin18.2 全身表达图谱精准成像的可行性。该探针的放射化学产率超过 95%,与 Claudin18.2 阳性细胞的结合常数(dissociation constant,KD)为 0.346 nmol· L-1。临床共招募 17 例患者(12 例胃癌、4 例胰腺癌、1 例胆管癌),其肿瘤病灶的 SUVmax范围为 0.4~19.5,且未接受靶向治疗者的 SUVmax显著高于已接受治疗者(24 h:6.00±7.38 vs 2.37±1.43,P = 0.042)。成像结果可在治疗前后有效反映病灶中 Claudin18.2表达的动态变化,具备良好的临床转化价值与治疗监测潜力。值得注意的是,为防止 124I 在体内聚集至甲状腺,患者需在成像前后接受预防性碘剂阻断治疗。这一措施在临床操作中存在一定负担与依从性问题,可能限制该成像策略在更大范围内的推广应用。
3.1.2 单域抗体探针 单域抗体(single-domain anti-body,sdAb)是一类由骆驼类动物天然产生的重链 抗 体 可 变 区(variable domain of heavy chain of heavy-chain antibody,VHH)构成的小分子抗体片段,其相对分子质量仅为 12 000~15 000,远小于传统抗体及其片段。相比之下,sdAb 具有出色的水溶性、优异的热和化学稳定性、较强的靶向亲和力、潜在的抗肿瘤活性以及卓越的组织穿透能力 [41]。
Zhong 等 [31] 通过免疫表达高水平 Claudin18.2的细胞系来激活羊驼免疫系统,构建 VHH 噬菌体展示文库,筛选获得高亲和力、高特异性的人源化抗体片段 hu7v3。该片段与人 IgG1 Fc 区域融合形成二价结构的 hu7v3-Fc。在动物实验中,hu7v3-Fc 在SNU-620 胃癌及 MIA PaCa-2-CLDN18.2 胰腺癌模型中均表现出比 zolbetuximab 更强的肿瘤抑制作用。SNU-620 模型中,其在肿瘤组织内的摄取在 72 h 达到峰值 [(49.43±9.86)%ID · g-1],较 zolbetuximab更早饱和,表现出更佳的组织穿透性与靶本比,有望成为治疗 Claudin18.2 阳性实体瘤的新一代生物药物候选分子。
Hu 等 [32] 从抗 Claudin18.2 的纳米抗体库中筛选并构建了 3 种纳米抗体结构,分别为 VHH、VHH-ABD 和 VHH-Fc,系统比较了其亲和力、体内稳定性、药代动力学特征、分布规律及分子影像效果。89Zr 标记后在胃癌模型中的研究显示,89Zr-VHH 的肿瘤摄取最低,而 89Zr-VHH-ABD 在 24 h 达到峰值[(25.78±5.60)%ID · g-1],89Zr-VHH-Fc 则 在 72 h达到最高肿瘤摄取 [(49.43±9.86)%ID · g-1]。阻断实验进一步验证了 89Zr-VHH-Fc 的靶向特异性,组织分布结果亦保持一致。但考虑到肝脏摄取较高的问题,VHH-ABD 在肿瘤摄取率与非特异性组织摄取之间呈现更优的平衡性,显示出更大的临床应用潜力,特别适合作为成像探针用于 Claudin18.2 阳性肿瘤的分子影像。
除了 89Zr 外,Wei 等 [33] 还评估了多种放射性核素(包括 68Ga、64Cu 和 18F)标记的纳米抗体探针 hu19V3,以系统比较不同核素在靶向性、特异性及成像质量方面的表现。3 种探针均可用于特异性识别 Claudin18.2 阳性肿瘤。其中,68Ga-NOTA-hu19V3 可快速显像皮下瘤灶和 PDX 模型,显示出优异的诊断性能,但其在肾脏中的摄取较高(可达30 %ID · g-1);64Cu-NOTA-hu19V3 在 48 h 后肾脏摄取显著下降(从 13.73% 降至 0.11%,P=0.0021),成像对比度更佳,然而未能有效检测早期转移灶;18F-hu19V3 通过点击化学合成,成功显像肺部弥散性病灶,但在肾脏、胆囊及肠道中仍存在一定程度的放射性分布(分别为 4.38 %ID·g-1、6.30 %ID·g-1、7.90%ID·g-1)。这些成像探针在肿瘤的精准诊断、疗效评估及治疗决策中均具有重要应用价值。
