2026年3月6-7日,同写意将于上海虹桥举办“体内CAR-T”会议交流,聚焦递送技术突破。
双特异性T细胞衔接子(TCE)在血液肿瘤中已经有不少成功案例,比如大家可能听过的贝林妥欧单抗,但TCE用在实体瘤上一直效果有限。其主要原因是:实体瘤的物理屏障,药物很难渗透进去;肿瘤微环境的免疫抑制;全身给药的毒性问题—要想在肿瘤里达到有效浓度,外周血中的药物暴露量必须很高,这容易引起严重的副作用。
近日,剂泰科技在NC上发表了他们最新研究成果,研究者瞄准了在肝癌中高表达的抗原Glypican-3(GPC3),GPC3是一个很有潜力的治疗靶点。研究团队提出的思路是:能不能不直接注射蛋白药物,而是用mRNA编码这个TCE,并把它特异性地递送到肝脏,让TCE在肿瘤局部原位表达? 这样既能提高肿瘤部位的药物浓度,又能降低全身毒性。
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01
肝靶向递送系统的验证
研究者用携带荧光素酶mRNA的LNP注射到小鼠体内,6小时后看发光信号。离子化脂质体MLX0473在肝脏的信号强度比Lipid5高7倍。在大鼠中重复注射人促红素mRNA,MLX0473在血清中表达的蛋白量更高、维持时间更长。这说明研究者选的这个脂质确实能高效、持久地把mRNA送到肝脏并表达蛋白。
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02
MTS105的体外功能验证
研究者先验证了mRNA转染293T细胞后,上清液里的TCE能结合GPC3和CD3。接着,研究者用人工外周血单个核细胞和GPC3阳性的肝癌细胞共培养,发现MTS105上清能有效杀死肿瘤细胞,并刺激T细胞释放IFN-γ和TNF。重要的是,这种杀伤是GPC3依赖的。研究者还把注射了MTS105的小鼠血清拿出来做实验,同样能介导特异性杀伤,说明体内表达的TCE是有功能的。
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03
体内抗肿瘤效果
研究者构建了一个肝原位肿瘤模型,用的是人源化CD3转基因小鼠,这样TCE能识别人的CD3。结果显示,MTS105能引起剂量依赖的肿瘤消退,且84天内无复发。药代动力学数据显示,MTS105在肝脏和肿瘤中的浓度远高于血浆,而对照抗体ERY974在肿瘤中几乎检测不到。免疫组化也显示,MTS105治疗后肿瘤内CD8+T细胞浸润增加,颗粒酶B表达上调。此外,治疗后的动物再接种肿瘤也不会生长,说明形成了免疫记忆。
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04
单细胞测序揭示机制
研究者用scRNA-seq分析了肿瘤浸润免疫细胞,发现MTS105治疗后CD8+T细胞比例上升,Treg比例下降。特别有意思的是,研究者发现一个高表达Hspa1a/b和Nr4a3的CD8+T细胞亚群,这群细胞表现出组织驻留记忆表型,可能是长效抗肿瘤免疫的关键。拟时序分析显示,这群细胞是从其他T细胞分化而来的,过程中上调了B2M和CCL5等基因。
当然,研究团队还对MTS105在食蟹猴中进行了安全性和PK的验证。虽然首次给药后出现一过性细胞因子升高和肝肾功能指标轻微波动,但均在后续剂量中恢复,未见严重病理损伤。
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05
总结与启示
剂泰科技的MTS105展示了一种“局部递送-局部表达-局部激活”的实体瘤免疫治疗新范式。它解决了传统TCE在实体瘤中渗透难、毒性大两个核心问题。通过肝靶向LNP递送mRNA,让TCE在肿瘤微环境中原位表达,既能高效激活T细胞,又避免了全身过度免疫激活。
MTS105靶向GPC3和CD3,但去掉了Fc段,目的是避免因半衰期过长导致T细胞过度激活。同时,通过密码子优化和UTR设计,提升mRNA的稳定性和翻译效率。MTS105已进入IND阶段(NCT06689540),如果临床验证成功,这种策略或许可以推广到其他表达特定抗原的实体瘤,只需要换一下mRNA编码的靶向部分就行。当然,研究者也提到了一些转化中可能存在的问题,比如LNP中PEG组分可能引起的免疫原性、个体间mRNA翻译效率差异等,这些都需要在临床中进一步观察。
参考文献:
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Makkouk A, Yang XC, Barca T, Lucas A, Turkoz M, Wong JTS, Nishimoto KP, Brodey MM, Tabrizizad M, Gundurao SRY, Bai L, Bhat A, An Z, Abbot S, Satpayev D, Aftab BT, Herrman M. Off-the-shelf Vδ1 gamma delta T cells engineered with glypican-3 (GPC-3)-specific chimeric antigen receptor (CAR) and soluble IL-15 display robust antitumor efficacy against hepatocellular carcinoma. J Immunother Cancer.
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