Qi 等 [34] 开发并首次在人群中验证了一种新型的 68Ga-NC-BCH 探针。在荷瘤裸鼠中,该探针成功显像 AGSClaudin18.2 肿瘤,注射后 2 h 肿瘤/肌肉比高达 34.86±4.68,显著优于阴性对照。在 11 例Claudin18.2 阳性的胃癌与结直肠癌患者中,共识别出 215 个阳性病灶,且 SUVmax值与免疫组化评分呈显著正相关。与 18F-FDG 相比68Ga-NC-BCH 在腹膜和淋巴结转移灶中显示出更高的肿瘤靶本比,尤其在检测小体积病灶及 18F-FDG 阴性病灶方面更具优势。这些结果表明,68Ga-NC-BCH PET/CT 有望成为 Claudin18.2 靶向精准医学中的重要分子影像工具,用于患者筛选与疗效监测。Wang 等 [35] 筛选获得高亲和力纳米抗体 PHG102,并与螯合剂 TOHP偶联形成复合物 PMD22,进一步标记 68Ga 构建成像探针 68Ga-PMD22。在异种移植瘤模型中,该探针可于 0.5 h 内快速清晰显像阳性瘤体,且 2 h 肿瘤靶本比升至 6.21±2.58,成像对比优于 18F-FDG。在对 17 例胃肠道肿瘤患者进行的临床研究中,15 例具备免疫组化数据,阳性识别准确率高达 93.3%,曲线下面积(area under the ROC curve,AUC)达98.15%。该探针在安全性、特异性和诊断准确性方面均表现出色,未来有望作为 Claudin18.2 靶向治疗的伴随诊断手段。
3.2.2 sdAbs 探针 Bai 等 [40] 通过工程化设计构建了Claudin18.2 靶向纳米抗体 PHG102,并利用 Sortase A 介导的酶促反应实现其与 99mTc 的位点特异性标记,从而提升探针的体内稳定性与靶向性。该策略旨在实现对 Claudin18.2 阳性患者的快速、无创筛选,优化靶向治疗效果。在 BGC823Claudin18.2 小鼠模型中,99mTc-PHG102 在注射后 0.5 h 肿瘤摄取达到峰值 [(4.63±0.81)%ID · g-1],8 h 后仍有显著保留 [(2.10±0.34)%ID · g-1];阻断实验显示其摄取具有高度特异性,摄取量从(4.55±0.63)降至(0.32 ±0.10)%ID · g-1。在初步临床研究中,纳入 8 例 Claudin18.2 阳性肿瘤患者,所有受试者均耐受性良好,未观察到不良反应。SPECT 图像显示,99mTc-PHG102 在肿瘤区域产生稳定而显著的放射性聚集,背景信号较低,显示出良好的成像对比度。这些结果表明,99mTc-PHG102 作为免疫 SPECT 探针,具有在临床中用于评估 Claudin18.2 表达水平及筛选靶向治疗适应人群的应用潜力。
尽管如此,该探针仍面临若干挑战。首先,Claudin18.2 在正常胃黏膜中的生理性表达可能导致胃部背景信号升高,影响成像特异性。其次,纳米抗体快速通过肾脏清除,可能造成肾脏区域的高背景信号,从而干扰邻近器官的成像效果。未来研究可聚焦于探针结构优化,如引入白蛋白结合结构域以延长血浆半衰期,或辅以减少肾摄取的药物(如鱼精蛋白或苹果酸钠)联用策略,以进一步提升其成像质量和临床应用价值。
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结语与展望
Claudin18.2 靶向治疗作为一项新兴策略,正在重塑胃癌和胰腺癌的治疗格局。放射性药物作为分子影像和精准医学的重要支柱,已在胃癌和胰腺癌的临床管理中取得初步成功。多种靶向Claudin18.2的放射性核素药物具备无创、实时、动态监测Claudin18.2 表达及其定量水平的能力,能够特异性揭示肿瘤组织中的异质性摄取,显示出在非侵入性评估 Claudin18.2 体内动态变化方面的巨大潜力,具有广阔的研究与临床应用前景。然而,相关技术仍面临一定的局限性与挑战。未来需依赖更多临床试验与转化研究,进一步推动 Claudin18.2 靶向核素药物的发展,为患者筛选、治疗动态监测及疗效评估等提供更为科学的依据与治疗策略。
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